Sensitivity of biofilms of vaccine and freshly isolated Bordetella pertussis strains to antibiotics
- Authors: Zaytsev E.M.1, Britsina M.V.1, Ozeretskovskaya M.N.1, Mertsalova N.U.1, Bazhanova I.G.1
-
Affiliations:
- I.I. Mechnikov Research Institute of Vaccines and Sera
- Issue: Vol 97, No 6 (2020)
- Pages: 529-534
- Section: ORIGINAL RESEARCHES
- Submitted: 20.01.2021
- Accepted: 20.01.2021
- Published: 20.01.2021
- URL: https://microbiol.crie.ru/jour/article/view/941
- DOI: https://doi.org/10.36233/0372-9311-2020-97-6-3
- ID: 941
Cite item
Full Text
Abstract
Aim. To study the sensitivity of biofilms of vaccine and freshly isolated strains of Bordetella pertussis to antibiotics.
Materials and methods. Vaccine and freshly isolated strains of B. pertussis were used. Cultures of strains grown on dense nutrient medium were used as inoculate for biofilms production. The intensity of biofilm formation in round-bottomed polystyrene 96-well plates was estimated by staining with 0.1% gentian-violet solution. The following antibiotics were used in experiments: penicillins (ampicillin), cephalosporins (ceftriaxone), aminoglycosides (gentamicin), macrolides (erythromycin).
Results. The highest resistance to antibiotics was demonstrated by the vaccine strain No. 305 and freshly isolated strain No. 211, sensitive only to erythromycin. Vaccine strain No. 703 was sensitive to gentamicin and ampicillin and showed resistance to erythromycin and ceftriaxone. Vaccine strain No. 475 was sensitive to all tested antibiotics. The Tohama 1 strain was resistant to ampicillin and sensitive to other antibiotics. Freshly isolated strains No. 178 and No. 162 were resistant to ceftriaxone and sensitive to gentamicin, erythromycin and penicillin. Minimal inhibitory concentrations of tested antibiotics ranged from 0.2 μg/ml to 5.0 μg/ml.
Conclusion. These data indicate the heterogeneity of vaccine and freshly isolated strains of B. pertussis in sensitivity to antibiotics. The greatest activity was shown by erythromycin, which suppressed the growth of biofilms of 6 out of 7 strains. The least effective was ceftriaxone, which suppressed the growth of biofilms of only 2 strains.
Full Text
Введение
Эпидемический процесс коклюшной инфекции, несмотря на высокий уровень противококлюшной вакцинации, продолжается во многих странах мира. Ежегодно в мире регистрируется около 50 млн случаев заболевания коклюшем, около 300 тыс. детей погибает от него [1][2]. Одной из вероятных причин роста заболеваемости коклюшем являются мутации в генах возбудителя, кодирующих основные факторы вирулентности Bordetella pertussis, что привело к появлению циркулирующих штаммов, отличающихся повышенной вирулентностью [3]. Фармакотерапия больных коклюшем остается актуальной проблемой и включает назначение этиотропных, патогенетических и симптоматических препаратов. Ведущую роль в этиотропном лечении играют антибактериальные средства, прежде всего антибиотики. Наиболее эффективными принято считать антибиотики макролидного ряда: эритромицин, азитромицин, кларитромицин. Вместе с тем для лечения коклюша, в частности при неэффективности эритромицина, с успехом использовались и другие антибиотики (тетрациклинового ряда, пенициллины, аминогликозиды, цефалоспорины и др.) [4]. Главными условиями эффективности антибиотикотерапии коклюша являются правильный выбор антибиотика, его дозировка и длительность лечения. Чувствительность коклюшного микроба к антибиотикам в настоящее время оценивают в бульонных или агаровых культурах методами серийных разведений или с помощью диско-диффузионных методов. Однако в последние годы было установлено, что B. pertussis, как и другие виды бактерий, функционируют в виде биопленок на биотических и абиотических субстратах [5][6]. Биопленочные формы бактерий отличаются от планктонных измененным спектром экспрессии генов и обладают повышенной устойчивостью к факторам внешней среды, в частности к антибиотикам. Установлено, что биопленки разных микроорганизмов могут быть в 100–1000 раз более устойчивы к антибиотикам, чем планктонные культуры [7]. Чувствительность биопленок B. pertussis к антибиотикам пока изучена недостаточно, по данной проблеме имеются лишь единичные публикации [8].
Цель работы заключалась в изучении чувствительности биопленок вакцинных и свежевыделенных штаммов B. pertussis к антибиотикам разных групп.
Материалы и методы
В опытах использовали две группы штаммов В. pertussis. Первую группу составили вакцинные штаммы, выделенные от больных коклюшем в 1950–1960-е гг., иcпользующиеся в России для изготовления корпускулярных коклюшных вакцин: штамм № 475 (серовар 1.2.3), штамм № 305 (серовар 1.2.0), штамм № 703 (серовар 1.0.3), а также штамм Tohama 1 (серовар 1.2.0), выделенный в 1950-е гг. в Японии и широко использующийся в ряде стран при проведении генетических исследований и производстве коклюшных вакцин. Во вторую группу были включены штаммы, выделенные в РФ от больных коклюшем в 2001–2010 гг.: штамм № 178 (серовар 1.2.0), штамм № 162 (серовар 1.0.3) и штамм № 211 (серовар 1.2.3) [9]. В опытах использовали антибиотики групп пенициллинов (ампициллин), цефалоспоринов (цефтриаксон), аминогликозидов (гентамицин), макролидов (эритромицин).
В качестве инокулята для получения биопленок применяли ночные культуры штаммов, выращенных на плотной питательной среде «Бордетелагар» (Питательная среда для культивирования и выделения коклюшного микроба сухая, ФБУН ГНЦ ПМБ). Для получения биопленок суспензию бактерий культивировали в 96-луночных пластиковых планшетах («Nunc») в жидкой синтетической питательной среде в соответствии с ранее описанным методом [9]. Культуры штаммов в жидкой синтетической питательной среде в концентрации 1,25, 2,5 и 5,0 международных оптических единиц (МОЕ) в объеме 100 мкл вносили в лунки планшетов. После этого в лунки вносили по 100 мкл питательной среды, содержащей испытуемые антибиотики в концентрации 0,2, 1 и 5 мкг/мл. В контрольные пробы антибиотики не добавляли.
После окрашивания биопленок в планшетах 0,1% раствором генцианвиолета оценивали их интенсивность по отношению оптической плотности (ОП) окрашенного растворителя биопленки к негативному контролю (ОП питательной среды = 0,048 ± 0,003). Выделяли следующие группы: плотные (ОП > 0,192), умеренные (0,096 < ОП ≤ 0,192) биопленки, слабые/отсутствие биопленок (ОП ≤ 0,096) [9].
Результаты оценивали по значениям минимальной подавляющей концентрации (МПК, мкг/мл), которую определяли как минимальную концентрацию антибиотиков, подавляющую рост биопленочных культур. Для достоверного обсчета результатов использовали 4 лунки на один опытный образец и рассчитывали среднюю величину ОП опытного образца и удвоенную ошибку. Сравнения проводили по критерию Стьюдента [10].
Результаты
Результаты исследования чувствительности вакцинных и свежевыделенных штаммов B. pertussis к антибиотикам приведены в таблице. Для определения МПК антибиотиков необходимо было выбрать оптимальную стартовую посевную дозу микробных клеток.
Влияние антибиотиков на рост биопленок (ОП) разных штаммов В. pertussis при посевной дозе 5 МОЕ (М ± т)
Effect of antibiotics on the growth of biofilms (OD values) of different of B. pertussis strains at a seeding dose of 5 IOU (M ± m)
Доза антибиотика Dose of antibiotic | Штаммы В. pertussis / Strains of В. pertussis | ||||||
вакцинные / vaccine | свежевыделенные / freshly isolated | ||||||
Tohama 1 | 475 | 305 | 703 | 162 | 211 | 178 | |
Контроль | Умеренная | Плотная | Плотная | Умеренная | Плотная | Плотная | Плотная |
Control | Moderate | Dense | Dense | Moderate | Dense | Dense | Dense |
| 0,097 ± 0,015 | 0,337 ± 0,96 | 0,248 ± 0,013 | 0,120 ± 0,010 | 0,257 ± 0,064 | 0,345 ± 0,082 | 0,222 ± 0,011 |
Гентамицин / Gentamicin | |||||||
5 мкг/мл 5 μg/ml | Нет | Нет | Слабая | Нет | Нет | Умеренная | Нет |
No | No | Weak | No | No | Moderate | No | |
0,096 ± 0,003 | 0,064 ± 0,002 | 0,108 ± 0,004 | 0,074 ± 0,005 | 0,067 ± 0,001 | 0,112 ± 0,002 | 0,095 ± 0,007 | |
1 мкг/мл 1 μg/ml | Умеренная | Нет | Умеренная | Умеренная | Нет | Умеренная | Умеренная |
Moderate | No | Moderate | Moderate | No | Moderate | Moderate | |
0,173 ± 0,008 | 0,073 ± 0,005 | 0,172 ± 0,026 | 0,116 ± 0,009 | 0,078 ± 0,004 | 0,140 ± 0,015 | 0,120 ± 0,012 | |
0,2 мкг/мл 0.2 μg/ml | Плотная | Нет | Умеренная | Умеренная | Умеренная | Умеренная | Умеренная |
Dense | No | Moderate | Moderate | Moderate | Moderate | Moderate | |
0,224 ± 0,020 | 0,086 ± 0,003 | 0,180 ± 0,021 | 0,151 ± 0,003 | 0,112 ± 0,016 | 0,147 ± 0,017 | 0,131 ± 0,013 | |
Эритромицин / Erythromycin | |||||||
5 мкг/мл 5 μg/ml | Нет | Нет | Нет | Слабая | Нет | Нет | Нет |
No | No | No | Weak | No | No | No | |
0,058 ± 0,006 | 0,095 ± 0,004 | 0,091 ± 0,003 | 0,100 ± 0,010 | 0,071 ± 0,005 | 0,057 ± 0,004 | 0,081 ± 0,002 | |
1 мкг/мл 1 μg/ml | Умеренная | Умеренная | Плотная | Слабая | Умеренная | Умеренная | Умеренная |
Moderate | Moderate | Dense | Weak | Moderate | Moderate | Moderate | |
0,117 ± 0,006 | 0,134 ± 0,007 | 0,216 ± 0,011 | 0,100 ± 0,004 | 0,154 ± 0,011 | 0,162 ± 0,005 | 0,174 ± 0,022 | |
0,2 мкг/мл 0.2 μg/ml | Умеренная | Умеренная | Плотная | Умеренная | Умеренная | Умеренная | Умеренная |
Moderate | Moderate | Dense | Moderate | Moderate | Moderate | Moderate | |
0,152 ± 0,003 | 0,135 ± 0,003 | 0,256 ± 0,031 | 0,180 ± 0,009 | 0,175 ± 0,011 | 0,130 ± 0,010 | 0,144 ± 0,009 | |
Цефтриаксон / Ceftriaxone | |||||||
5 мкг/мл 5 μg/ml | Нет | Нет | Умеренная | Слабая | Умеренная | Слабая | Умеренная |
No | No | Moderate | Weak | Moderate | Weak | Moderate | |
0,089 ± 0,012 | 0,081 ± 0,012 | 0,154 ± 0,012 | 0,101 ± 0,008 | 0,112 ± 0,002 | 0,101 ± 0,009 | 0,124 ± 0,014 | |
1 мкг/мл 1 μg/ml | Нет | Умеренная | Умеренная | Умеренная | Плотная | Умеренная | Умеренная |
No | Moderate | Moderate | Moderate | Dense | Moderate | Moderate | |
0,096 ± 0,026 | 0,158 ± 0,025 | 0,154 ± 0,012 | 0,154 ± 0,023 | 0,189 ± 0,025 | 0,127 ± 0,014 | 0,132 ± 0,002 | |
0,2 мкг/мл 0.2 μg/ml | Умеренная | Умеренная | Умеренная | Плотная | Плотная | Умеренная | Умеренная |
Moderate | Moderate | Moderate | Dense | Dense | Moderate | Moderate | |
0,159 ± 0,026 | 0,171 ± 0,029 | 0,171 ± 0,027 | 0,214 ± 0,018 | 0,240 ± 0,041 | 0,126 ± 0,020 | 0,150 ± 0,010 | |
Ампицилин / Ampicillin | |||||||
5 мкг/мл 5 μg/ml | Слабая | Нет | Умеренная | Нет | Нет | Умеренная | Нет |
Weak | No | Moderate | No | No | Moderate | No | |
0,100 ± 0,007 | 0,051 ± 0,001 | 0,112 ± 0,026 | 0,055 ± 0,003 | 0,056 ± 0,003 | 0,184 ± 0,060 | 0,065 ± 0,002 | |
1 мкг/мл 1 μg/ml | Умеренная | Умеренная | Умеренная | Плотная | Умеренная | Умеренная | Умеренная |
Moderate | Moderate | Moderate | Dense | Moderate | Moderate | Moderate | |
0,112 ± 0,004 | 0,185 ± 0,020 | 0,162 ± 0,009 | 0,202 ± 0,028 | 0,151 ± 0,049 | 0,170 ± 0,039 | 0,133 ± 0,017 | |
0,2 мкг/мл 0.2 μg/ml | Умеренная | Плотная | Плотная | Плотная | Плотная | Умеренная | Умеренная |
Moderate | Dense | Dense | Dense | Dense | Moderate | Moderate | |
0,180 ± 0,021 | 0,219 ± 0,028 | 0,219 ± 0,023 | 0,228 ± 0,015 | 0,197 ± 0,039 | 0,187 ± 0,056 | 0,126 ± 0,026 |
Примечание. Различия между значениями ОП культур с отсутствием, слабыми, умеренными и плотными биопленками статистически достоверны (р < 0,001).
Note. Differences between the OD values for cultures with no, weak, moderate and dense biofilms are statistically significant (p < 0.001).
Контрольные культуры исследованных штаммов различались по интенсивности образования биопленок в зависимости от посевной дозы. При посевной дозе 5 МОЕ 5 из 7 штаммов формировали плотные биопленки, а 2 штамма — умеренные. При посевной дозе 2,5 МОЕ плотные биопленки формировали 2 штамма, а 5 штаммов — умеренные. При дозе 1,25 МОЕ только 1 штамм формировал плотную биопленку, а остальные 6 — умеренные или слабые. В связи с этим чувствительность штаммов к антибиотикам оценивали при посевной дозе 5 МОЕ/мл. Вакцинный штамм Tohama 1 проявлял чувствительность к гентамицину и эритромицину с МПК 5 мкг/мл и цефтриаксону с МПК 1 мкг/мл. По отношению к ампициллину этот штамм был устойчивым с ростом умеренных биопленок с МПК 0,2 и 1 мкг/мл и слабых биопленок — с 5 мкг/мл. Вакцинный штамм № 475 был чувствительным к гентамицину с МПК 0,2 мкг/мл, а также к эритромицину, цефтриаксону и ампициллину с МПК 5 мкг/мл. Вакцинный штамм № 305 был чувствителен только к эритромицину с МПК 5 мкг/мл и устойчив к остальным трем антибиотикам. Вакцинный штамм № 703 был чувствительным к гентамицину и ампициллину с МПК 5 мкг/мл и устойчивым к эритромицину и цефтриаксону. Свежевыделенный штамм № 162 проявлял чувствительность к гентамицину c МПК 1 мкг/мл, а к эритромицину и ампициллину — с МПК 5 мкг/мл. Свежевыделенный штамм № 178 был чувствителен к гентамицину, эритромицину и ампициллину с МПК 5 мкг/мл. К цефриаксону штаммы № 162 и № 178 были устойчивы и формировали биопленки различной интенсивности — от умеренных до плотных — при всех использованных концентрациях антибиотика. Свежевыделенный штамм № 211 был чувствительным только к эритромицину с МПК 5 мкг/мл и проявлял устойчивость к гентамицину, цефтриаксону и ампициллину.
Обсуждение
Нами исследована чувствительность биопленок основных сероваров вакцинных и свежевыделенных штаммов коклюшного микроба к различным антибиотикам. В результате проведенных исследований были разработаны оптимальные условия оценки чувствительности биопленочных форм B. pertussis к антибиотикам разных групп. Интенсивность образования биопленок штаммами зависела от стартовой посевной дозы микробных клеток и концентрации антибиотиков. В качестве оптимальной посевной дозы микробных клеток была выбрана доза 5 МОЕ/мл, при использовании которой большинство штаммов формировали плотные биопленки при отсутствии в питательной среде антибиотиков.
Выявлены определенные различия между биопленками исследованных штаммов по чувствительности к антибиотикам. Наиболее высокой устойчивостью к антибиотикам отличались вакцинный штамм № 305 и свежевыделенный штамм № 211, проявлявшие чувствительность только к эритромицину. Вакцинный штамм № 703 был чувствителен к гентамицину и ампициллину и проявлял резистентность к эритромицину и цефтриаксону. Вакцинный штамм № 475 был чувствителен ко всем испытанным антибиотикам. Штамм Tohama 1 был резистентен к ампициллину и чувствителен к остальным антибиотикам. Свежевыделенные штаммы № 178 и № 162 были устойчивы к цефтриаксону и чувствительны к гентамицину, эритромицину и ампициллину. В доступной литературе имеются отдельные указания на возможность более высокой антибиотикорезистентности биопленок свежевыделенных штаммов коклюшного микроба по сравнению с вакцинными [8]. Полученные нами результаты указывают на отсутствие существенных различий между исследованными вакцинными и свежевыделенными штаммами по чувствительности к антибиотикам.
Полученные результаты указывают на гетерогенность исследованных нами вакцинных и свежевыделенных штаммов B. pertussis по чувствительности к антибиотикам. При этом высокая чувствительность штаммов к определенным антибиотикам сочеталась с резистентностью к антибиотикам других групп. Необходимо отметить высокие МПК антибиотиков для биопленок. МПК гентамицина составляла 0,2 мкг/мл для штамма № 475, 1 мкг/мл для штамма № 162 и 5 мкг/мл для штаммов Tohama 1, № 703 и № 178. МПК эритромицина и ампициллина составляли 5 мкг/мл для всех чувствительных к этим антибиотикам штаммов. МПК цефтриаксона для штаммов Tohama 1 и № 475 составляли 1 и 5 мкг/мл соответственно. В целом МПК использованных антибиотиков составляли от 0,2 до 5 мкг/мл. По данным литературы, МПК для планктонных культур коклюшного микроба, определенные традиционными методами, составляют: эритромицин — 0,1–0,125 мкг/мл, ампициллин — 0,12–0,5 мкг/мл, гентамицин — 0,06–0,5 мкг/мл, цефтриаксон — 0,19 мкг/мл [11][12]. Таким образом, биопленочные культуры B. pertussis отличаются более высокой устойчивостью к антибиотикам по сравнению с планктонными культурами.
Результаты проведенных исследований позволяют также сделать определенные выводы об эффективности исследованных антибиотиков по отношению к биопленочным культурам. Наибольшую активность проявлял эритромицин, подавлявший рост биопленок большинства исследованных штаммов. Только вакцинный штамм № 703 проявлял устойчивость к этому препарату. Эти результаты согласуются с данными других авторов о том, что эритромицин проявляет наиболее высокую активность in vitro по отношению к возбудителю коклюша [11][13][14]. К гентамицину были чувствительны 5 штаммов, а к ампициллину — 4 штамма. Наименее эффективным был цефтриаксон, подавлявший рост биопленок только 2 штаммов.
Механизмы повышенной устойчивости биопленок B. pertussis к антибиотикам до конца не изучены и могут быть связаны с рядом факторов, среди которых можно отметить особенности строения матрикса [5]. Полученные нами результаты указывают на целесообразность дальнейшего исследования чувствительности биопленок B. pertussis к антибиотикам и выяснения механизмов их высокой антибиотикорезистентности.
About the authors
E. M. Zaytsev
I.I. Mechnikov Research Institute of Vaccines and Sera
Author for correspondence.
Email: pertussis@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-4813-9074
Eugene M. Zaуtsev — D. Sci. (Med.), Head, Laboratory of immunomodulators
Moscow
РоссияM. V. Britsina
I.I. Mechnikov Research Institute of Vaccines and Sera
Email: fake@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0002-3044-0790
Marina V. Вritsina — PhD (Biol.), leading researcher, Laboratory of immunomodulators
Moscow
РоссияM. N. Ozeretskovskaya
I.I. Mechnikov Research Institute of Vaccines and Sera
Email: fake@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0001-9809-4217
Maria N. Ozeretskovskaya — PhD (Med.), leading researcher, Laboratory of immunomodulators
Moscow
РоссияN. U. Mertsalova
I.I. Mechnikov Research Institute of Vaccines and Sera
Email: fake@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0002-9072-2538
Natalia U. Mertsalova — PhD (Biol.), leading researcher, Laboratory of immunomodulators
Moscow
РоссияI. G. Bazhanova
I.I. Mechnikov Research Institute of Vaccines and Sera
Email: fake@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0003-1404-1498
Irina G. Bazhanova — PhD (Biol.), senior researcher, Laboratory of immunomodulators
Moscow
РоссияReferences
- Kapil P., Merkel T.J. Pertussis vaccines and protective immunity. Curr. Opin. Immunol. 2019; 59: 72–8. https://doi.org/10.1016/j.coi.2019.03.006
- Barkoff A.M., He Q. Molecular epidemiology of Bordetella pertussis. Adv. Exp. Med. Biol. 2019; 1183: 19–33. https://doi.org/10.1007/5584_2019_402
- Борисова О.Ю., Гадуа Н.Т., Пименова А.С., Петрова М.С., Попова О.П., Алешкин В.А. и др. Структура популяции штаммов возбудителя коклюша на территории России. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2016; 15(4): 22–8.
- Kilgore P.E., Salim A.M., Zervos M.J., Schmitt H.J. Pertussis: microbiology, disease, treatment, and prevention. Clin. Microbiol. Rev. 2016; 29(3): 449–86. https://doi.org/10.1128/CMR.00083-15
- Cattelan N., Dubey P., Arnal L., Yantorno O.M., Deora R. Bordetella biofilms: a lifestyle leading to persistent infections. Pathog. Dis. 2016; 74(1): ftv108. https://doi.org/10.1093/femspd/ftv108
- Dorji D., Ross M.G., Singh A.K., Ramsay J.P., Price P., Lee S. Immunogenicity and protective potential of Bordetella pertussis biofilm and its associated antigens in a murine model. Cell Immunol. 2019; 337: 42–7. https://doi.org/10.1016/j.cellimm.2019.01.006
- Романова Ю.М., Гинцбург А.Л. Бактериальные биопленки как естественная форма существования бактерий в окружающей среде и организме хозяина. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2011; 88(3): 99–109.
- Dorji D., Graham R.M., Richmond P., Keil A., Mukkur T.K. Biofilm forming potential and antimicrobial susceptibility of newly emerged Western Australian Bordetella pertussis clinical isolates. Biofouling. 2016; 32(9): 1141–52. https://doi.org/10.1080/08927014.2016.1232715
- Зайцев Е.М., Брицина М.В., Озерецковская М.Н., Мерцалова Н.У., Бажанова И.Г. Образование биопленок свежевыделенными и вакцинными штаммами Bordetella pertussis разных сероваров. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2019; 96(5): 47–50. https://doi.org/10.36233/0372-9311-2019-5-47-50
- Ашмарин И.П., Воробьев А.А. Статистические методы в микробиологических исследованиях. Ленинград; 1962.
- Борисова О.Ю., Алёшкин А.В., Ивашинникова Г.А., Донских Е.Е., Постникова Е.А., Алёшкин В.А. Чувствительность штаммов Bordetella pertussis к антибактериальным препаратам. Детские инфекции. 2013; 12(2): 46–50.
- Lonnqvist E., Barkoff A.M., Mertsola J. Antimicrobial susceptibility testing of Finnish Bordetella pertussis isolates collected during 2006–2017. J. Glob. Antimicrob. Resist. 2018; 14: 12–6. https://doi.org/10.1016/j.jgar.2018.02.012
- Hua C.Z., Wang H.J., Zhang Z., Tao X.F., Li J.P., Mi Y.M., et al. In vitro activity and clinical efficacy of macrolides, cefoperazone-sulbactam and piperacillin/piperacillin-tazobactam against Bordetella pertussis and the clinical manifestations in pertussis patients due to these isolates: A single-centre study in Zhejiang Province, China. J. Glob. Antimicrob. Resist. 2019; 18: 47–51. https://doi.org/10.1016/j.jgar.2019.01.029
- Jakubů V., Zavadilová J., Fabiánová K., Urbášková P. Minimum inhibitory concentrations of erythromycin and other antibiotics for Czech strains of Bordetella pertussis. Epidemiol. Mikrobiol. Imunol. 2015; 64(1): 12–5.