Чувствительность биопленок вакцинных и свежевыделенных штаммов Bordetella pertussis к антибиотикам
- Авторы: Зайцев Е.М.1, Брицина М.В.1, Озерецковская М.Н.1, Мерцалова Н.У.1, Бажанова И.Г.1
-
Учреждения:
- ФГБНУ «НИИ вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова»
- Выпуск: Том 97, № 6 (2020)
- Страницы: 529-534
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- Дата подачи: 20.01.2021
- Дата принятия к публикации: 20.01.2021
- Дата публикации: 20.01.2021
- URL: https://microbiol.crie.ru/jour/article/view/941
- DOI: https://doi.org/10.36233/0372-9311-2020-97-6-3
- ID: 941
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Цель. Изучение чувствительности биопленок вакцинных и свежевыделенных штаммов Bordetella pertussis к антибиотикам.
Материалы и методы. Использованы вакцинные и свежевыделенные штаммы B. pertussis. В качестве инокулята для получения биопленок использовали культуры штаммов, выращенные на плотной питательной среде. Интенсивность образования биопленок в круглодонных полистироловых 96-луночных планшетах оценивали окрашиванием 0,1% раствором генцианвиолета. В опытах использовали антибиотики следующих групп: пенициллины (ампициллин), цефалоспорины (цефтриаксон), аминогликозиды (гентамицин), макролиды (эритромицин).
Результаты. Наиболее высокой устойчивостью к антибиотикам отличались вакцинный штамм № 305 и свежевыделенный штамм № 211, проявлявшие чувствительность только к эритромицину. Вакцинный штамм № 703 был чувствителен к гентамицину и ампициллину и проявлял резистентность к эритромицину и цефтриаксону. Вакцинный штамм № 475 был чувствителен ко всем испытанным антибиотикам. Штамм Tohama 1 был резистентен к ампициллину и чувствителен к остальным антибиотикам. Свежевыделенные штаммы № 178 и № 162 были устойчивы к цефтриаксону и чувствительны к гентамицину, эритромицину и ампициллину. Минимальные подавляющие концентрации использованных антибиотиков составляли 0,2–5 мкг/мл.
Заключение. Приведенные данные свидетельствуют о гетерогенности вакцинных и свежевыделенных штаммов B. pertussis по чувствительности к антибиотикам. Наибольшую активность проявлял эритромицин, подавлявший рост биопленок 6 из 7 штаммов. Наименее эффективным был цефтриаксон, подавлявший рост биопленок только 2 штаммов.
Ключевые слова
Полный текст
Введение
Эпидемический процесс коклюшной инфекции, несмотря на высокий уровень противококлюшной вакцинации, продолжается во многих странах мира. Ежегодно в мире регистрируется около 50 млн случаев заболевания коклюшем, около 300 тыс. детей погибает от него [1][2]. Одной из вероятных причин роста заболеваемости коклюшем являются мутации в генах возбудителя, кодирующих основные факторы вирулентности Bordetella pertussis, что привело к появлению циркулирующих штаммов, отличающихся повышенной вирулентностью [3]. Фармакотерапия больных коклюшем остается актуальной проблемой и включает назначение этиотропных, патогенетических и симптоматических препаратов. Ведущую роль в этиотропном лечении играют антибактериальные средства, прежде всего антибиотики. Наиболее эффективными принято считать антибиотики макролидного ряда: эритромицин, азитромицин, кларитромицин. Вместе с тем для лечения коклюша, в частности при неэффективности эритромицина, с успехом использовались и другие антибиотики (тетрациклинового ряда, пенициллины, аминогликозиды, цефалоспорины и др.) [4]. Главными условиями эффективности антибиотикотерапии коклюша являются правильный выбор антибиотика, его дозировка и длительность лечения. Чувствительность коклюшного микроба к антибиотикам в настоящее время оценивают в бульонных или агаровых культурах методами серийных разведений или с помощью диско-диффузионных методов. Однако в последние годы было установлено, что B. pertussis, как и другие виды бактерий, функционируют в виде биопленок на биотических и абиотических субстратах [5][6]. Биопленочные формы бактерий отличаются от планктонных измененным спектром экспрессии генов и обладают повышенной устойчивостью к факторам внешней среды, в частности к антибиотикам. Установлено, что биопленки разных микроорганизмов могут быть в 100–1000 раз более устойчивы к антибиотикам, чем планктонные культуры [7]. Чувствительность биопленок B. pertussis к антибиотикам пока изучена недостаточно, по данной проблеме имеются лишь единичные публикации [8].
Цель работы заключалась в изучении чувствительности биопленок вакцинных и свежевыделенных штаммов B. pertussis к антибиотикам разных групп.
Материалы и методы
В опытах использовали две группы штаммов В. pertussis. Первую группу составили вакцинные штаммы, выделенные от больных коклюшем в 1950–1960-е гг., иcпользующиеся в России для изготовления корпускулярных коклюшных вакцин: штамм № 475 (серовар 1.2.3), штамм № 305 (серовар 1.2.0), штамм № 703 (серовар 1.0.3), а также штамм Tohama 1 (серовар 1.2.0), выделенный в 1950-е гг. в Японии и широко использующийся в ряде стран при проведении генетических исследований и производстве коклюшных вакцин. Во вторую группу были включены штаммы, выделенные в РФ от больных коклюшем в 2001–2010 гг.: штамм № 178 (серовар 1.2.0), штамм № 162 (серовар 1.0.3) и штамм № 211 (серовар 1.2.3) [9]. В опытах использовали антибиотики групп пенициллинов (ампициллин), цефалоспоринов (цефтриаксон), аминогликозидов (гентамицин), макролидов (эритромицин).
В качестве инокулята для получения биопленок применяли ночные культуры штаммов, выращенных на плотной питательной среде «Бордетелагар» (Питательная среда для культивирования и выделения коклюшного микроба сухая, ФБУН ГНЦ ПМБ). Для получения биопленок суспензию бактерий культивировали в 96-луночных пластиковых планшетах («Nunc») в жидкой синтетической питательной среде в соответствии с ранее описанным методом [9]. Культуры штаммов в жидкой синтетической питательной среде в концентрации 1,25, 2,5 и 5,0 международных оптических единиц (МОЕ) в объеме 100 мкл вносили в лунки планшетов. После этого в лунки вносили по 100 мкл питательной среды, содержащей испытуемые антибиотики в концентрации 0,2, 1 и 5 мкг/мл. В контрольные пробы антибиотики не добавляли.
После окрашивания биопленок в планшетах 0,1% раствором генцианвиолета оценивали их интенсивность по отношению оптической плотности (ОП) окрашенного растворителя биопленки к негативному контролю (ОП питательной среды = 0,048 ± 0,003). Выделяли следующие группы: плотные (ОП > 0,192), умеренные (0,096 < ОП ≤ 0,192) биопленки, слабые/отсутствие биопленок (ОП ≤ 0,096) [9].
Результаты оценивали по значениям минимальной подавляющей концентрации (МПК, мкг/мл), которую определяли как минимальную концентрацию антибиотиков, подавляющую рост биопленочных культур. Для достоверного обсчета результатов использовали 4 лунки на один опытный образец и рассчитывали среднюю величину ОП опытного образца и удвоенную ошибку. Сравнения проводили по критерию Стьюдента [10].
Результаты
Результаты исследования чувствительности вакцинных и свежевыделенных штаммов B. pertussis к антибиотикам приведены в таблице. Для определения МПК антибиотиков необходимо было выбрать оптимальную стартовую посевную дозу микробных клеток.
Влияние антибиотиков на рост биопленок (ОП) разных штаммов В. pertussis при посевной дозе 5 МОЕ (М ± т)
Effect of antibiotics on the growth of biofilms (OD values) of different of B. pertussis strains at a seeding dose of 5 IOU (M ± m)
Доза антибиотика Dose of antibiotic | Штаммы В. pertussis / Strains of В. pertussis | ||||||
вакцинные / vaccine | свежевыделенные / freshly isolated | ||||||
Tohama 1 | 475 | 305 | 703 | 162 | 211 | 178 | |
Контроль | Умеренная | Плотная | Плотная | Умеренная | Плотная | Плотная | Плотная |
Control | Moderate | Dense | Dense | Moderate | Dense | Dense | Dense |
| 0,097 ± 0,015 | 0,337 ± 0,96 | 0,248 ± 0,013 | 0,120 ± 0,010 | 0,257 ± 0,064 | 0,345 ± 0,082 | 0,222 ± 0,011 |
Гентамицин / Gentamicin | |||||||
5 мкг/мл 5 μg/ml | Нет | Нет | Слабая | Нет | Нет | Умеренная | Нет |
No | No | Weak | No | No | Moderate | No | |
0,096 ± 0,003 | 0,064 ± 0,002 | 0,108 ± 0,004 | 0,074 ± 0,005 | 0,067 ± 0,001 | 0,112 ± 0,002 | 0,095 ± 0,007 | |
1 мкг/мл 1 μg/ml | Умеренная | Нет | Умеренная | Умеренная | Нет | Умеренная | Умеренная |
Moderate | No | Moderate | Moderate | No | Moderate | Moderate | |
0,173 ± 0,008 | 0,073 ± 0,005 | 0,172 ± 0,026 | 0,116 ± 0,009 | 0,078 ± 0,004 | 0,140 ± 0,015 | 0,120 ± 0,012 | |
0,2 мкг/мл 0.2 μg/ml | Плотная | Нет | Умеренная | Умеренная | Умеренная | Умеренная | Умеренная |
Dense | No | Moderate | Moderate | Moderate | Moderate | Moderate | |
0,224 ± 0,020 | 0,086 ± 0,003 | 0,180 ± 0,021 | 0,151 ± 0,003 | 0,112 ± 0,016 | 0,147 ± 0,017 | 0,131 ± 0,013 | |
Эритромицин / Erythromycin | |||||||
5 мкг/мл 5 μg/ml | Нет | Нет | Нет | Слабая | Нет | Нет | Нет |
No | No | No | Weak | No | No | No | |
0,058 ± 0,006 | 0,095 ± 0,004 | 0,091 ± 0,003 | 0,100 ± 0,010 | 0,071 ± 0,005 | 0,057 ± 0,004 | 0,081 ± 0,002 | |
1 мкг/мл 1 μg/ml | Умеренная | Умеренная | Плотная | Слабая | Умеренная | Умеренная | Умеренная |
Moderate | Moderate | Dense | Weak | Moderate | Moderate | Moderate | |
0,117 ± 0,006 | 0,134 ± 0,007 | 0,216 ± 0,011 | 0,100 ± 0,004 | 0,154 ± 0,011 | 0,162 ± 0,005 | 0,174 ± 0,022 | |
0,2 мкг/мл 0.2 μg/ml | Умеренная | Умеренная | Плотная | Умеренная | Умеренная | Умеренная | Умеренная |
Moderate | Moderate | Dense | Moderate | Moderate | Moderate | Moderate | |
0,152 ± 0,003 | 0,135 ± 0,003 | 0,256 ± 0,031 | 0,180 ± 0,009 | 0,175 ± 0,011 | 0,130 ± 0,010 | 0,144 ± 0,009 | |
Цефтриаксон / Ceftriaxone | |||||||
5 мкг/мл 5 μg/ml | Нет | Нет | Умеренная | Слабая | Умеренная | Слабая | Умеренная |
No | No | Moderate | Weak | Moderate | Weak | Moderate | |
0,089 ± 0,012 | 0,081 ± 0,012 | 0,154 ± 0,012 | 0,101 ± 0,008 | 0,112 ± 0,002 | 0,101 ± 0,009 | 0,124 ± 0,014 | |
1 мкг/мл 1 μg/ml | Нет | Умеренная | Умеренная | Умеренная | Плотная | Умеренная | Умеренная |
No | Moderate | Moderate | Moderate | Dense | Moderate | Moderate | |
0,096 ± 0,026 | 0,158 ± 0,025 | 0,154 ± 0,012 | 0,154 ± 0,023 | 0,189 ± 0,025 | 0,127 ± 0,014 | 0,132 ± 0,002 | |
0,2 мкг/мл 0.2 μg/ml | Умеренная | Умеренная | Умеренная | Плотная | Плотная | Умеренная | Умеренная |
Moderate | Moderate | Moderate | Dense | Dense | Moderate | Moderate | |
0,159 ± 0,026 | 0,171 ± 0,029 | 0,171 ± 0,027 | 0,214 ± 0,018 | 0,240 ± 0,041 | 0,126 ± 0,020 | 0,150 ± 0,010 | |
Ампицилин / Ampicillin | |||||||
5 мкг/мл 5 μg/ml | Слабая | Нет | Умеренная | Нет | Нет | Умеренная | Нет |
Weak | No | Moderate | No | No | Moderate | No | |
0,100 ± 0,007 | 0,051 ± 0,001 | 0,112 ± 0,026 | 0,055 ± 0,003 | 0,056 ± 0,003 | 0,184 ± 0,060 | 0,065 ± 0,002 | |
1 мкг/мл 1 μg/ml | Умеренная | Умеренная | Умеренная | Плотная | Умеренная | Умеренная | Умеренная |
Moderate | Moderate | Moderate | Dense | Moderate | Moderate | Moderate | |
0,112 ± 0,004 | 0,185 ± 0,020 | 0,162 ± 0,009 | 0,202 ± 0,028 | 0,151 ± 0,049 | 0,170 ± 0,039 | 0,133 ± 0,017 | |
0,2 мкг/мл 0.2 μg/ml | Умеренная | Плотная | Плотная | Плотная | Плотная | Умеренная | Умеренная |
Moderate | Dense | Dense | Dense | Dense | Moderate | Moderate | |
0,180 ± 0,021 | 0,219 ± 0,028 | 0,219 ± 0,023 | 0,228 ± 0,015 | 0,197 ± 0,039 | 0,187 ± 0,056 | 0,126 ± 0,026 |
Примечание. Различия между значениями ОП культур с отсутствием, слабыми, умеренными и плотными биопленками статистически достоверны (р < 0,001).
Note. Differences between the OD values for cultures with no, weak, moderate and dense biofilms are statistically significant (p < 0.001).
Контрольные культуры исследованных штаммов различались по интенсивности образования биопленок в зависимости от посевной дозы. При посевной дозе 5 МОЕ 5 из 7 штаммов формировали плотные биопленки, а 2 штамма — умеренные. При посевной дозе 2,5 МОЕ плотные биопленки формировали 2 штамма, а 5 штаммов — умеренные. При дозе 1,25 МОЕ только 1 штамм формировал плотную биопленку, а остальные 6 — умеренные или слабые. В связи с этим чувствительность штаммов к антибиотикам оценивали при посевной дозе 5 МОЕ/мл. Вакцинный штамм Tohama 1 проявлял чувствительность к гентамицину и эритромицину с МПК 5 мкг/мл и цефтриаксону с МПК 1 мкг/мл. По отношению к ампициллину этот штамм был устойчивым с ростом умеренных биопленок с МПК 0,2 и 1 мкг/мл и слабых биопленок — с 5 мкг/мл. Вакцинный штамм № 475 был чувствительным к гентамицину с МПК 0,2 мкг/мл, а также к эритромицину, цефтриаксону и ампициллину с МПК 5 мкг/мл. Вакцинный штамм № 305 был чувствителен только к эритромицину с МПК 5 мкг/мл и устойчив к остальным трем антибиотикам. Вакцинный штамм № 703 был чувствительным к гентамицину и ампициллину с МПК 5 мкг/мл и устойчивым к эритромицину и цефтриаксону. Свежевыделенный штамм № 162 проявлял чувствительность к гентамицину c МПК 1 мкг/мл, а к эритромицину и ампициллину — с МПК 5 мкг/мл. Свежевыделенный штамм № 178 был чувствителен к гентамицину, эритромицину и ампициллину с МПК 5 мкг/мл. К цефриаксону штаммы № 162 и № 178 были устойчивы и формировали биопленки различной интенсивности — от умеренных до плотных — при всех использованных концентрациях антибиотика. Свежевыделенный штамм № 211 был чувствительным только к эритромицину с МПК 5 мкг/мл и проявлял устойчивость к гентамицину, цефтриаксону и ампициллину.
Обсуждение
Нами исследована чувствительность биопленок основных сероваров вакцинных и свежевыделенных штаммов коклюшного микроба к различным антибиотикам. В результате проведенных исследований были разработаны оптимальные условия оценки чувствительности биопленочных форм B. pertussis к антибиотикам разных групп. Интенсивность образования биопленок штаммами зависела от стартовой посевной дозы микробных клеток и концентрации антибиотиков. В качестве оптимальной посевной дозы микробных клеток была выбрана доза 5 МОЕ/мл, при использовании которой большинство штаммов формировали плотные биопленки при отсутствии в питательной среде антибиотиков.
Выявлены определенные различия между биопленками исследованных штаммов по чувствительности к антибиотикам. Наиболее высокой устойчивостью к антибиотикам отличались вакцинный штамм № 305 и свежевыделенный штамм № 211, проявлявшие чувствительность только к эритромицину. Вакцинный штамм № 703 был чувствителен к гентамицину и ампициллину и проявлял резистентность к эритромицину и цефтриаксону. Вакцинный штамм № 475 был чувствителен ко всем испытанным антибиотикам. Штамм Tohama 1 был резистентен к ампициллину и чувствителен к остальным антибиотикам. Свежевыделенные штаммы № 178 и № 162 были устойчивы к цефтриаксону и чувствительны к гентамицину, эритромицину и ампициллину. В доступной литературе имеются отдельные указания на возможность более высокой антибиотикорезистентности биопленок свежевыделенных штаммов коклюшного микроба по сравнению с вакцинными [8]. Полученные нами результаты указывают на отсутствие существенных различий между исследованными вакцинными и свежевыделенными штаммами по чувствительности к антибиотикам.
Полученные результаты указывают на гетерогенность исследованных нами вакцинных и свежевыделенных штаммов B. pertussis по чувствительности к антибиотикам. При этом высокая чувствительность штаммов к определенным антибиотикам сочеталась с резистентностью к антибиотикам других групп. Необходимо отметить высокие МПК антибиотиков для биопленок. МПК гентамицина составляла 0,2 мкг/мл для штамма № 475, 1 мкг/мл для штамма № 162 и 5 мкг/мл для штаммов Tohama 1, № 703 и № 178. МПК эритромицина и ампициллина составляли 5 мкг/мл для всех чувствительных к этим антибиотикам штаммов. МПК цефтриаксона для штаммов Tohama 1 и № 475 составляли 1 и 5 мкг/мл соответственно. В целом МПК использованных антибиотиков составляли от 0,2 до 5 мкг/мл. По данным литературы, МПК для планктонных культур коклюшного микроба, определенные традиционными методами, составляют: эритромицин — 0,1–0,125 мкг/мл, ампициллин — 0,12–0,5 мкг/мл, гентамицин — 0,06–0,5 мкг/мл, цефтриаксон — 0,19 мкг/мл [11][12]. Таким образом, биопленочные культуры B. pertussis отличаются более высокой устойчивостью к антибиотикам по сравнению с планктонными культурами.
Результаты проведенных исследований позволяют также сделать определенные выводы об эффективности исследованных антибиотиков по отношению к биопленочным культурам. Наибольшую активность проявлял эритромицин, подавлявший рост биопленок большинства исследованных штаммов. Только вакцинный штамм № 703 проявлял устойчивость к этому препарату. Эти результаты согласуются с данными других авторов о том, что эритромицин проявляет наиболее высокую активность in vitro по отношению к возбудителю коклюша [11][13][14]. К гентамицину были чувствительны 5 штаммов, а к ампициллину — 4 штамма. Наименее эффективным был цефтриаксон, подавлявший рост биопленок только 2 штаммов.
Механизмы повышенной устойчивости биопленок B. pertussis к антибиотикам до конца не изучены и могут быть связаны с рядом факторов, среди которых можно отметить особенности строения матрикса [5]. Полученные нами результаты указывают на целесообразность дальнейшего исследования чувствительности биопленок B. pertussis к антибиотикам и выяснения механизмов их высокой антибиотикорезистентности.
Об авторах
Е. М. Зайцев
ФГБНУ «НИИ вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова»
Автор, ответственный за переписку.
Email: pertussis@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-4813-9074
Зайцев Евгений Михайлович — д.м.н., зав. лаб. иммуномодуляторов
Москва
РоссияМ. В. Брицина
ФГБНУ «НИИ вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова»
Email: fake@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0002-3044-0790
Брицина Марина Васильевна — к.б.н., в.н.с. лаб. иммуномодуляторов
Москва
РоссияМ. Н. Озерецковская
ФГБНУ «НИИ вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова»
Email: fake@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0001-9809-4217
Озерецковская Мария Николаевна — к.м.н., в.н.с. лаб. иммуномодуляторов
Москва
РоссияН. У. Мерцалова
ФГБНУ «НИИ вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова»
Email: fake@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0002-9072-2538
Мерцалова Наталья Устиновна — к.б.н., в.н.с. лаб. иммуномодуляторов
Москва
РоссияИ. Г. Бажанова
ФГБНУ «НИИ вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова»
Email: fake@neicon.ru
ORCID iD: 0000-0003-1404-1498
Бажанова Ирина Глебовна — к.б.н., в.н.с. лаб. иммуномодуляторов
Москва
РоссияСписок литературы
- Kapil P., Merkel T.J. Pertussis vaccines and protective immunity. Curr. Opin. Immunol. 2019; 59: 72–8. https://doi.org/10.1016/j.coi.2019.03.006
- Barkoff A.M., He Q. Molecular epidemiology of Bordetella pertussis. Adv. Exp. Med. Biol. 2019; 1183: 19–33. https://doi.org/10.1007/5584_2019_402
- Борисова О.Ю., Гадуа Н.Т., Пименова А.С., Петрова М.С., Попова О.П., Алешкин В.А. и др. Структура популяции штаммов возбудителя коклюша на территории России. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2016; 15(4): 22–8.
- Kilgore P.E., Salim A.M., Zervos M.J., Schmitt H.J. Pertussis: microbiology, disease, treatment, and prevention. Clin. Microbiol. Rev. 2016; 29(3): 449–86. https://doi.org/10.1128/CMR.00083-15
- Cattelan N., Dubey P., Arnal L., Yantorno O.M., Deora R. Bordetella biofilms: a lifestyle leading to persistent infections. Pathog. Dis. 2016; 74(1): ftv108. https://doi.org/10.1093/femspd/ftv108
- Dorji D., Ross M.G., Singh A.K., Ramsay J.P., Price P., Lee S. Immunogenicity and protective potential of Bordetella pertussis biofilm and its associated antigens in a murine model. Cell Immunol. 2019; 337: 42–7. https://doi.org/10.1016/j.cellimm.2019.01.006
- Романова Ю.М., Гинцбург А.Л. Бактериальные биопленки как естественная форма существования бактерий в окружающей среде и организме хозяина. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2011; 88(3): 99–109.
- Dorji D., Graham R.M., Richmond P., Keil A., Mukkur T.K. Biofilm forming potential and antimicrobial susceptibility of newly emerged Western Australian Bordetella pertussis clinical isolates. Biofouling. 2016; 32(9): 1141–52. https://doi.org/10.1080/08927014.2016.1232715
- Зайцев Е.М., Брицина М.В., Озерецковская М.Н., Мерцалова Н.У., Бажанова И.Г. Образование биопленок свежевыделенными и вакцинными штаммами Bordetella pertussis разных сероваров. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2019; 96(5): 47–50. https://doi.org/10.36233/0372-9311-2019-5-47-50
- Ашмарин И.П., Воробьев А.А. Статистические методы в микробиологических исследованиях. Ленинград; 1962.
- Борисова О.Ю., Алёшкин А.В., Ивашинникова Г.А., Донских Е.Е., Постникова Е.А., Алёшкин В.А. Чувствительность штаммов Bordetella pertussis к антибактериальным препаратам. Детские инфекции. 2013; 12(2): 46–50.
- Lonnqvist E., Barkoff A.M., Mertsola J. Antimicrobial susceptibility testing of Finnish Bordetella pertussis isolates collected during 2006–2017. J. Glob. Antimicrob. Resist. 2018; 14: 12–6. https://doi.org/10.1016/j.jgar.2018.02.012
- Hua C.Z., Wang H.J., Zhang Z., Tao X.F., Li J.P., Mi Y.M., et al. In vitro activity and clinical efficacy of macrolides, cefoperazone-sulbactam and piperacillin/piperacillin-tazobactam against Bordetella pertussis and the clinical manifestations in pertussis patients due to these isolates: A single-centre study in Zhejiang Province, China. J. Glob. Antimicrob. Resist. 2019; 18: 47–51. https://doi.org/10.1016/j.jgar.2019.01.029
- Jakubů V., Zavadilová J., Fabiánová K., Urbášková P. Minimum inhibitory concentrations of erythromycin and other antibiotics for Czech strains of Bordetella pertussis. Epidemiol. Mikrobiol. Imunol. 2015; 64(1): 12–5.