MILIACINE INFLUENCE ON THE BIOFILM FORMATION OF BACTERIA

Cover Page


Cite item

Full Text

Abstract

Aim. The comparative estimation of miliacine influence on the biofilm formation of bacteria. Materials and methods. The objects of investigation were the clinical isolates of Salmonella enteritidis (28), Salmonella typhimurium (24), Klebsiella pneumoniae (8), Pseudomonas aeruginosa (8) and reference strains of lactobacilli (5) and bifidobacteria (3). Miliacin was obtained from crystals of millet oil. Antibacterial activity of miliacin was detected by the method of serial dilutions. For investigation of biofilms miliacin in 100 and 50 mkg/ml concentrations was used. Miliacin was diluted in Twin-21. Biofilm formation was studied by method of O'Toole G.A., Kolter R. (1998) using spectrophotometer Elx 808 (BioTek, USA). The morphometry of biofilms was conducted by atomic force microscopy with the use of scanning probe microscope SMM-2000. Results. Miliacin and its solvent did not influence the growth of bacteria. Maximum sensivity of biofilms to miliacin was detected in K. pneumoniae and P. aeruginosa, minimal - in S. enteritidis. Miliacin did not influence the biofilm formation in strains of lactobacilli and bifidobacteria. Conclusion. Miliacin in addition to immunotropic activity, detected earlier, can inhibit the biofilms of opportunistic and pathogenic bacteria without influence on the biofilm formation of representatives of usual flora.

About the authors

I. N. Chainikova

Institute of Cellular and Intracellular Symbiosis, Orenburg State Medical University

Author for correspondence.
Russian Federation

Yu. V. Filippova

Orenburg State Medical University

Russian Federation

B. A. Frolov

Orenburg State Medical University

Russian Federation

N. B. Perunova

Institute of Cellular and Intracellular Symbiosis

Russian Federation

E. V. Ivanova

Institute of Cellular and Intracellular Symbiosis

Russian Federation

T. A. Bondarenko

Institute of Cellular and Intracellular Symbiosis

Russian Federation

T. V. Panfilova

Orenburg State Medical University

Russian Federation

A. D. Zheleznova

Orenburg State Medical University

Russian Federation

Yu. A. Sarycheva

Orenburg State Medical University

Russian Federation

O. V. Bukharin

Institute of Cellular and Intracellular Symbiosis

Russian Federation

References

  1. Бухарин О.В., Перунова Н.Б. Микросимбиоценоз. Екатеринбург, 2014.
  2. Демаков В.А., Кузнецова М.В., КарпунинаТ.И., Николаева Н.В. Гидрофобные свойства и пленкообразующая способность штаммов рода Pseudomonas, изолированных из разных экологических ниш. Вестник Пермского университета. 2013, 1 (1): 55-56.
  3. Кириллов Д.А., Чайникова И.Н., Перунова Н.Б., Челпаченко О.Е., Паньков А.С., Смолягин А.И., Валышев А.В.Влияние иммуномодулятора полиоксидония на биологические свойства микроорганизмов. Журн. микробиол. 2003, 4: 74-78.
  4. Маянский А.Н., Чеботарь И.В. Стратегия управления бактриальным биопленочным процессом. Журн. инфектология. 2012, 4 (3): 5-15.
  5. Олифсон Л.Е., Осадчая Н.Д., Нузов Б.Г., Галкович К.Г., Павлова М.М. Химическая природа и биологическая активность милиацина. Вопросы питания. 1991, 2: 57-59.
  6. Романова Ю.М. Гинцбург А.Л. Бактериальные биопленки как естественная форма существования бактерий в окружающей среде и в организме хозяина. Журн. микро-биол. 2011,3:99-109.
  7. Толстикова Т.Г., Сорокина И.В., Толстиков Г.А., Толстиков А.Г., Флехтер О.Б. Терпе-ноиды ряда лупана - биологическая активность и фармакологические перспективы. Природные производные лупана. Биоорганическая химия. 2006, 1: 42-45.
  8. Уткина Т.М., Казакова О.Б., Медведева Н.И., Карташова О.Л. Структурнофункциональная характеристика производных бетулина. Антибиотики и химиотерапия. 2011,56: 11-12.
  9. Уткина Т.М., Потехина Л.П., Карташова О.Л., Васильченко А.С. Характеристика механизмов биологической активности циклоферона. Журн. микробиол. 2014, 4: 76-79.
  10. Фролов Б.А., Чайникова И.Н., Филиппова Ю.В., Смолягин А.И., Панфилова Т.В., Железнова А.Д. Механизмы реализации защитного действия милиацинадля экспериментальной сальмонеллезной инфекции: влияние на эндотоксинемию и продукцию цитокинов. Журн. микробиол. 2014, 5: 8-12.
  11. Chang Y., Gu W., Landsborough L.M. Low concentration of ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) affects biofilm formation of Listeria monocytogenes by inhibiting its initial adherence. Food Microbiol. 2012, 29 (1): 10-17.
  12. Lemos M., Burges A., Teodosio J. et al. The effects of ferulic and salicylic acids on Bacillus cereus and Pseudomonas fluorescens single-and dual-species biofilms. Int. Biodeterioration and Biodegradation. 2014, 86: 42-51.
  13. Nazzaro F., Erantianni E, Coppola R. Quorum sensing and phytochemicals. Int. J. Mol. Sci. 2013, 14 (6): 12607-12619.
  14. O'Toole G.A., Kolter R. Initiation of biofilm formation in Pseudomonas fluorescens WCS365 proceeds via multiple, convergent signalling pathways: agenetic analysis. Mol. Microbiol. 1998, 28 (3): 449-461.
  15. Wojnicz D., KucharskaA. Z., Sokol-Letowska A. et al. Medicinal plants extracts affect virulence factors expression and biofilm formation by the uropathogenic Escherichia coli. Urol. Res. 2012,40 (6): 683-697.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2016 Chainikova I.N., Filippova Y.V., Frolov B.A., Perunova N.B., Ivanova E.V., Bondarenko T.A., Panfilova T.V., Zheleznova A.D., Sarycheva Y.A., Bukharin O.V.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС77-75442 от 01.04.2019 г.