Journal of microbiology, epidemiology and immunobiologyJournal of microbiology, epidemiology and immunobiologyЖурнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии0372-93112686-7613Central Research Institute for Epidemiology6210.36233/0372-9311-2016-4-3-9ORIGINAL RESEARCHESОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯMILIACINE INFLUENCE ON THE BIOFILM FORMATION OF BACTERIAMILIACINE INFLUENCE ON THE BIOFILM FORMATION OF BACTERIAChainikovaI. N.ЧайниковаИ. Н.
Russian Federation
FilippovaYu. V.ФилипповаЮ. В.
Russian Federation
FrolovB. A.ФроловБ. А.
Russian Federation
PerunovaN. B.ПеруноваН. Б.
Russian Federation
IvanovaE. V.ИвановаЕ. В.
Russian Federation
BondarenkoT. A.БондаренкоТ. А.
Russian Federation
PanfilovaT. V.ПанфиловаТ. В.
Russian Federation
ZheleznovaA. D.ЖелезноваА. Д.
Russian Federation
SarychevaYu. A.СарычеваЮ. А.
Russian Federation
BukharinO. V.БухаринО. В.
Russian Federation
Institute of Cellular and Intracellular Symbiosis, Orenburg State Medical UniversityИнститут клеточного и внутриклеточного симбиоза, Оренбургский государственный медицинский университетOrenburg State Medical UniversityОренбургский государственный медицинский университетInstitute of Cellular and Intracellular SymbiosisИнститут клеточного и внутриклеточного симбиоза280820169343910042019Copyright ©; 2016, Chainikova I.N., Filippova Y.V., Frolov B.A., Perunova N.B., Ivanova E.V., Bondarenko T.A., Panfilova T.V., Zheleznova A.D., Sarycheva Y.A., Bukharin O.V.Copyright ©; 2016, Чайникова И.Н., Филиппова Ю.В., Фролов Б.А., Перунова Н.Б., Иванова Е.В., Бондаренко Т.А., Панфилова Т.В., Железнова А.Д., Сарычева Ю.А., Бухарин О.В.2016Chainikova I.N., Filippova Y.V., Frolov B.A., Perunova N.B., Ivanova E.V., Bondarenko T.A., Panfilova T.V., Zheleznova A.D., Sarycheva Y.A., Bukharin O.V.Чайникова И.Н., Филиппова Ю.В., Фролов Б.А., Перунова Н.Б., Иванова Е.В., Бондаренко Т.А., Панфилова Т.В., Железнова А.Д., Сарычева Ю.А., Бухарин О.В.https://creativecommons.org/licenses/by/4.0https://microbiol.crie.ru/jour/article/view/62

Aim. The comparative estimation of miliacine influence on the biofilm formation of bacteria. Materials and methods. The objects of investigation were the clinical isolates of Salmonella enteritidis (28), Salmonella typhimurium (24), Klebsiella pneumoniae (8), Pseudomonas aeruginosa (8) and reference strains of lactobacilli (5) and bifidobacteria (3). Miliacin was obtained from crystals of millet oil. Antibacterial activity of miliacin was detected by the method of serial dilutions. For investigation of biofilms miliacin in 100 and 50 mkg/ml concentrations was used. Miliacin was diluted in Twin-21. Biofilm formation was studied by method of O'Toole G.A., Kolter R. (1998) using spectrophotometer Elx 808 (BioTek, USA). The morphometry of biofilms was conducted by atomic force microscopy with the use of scanning probe microscope SMM-2000. Results. Miliacin and its solvent did not influence the growth of bacteria. Maximum sensivity of biofilms to miliacin was detected in K. pneumoniae and P. aeruginosa, minimal - in S. enteritidis. Miliacin did not influence the biofilm formation in strains of lactobacilli and bifidobacteria. Conclusion. Miliacin in addition to immunotropic activity, detected earlier, can inhibit the biofilms of opportunistic and pathogenic bacteria without influence on the biofilm formation of representatives of usual flora.

Цель. Сравнительная оценка влияния милиацина на биопленкообразование (БПО) бактерий. Материалы и методы. Объект исследования - клинические изоляты Salmonella enteritidis (28), Salmonella typhimurium (24), Klebsiella pneumoniae (8), Pseudomonas aeruginosa (8) и эталонные штаммы лактобацилл (5) и бифидобактерий (3). Милиацин получен из кристаллов просяного масла. Антибактериальную активность милиацина определяли методом серийных разведений. Для исследования .биопленок использован милиацин в концентрации 100 и 50 мкг/мл. Милиацин растворяли в Твин-21. БПО изучали методом O’TooleG.A., KolterR. (1998)сиспользованием спектрофотометра Е1х 808 (BioTek, США). Морфометрию биопленки выполняли с помощью атомно-силовой микроскопии с использованием сканирующего зондового микроскопа SMM-2000. Результаты. Милиацин и его растворитель не влияли на рост бактерий. Наибольшая чувствительность биопленок к милиацину выявлена у К. pneumoniae и Р. aeruginosa, наименьшая - у S. enteritidis. Милиацин не влиял на БПО штаммов лактобацилл и бифидобактерий. Заключение. Милиацин наряду с иммунотропной активностью, выявленной ранее, ингибирует биопленки условно патогенных и патогенных бактерий, не влияя на БПО представителей нормофлоры.

triterpenoidsmiliacinbiofilm formation of bacteriaтритерпеноидымилиацинбиопленкообразование бактерийБухарин О.В., Перунова Н.Б. Микросимбиоценоз. Екатеринбург, 2014.Демаков В.А., Кузнецова М.В., КарпунинаТ.И., Николаева Н.В. Гидрофобные свойства и пленкообразующая способность штаммов рода Pseudomonas, изолированных из разных экологических ниш. Вестник Пермского университета. 2013, 1 (1): 55-56.Кириллов Д.А., Чайникова И.Н., Перунова Н.Б., Челпаченко О.Е., Паньков А.С., Смолягин А.И., Валышев А.В.Влияние иммуномодулятора полиоксидония на биологические свойства микроорганизмов. Журн. микробиол. 2003, 4: 74-78.Маянский А.Н., Чеботарь И.В. Стратегия управления бактриальным биопленочным процессом. Журн. инфектология. 2012, 4 (3): 5-15.Олифсон Л.Е., Осадчая Н.Д., Нузов Б.Г., Галкович К.Г., Павлова М.М. Химическая природа и биологическая активность милиацина. Вопросы питания. 1991, 2: 57-59.Романова Ю.М. Гинцбург А.Л. Бактериальные биопленки как естественная форма существования бактерий в окружающей среде и в организме хозяина. Журн. микро-биол. 2011,3:99-109.Толстикова Т.Г., Сорокина И.В., Толстиков Г.А., Толстиков А.Г., Флехтер О.Б. Терпе-ноиды ряда лупана - биологическая активность и фармакологические перспективы. Природные производные лупана. Биоорганическая химия. 2006, 1: 42-45.Уткина Т.М., Казакова О.Б., Медведева Н.И., Карташова О.Л. Структурнофункциональная характеристика производных бетулина. Антибиотики и химиотерапия. 2011,56: 11-12.Уткина Т.М., Потехина Л.П., Карташова О.Л., Васильченко А.С. Характеристика механизмов биологической активности циклоферона. Журн. микробиол. 2014, 4: 76-79.Фролов Б.А., Чайникова И.Н., Филиппова Ю.В., Смолягин А.И., Панфилова Т.В., Железнова А.Д. Механизмы реализации защитного действия милиацинадля экспериментальной сальмонеллезной инфекции: влияние на эндотоксинемию и продукцию цитокинов. Журн. микробиол. 2014, 5: 8-12.Chang Y., Gu W., Landsborough L.M. Low concentration of ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) affects biofilm formation of Listeria monocytogenes by inhibiting its initial adherence. Food Microbiol. 2012, 29 (1): 10-17.Lemos M., Burges A., Teodosio J. et al. The effects of ferulic and salicylic acids on Bacillus cereus and Pseudomonas fluorescens single-and dual-species biofilms. Int. Biodeterioration and Biodegradation. 2014, 86: 42-51.Nazzaro F., Erantianni E, Coppola R. Quorum sensing and phytochemicals. Int. J. Mol. Sci. 2013, 14 (6): 12607-12619.O'Toole G.A., Kolter R. Initiation of biofilm formation in Pseudomonas fluorescens WCS365 proceeds via multiple, convergent signalling pathways: agenetic analysis. Mol. Microbiol. 1998, 28 (3): 449-461.Wojnicz D., KucharskaA. Z., Sokol-Letowska A. et al. Medicinal plants extracts affect virulence factors expression and biofilm formation by the uropathogenic Escherichia coli. Urol. Res. 2012,40 (6): 683-697.