EVALUATION OF NUTRIENT MEDIA TO GROW SOME INFECTION DISEASES CAUSATIVE AGENTS

Cover Page


Cite item

Full Text

Abstract

The detection methods for microbial agents that have epidemiological significance are diversity but cultivation on nutritional media remains the gold standard in microbiological diagnostics. Choice of medium depends on the conditions in which, bacteria were early and is present. The nature life determines its physiological peculiarity then a metabolic plasticity promote to survive and to save the virulence. In. this review on the example of Yersinia pestis and Vibrio cholerae performed evaluations of the efficient decisions for the bacterial media development. It is declared advantage of baker’s yeast hydrolisate as the nutrition media base.

About the authors

D. I. Kaminsky

Rostov-on-Don Research Institute for Plague Control

Author for correspondence.
Email: noemail@neicon.ru
Россия

V. V. Lobanov

Rostov-on-Don Research Institute for Plague Control

Email: noemail@neicon.ru
Россия

K. K. Rozhkov

Rostov-on-Don Research Institute for Plague Control

Email: noemail@neicon.ru
Россия

A. B. Mazrukho

Rostov-on-Don Research Institute for Plague Control

Email: noemail@neicon.ru
Россия

References

  1. Антонов В.А., Викторов Д.В. О совершенствовании средств иммунодиагностики инфекционных болезней. Пробл. особо опасных инф. 2016, 1: 48-51.
  2. Ахапкина И.Г., Блинкова Л.П. Питательные среды как искусственная среда роста и развития микроорганизмов. Журн. микробиол. 2001, 6: 99-104.
  3. Берри Д. Биология дрожжей: перевод с англ. М.: Мир, 1985.
  4. Бирюков В.В. Основы промышленной биотехнологии. М., Колос С, Химия, 2004.
  5. Бухарин О.В. Инфекция - модельная система ассоциативного симбиоза. Журн. микробиол. 2009,1: 83-86.
  6. Вертиев Ю.В. Токсин-опосредованная обусловленность инфекционных заболеваний. Журн. микробиол. 1987, 3: 86-93.
  7. Водопьянов С.О. Влияние сигнала «37°С - низкий pH» на клетки чумного микроба. Микробиол. журнал. 1990, 52 (5): 88-92.
  8. Домарадский И.В. Чума. М.: Медицина, 1998.
  9. Дуванова О.В., Мишанькин Б.Н., Романова Л.В., Титова С.В. Хитинолитический комплекс Vibrio cholerae: состав и роль в персистенции. Журн. микробиол. 2016, 5: 94101.
  10. Заднова С.П. Штаммы Vibrio cholerae с измененной экспрессией генов вирулентности. Автореф. дис. д-ра биол. наук. Саратов, 2009.
  11. Кажал Н., Ифтимович Р. Из истории борьбы против микробов и вирусов. Бухарест, Научное изд-во, 1968.
  12. Козлов Ю.А. Питательные среды в медицинской микробиологии. М.: Медгиз, 1950.
  13. Коновалов С.А. Биохимия дрожжей. М.: Пищевая промышленность, 1980.
  14. Лабораторная диагностика опасных инфекционных болезней. Г.Г. Онищенко, В.В.Кутырев (ред.). М.: Шико, 2013.
  15. Мазрухо А.Б., Каминский Д.И., Алутин И.М., Рожков К.К. Способ получения белкового гидролизата. Патент RU №2375441. Дата публикации 10 декабря 2009 г. Бюл. № 34.
  16. Мазрухо А.Б., Каминский Д.И., Телесманич Н.Р. Использование новых питательных сред на этапах подготовки сотрудников специализированных противоэпидемических бригад к работе в зонах чрезвычайных ситуаций. Медико-биологические и социальнопсихологические проблемы безопасности в чрезвычайных ситуациях. 2010, 3: 75-80.
  17. Мазрухо А. Б., Каминский Д.И., Ломов Ю.М., Телесманич Н.Р, Рожков К. К., Кругликов В.Д. Сравнительная оценка белковых гидролизатов при создании на их основе универсальной питательной среды для диагностики чумы и холеры. Клин. лаб. диагн. 2011, 6: 46-49.
  18. Мазрухо АБ., Каминский Д.И., Ломов Ю.М., Телесманич Н.Р., Рожков К.К., Кругликов В.Д. Новая питательная среда для культивирования и выделения чумного микроба ЧДС-37 как элемент мобилизационного резерва специализированных противоэпидемических бригад Роспотребнадзора. Клин. лаб. диагн. 2011, 4: 48-50.
  19. Мазрухо А.Б., Каминский Д.И., Ломов Ю.М., Телесманич Н.Р, Рожков К.К., Алутин И.М., Кругликов В.Д., Пухов Ю.М., Прометной В.И., Тришина А.В. Алгоритм и тактика обеспечения питательными средами специализированных противоэпидемических бригад Роспотребнадзора в очаге холеры. ЗНиСО, 2009, 11: 8-16.
  20. Мазрухо А.Б., Каминский Д.И., Рожков К.К., Алутин И.М. Среда обогащения для выявления холерного вибриона. Патент РФ 2392310. Публикация патента 20.06. 2010.
  21. Меджидов М.М., Султанов 3.3. Использование непищевого сырья в производстве микробиологических питательных сред. Махачкала, Дагестанское книжное издательство, 1986.
  22. Мейнел Дж., Мейнел Э. Экспериментальная микробиология: перевод с англ. М.: Мир, 1967.
  23. Методы общей бактериологии. Т. 1. Ф.Герхардт (ред.): перевод с англ. М.: Мир, 1983.
  24. МУК 4.2.2136-08. Методы контроля бактериологических питательных сред: методические указания. М.: Федеральный центр гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора, 2008.
  25. Оганесянц Л.В., Бакулин В.П., РейтблатБ.Б. ПатентКИ № 2375440. Способ получения автолизата дрожжей. Дата публикации 10.12.2009.
  26. Онищенко Г.Г., Федоров Ю.М., Жилина Н.Я. и др. Практическое пособие для подготовки врачей-бактериологов и эпидемиологов по вопросам противодействия биотерроризму. Волгоград, 2004.
  27. Определитель бактерий Берджи. Т. 1. Дж.Хоулт, Н.Криг; П.Снит (ред.): перевод с англ. М.: Мир, 1997.
  28. Поляк М.С., Сухаревич В.И., Сухаревич М.Э. Питательные среды для медицинской микробиологии. СПб, ЭЛБИ - СПб, 2008.
  29. Способ определения зараженности продовольствия патогенными биологическими агентами в условиях чрезвычайных ситуаций. Патент RU № 2350656. Публикация патента 27.03.2009.
  30. Сулейменов Б.М. Энзоотия и эпизоотия чумы. Алматы, 2009.
  31. Шепелин А.П., Миронов А.Ю., Шепелин К.А. Питательные среды. Справочник бактериолога. М.: Эпидбиомедиагностика, 2015.
  32. Chouikha Iman, Hinnebush В. J. Silencing urease: a key evolutionary step that facilitated the adaptation ofYersinia pestis to the flea-borne transmission route. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2014, 111 (52): 18709-18714.
  33. Crepin L. Sequential use of nitrogen compounds by Saccharomyces cerevisiae during wine fermentation: a model based on kinetic and regulation characteristics of nitrogen permeases. Appl. Environ. Microbiol. 2012, 78 (22): 8102-8111.
  34. Faruque S., Choudhury N., Kamruzzaman M. et al. Genetic diversity and virulence potential of environmental Vibrio cholerae population in a cholera endemic area. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2004, 101 (7): 2123-2128.
  35. Guthke R., Linde J., Meeh F., Fisse T. Systems biology of microbial infectious. Front Microbiol. 2012, 3: 328.
  36. Hanscho M., Ruckebauer D.E., Chauhan N. et al. Nutritional requirements of the BY of Saccharomyces cerevisiae for optimization of metabolic engineering applications. FEMS Yeast Res. 2012, 12 (7): 796-808.
  37. Iwanaga M., Yamamoto K. New medium for the production of cholera toxin by Vibrio cholerae 01 biotype El Tor. J. Clin. Microbiol. 1985, 22 (3): 405-408.
  38. Kirchberg PC., Orata F.D., Barlow E.J. et al. A small number of phylogenetically distinct clonal complexes dominate a coastal Vibrio cholerae population. Appl. Environ. Microbiol. 2016, 82 (18): 5576-5586.
  39. KochAL. Microbiol physiology and ecology of slow growth. Microbiol. Mol. Biol. Rev, 1997, 61 (3): 305-318.
  40. Lenz J.D., Temple B.R.S., Miller V.L. Evoluation and virulence contributions of avtotrans-porter proteins Yap and YapK of Yersinia pestis CO92 and their homologs in Yersinia. pseudotuberculosis JP32953. Infect. Immun. 2012, 80 (10): 3693-3705.
  41. Liu Zhi, Stirling Fine R., Jun Zhu. Temporal quorum-sensing induction regulates Vibrio cholerae biofilm architecture. Infect. Immun. 2007, 75: 122-126.
  42. Microbiology manual: LPRO UBA-V Product management microbial. Merck. 1996, 2 (1): 321.
  43. Moulder J.W Comparative biologv of intracellular parasitism. Microbiol. Rev. 1985, 49 (3): 298-337.
  44. NordmannP, GirlichD., Poirel L. Detection ofcarbapenemase produce in Enterobacteriaceae by use of a novel screening medium. J. Clin. Microbiol. 2012, 50 ( 8): 2761-2766.
  45. Plague manual: Epidemiology. Distribution, Survellance and Control. Laboratory Diagnosis. Mode of access: htip:/7wwwwu.TimtWhOC4M/C4^B/MD^//9^/d//Bn.
  46. Rosec J.P., CausseV., Cruz B. et al. The international standard iSo/TS 21872-1 to study the occurrence of total and pathogenic Vibrio parahaemolyticus and Vibrio cholerae in seafood: ITS improvement by use of chromogenic medium and PCR. Int. J. Food Microbiol. 2012, 157 (2): 189-194.
  47. Sarma Z., Heifetz M., Talmor J. et al. Evaluation of use of a new chromogenic agar in detection of urinary tract pathogens. J. Clin. Microbiol. 1998, 36 (4): 990-994.
  48. Sikora A.E., Beyhan S., Yildiz F.H. Cell envelope perturbation induces oxidative stress and changes in iron homeostasis in Vibrio cholerae. J. Bacteriol. 2009, 191 (17): 5398-5408.
  49. Townsley L., Mangus M.P.S., Mehic S., Yildiz F.H. Response of Vibrio cholerae to low-temperature shifte: CspV regulation of VI secretion, biofilm formation, and association with zooplancton. Appl. Environ. Microbiol. 2016, 82 (14): 4441-4452.
  50. Xu Q., Dziejman M., Mekalanos J.J. Determination of the transcriptome of Vibrio cholerae during intraintestinal growth and midexponential phase in vitro. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2003, 100 (3): 1285-1291.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2017 Kaminsky D.I., Lobanov V.V., Rozhkov K.K., Mazrukho A.B.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС77-75442 от 01.04.2019 г.


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies