SENSITIVITY TO ANTIBACTERIAL PREPARATIONS OF VIBRIO CHOLERAE EL TOR STRAINS ISOLATED FROM THE ENVIRONMENTAL OBJECTS IN RUSSIA IN 2005-2012


Cite item

Full Text

Abstract

Aim. Analysis of antibiotic resistance profiles of Vibrio cholerae O1 strains isolated from the environmental objects in the territory of Russia in 2005 - 2012. Materials and methods. Antibiotocograms of 52 strains of V. cholerae were determined by serial dilution method in dense nutrient medium. Interpretation of the results was carried out in accordance with guidelines MI 4.2.2495-09 (2009). Results. All the cultures turned out to be sensitive to tetracyclines, ciprofloxacin, cephalosporins. Isolates from Stavropol region were resistant to furazolidone (33.3%), trimethoprim/sulfamethoxazole (100%). Strains resistant to ampicillin, streptomycin, rifampicin (7%), furazolidone (43%), trimethoprim/sulfamethoxazole (100%) were isolated in Primorsky region. In Irkutsk region and Kalmykia - to furazolidone and trimethoprim/sulfamethoxazole (11 - 89%), ampicillin (8.3 - 11%). Analysis of antibioticograms gives evidence on the occurrence in the studied strains of 1 to 5 r-determinants of antibiotic resistance in various combinations. Conclusion. The data obtained give evidence on preservation of the tendency to expand the specter of antibiotic resistance in V. cholerae О1 isolated from environmental objects that necessitates a more rational and effective use of antibacterial preparations, determination of antiobioti-cogram for every isolated culture, strict bacteriologic control during the course of etiotropic therapy for the prevention of increase of number of resistant strains.

Full Text

Одной из особенностей VII пандемии холеры является циркуляция в различных регионах мира, в том числе и в России, антибиотикорезистентных штаммов холерных вибрионов. Способность возбудителя сохраняться в водных экосистемах в межэпи-демический период [4, 5], идентичность культур, выделенных от больных и из объектов окружающей среды, включая их антибиотикограммы [7], подтверждают реализацию водного пути передачи инфекции [6, 10], что делает необходимым проведение мониторинга водных объектов с определением антибиотикочувствительности культур и является одной из важнейших задач лабораторной диагностики и эпидемического надзора за холерой. Цель исследования - анализ профиля антибиотикорезистентности штаммов холерных вибрионов О1 серогруппы, выделенных из объектов окружающей среды на территории Российской Федерации в 2005 - 2012 гг. Из музея живых культур Ростовского-на-Дону противочумного института были взяты штаммы Vibrio cholerae О1, выделенные из объектов окружающей среды в Российской Федерации в 2005 - 2012 гг.: в Ставропольском крае в 2005, 2006 гг (ctxA-tcpA-) (3 штамма), в Приморском крае в 2005 - 2008 гг. (ctxA- tcpA-) (14 штаммов), в Иркутской области в 2007 - 2009 гг. (ctxA- tcpA-) (12 штаммов), в Калмыкии в 2005 - 2012 гг (ctxA- tcpA-) (18 штаммов), в Калмыкии в 2012 г (ctxA- tcpA+) (4 штамма), в Ростовской области в 2011 г (ctxA+ tcpA+) (1 штамм). Антибиотикочувствительные штаммы Vcholerae О1 Р-5879 ctx+tcpA+toxR+ (1972 г., Таганрог) и Vcholerae non О1/ non О139 Р-9741 (КМ 162) (ctxA- tcpA-) использовали в качестве контроля. Антибактериальные препараты: доксициклин, тетрациклин, левомицетин (хло-рамфеникол), рифампицин, стрептомицин, ампициллин, фуразолидон - препараты отечественного производства; налидиксовая кислота (невиграмон, Chinoin, Венгрия), ципрофлоксацин (квинтор, ТоррентФарм.Лтд, Индия), триметоприм/сульфаметок-сазол (бикотрим, Adgio, Индия), цефтриаксон (офрамакс, Ranbaxy, Индия). Чувствительность/устойчивость изучаемых штаммов к антибактериальным препаратам определяли методом серийных разведений в плотной питательной среде (агар Мюллера-Хинтона, рН 7,5; HIMEDIA, Индия). Посевная доза взвесей 16 - 18-часовых агаровых культур составляла nx 106 м.к. по отраслевому стандарту мутности ГИСК им. Л.А.Тарасевича (ОСО-42-25-59-86 П). Интерпретацию результатов проводили в соответствии с [8]. Доверительные интервалы (ДИ) для частот и долей рассчитывали по методу Вальда с коррекцией по Агрести-Коуллу с вероятностью 95% [2]. Изучение антибиотикограмм штаммов V.cholerae О1 показало, что все культуры сохраняли чувствительность к тетрациклинам (тетрациклин и доксициклин) (МПК=0,25-1,0 мг/л), ципрофлоксацину (МПК=0,01 мг/л) и цефтриаксону (МПК=0,2-0,4 мг/л). Штаммы, выделенные на территории Ставропольского края в 2005, 2006 гг, в 33,3 (5,6 - 80)% случаев были устойчивы к фуразолидону (МПК=32,0 мг/л) и в 100% - к триметоприму/ сульфаметоксазолу (МПК=8,0/40,0 мг/л). В Приморском крае в 2005 - 2008 гг. выделяли культуры, в 7 (<0,01 - 33,5)% резистентные к ампициллину (МПК=16,0 мг/л), стрептомицину (МПК=64,0 мг/л), рифампицину (МПК=32,0 мг/л); в 43 (21 - 67,5)% - к фуразолидону (МПК=32,0 - 64,0 мг/л), в 100% - к триметоприму/ сульфаметоксазолу (МПК=8,0/40,0 мг/л). У изолятов из Иркутской области (2007 - 2009 гг.) и Калмыкии (2005 - 2012 гг.) устойчивость к ампициллину составила 8,3 (<0,01 - 37,5) - 11 (1,8 - 34)% (МПК=16,0 - 32,0 мг/л), а к фуразолидону и триметоприму/сульфаметоксазолу - 11 (1,8 - 34) - 89 (66 - 98)% (МПК=32,0 и 8,0/40,0 мг/л, соответственно). Из водных объектов Калмыкии также были выделены 4 штамма, содержащие гены tcpA. V. cholerae О1 с такой характеристикой вызвали эпидемические осложнения в Ростовской области в 2005 г. [6], что подтверждает возможность включения их в эпидемический процесс. Эти культуры были устойчивы к фуразолидону (МПК=64,0 мг/л) и триметоприму/ сульфаметоксазолу (МПК=8,0/40,0 мг/л). Штамм V.cholerae О1, выделенный из морской воды в Таганроге (Ростовская область) в 2011 г., оказался токсигенным и содержал гены ctxA+ tcpA+. Потенциальная опасность этого штамма вызывать холеру усугубляется наличием у него устойчивости к налидиксовой кислоте (МПК=16,0 мг/л), стрептомицину (МПК=128,0 мг/л), фуразолидону (МПК=64,0 мг/л), триметоприму/ сульфаметоксазолу (МПК=64,0/320,0 мг/л) и промежуточной устойчивости к левомицетину (МПК=8,0 мг/л). Анализ антибиотикограмм штаммов свидетельствует о встречаемости у холерных вибрионов О1серогруппы, выделенных из воды, различных r-детерминант резистентности и разнообразии их сочетаний. Выделяли культуры как устойчивые всего к одному препарату (триметоприму/сульфаметоксазолу), так и имеющие множественную антибиотикорезистентность (3 - 5 антибактериальных препаратов). У исследованных культур выявлена устойчивость к традиционно применяемым для лечения холеры антибактериальным препаратам. При этом большинство культур были резистентны к фуразолидону и триметоприму/ сульфаметоксазолу. Устойчивость к тетрациклинам, не зарегистрированная у изученных штаммов, носит индуцибель-ный характер, что свидетельствует о возможном отсутствии клинического эффекта при использовании их для этиотропной терапии даже при сохранении чувствительности in vitro [9]. Особого внимания, на наш взгляд, заслуживает наличие у токсиген-ного штамма V.cholerae О1 (ctxA+ tcpA+), выделенного в Ростовской области в 2011 г., устойчивости к налидиксовой кислоте, т.к. резистентность к этому препарату может сопровождаться повышением значений МПК фторхинолонов и приводить к снижению или утрате их эффективности [3]. Вышесказанное вызывает необходимость более рационального и эффективного использования антибактериальных препаратов для предупреждения роста количества устойчивых штаммов. Регулярное исследование антибиотикочувствительности холерных вибрионов О1 серогруппы, изолированных из окружающей среды, позволяет понять частоту возникновения устойчивости, ее характер и происхождение, выявить тенденции в изменении антибиотикочувствительности и причины неудач в борьбе с микроорганизмами [1], а также использовать результаты в эпидемиологическом надзоре [11]. Для эффективной этиотропной терапии и профилактики холеры необходимо проводить определение антибиотикочувствительности выделенной от больного культуры в каждом конкретном случае со своевременной заменой антибактериального препарата при его неэффективности.
×

About the authors

N. A Selyanskaya

Rostov Institute of Plague Control, Rostov-on-Don, Russia

A. V Trishina

Rostov Institute of Plague Control, Rostov-on-Don, Russia

L. M Verkina

Rostov Institute of Plague Control, Rostov-on-Don, Russia

I. V Arkhangelskaya

Rostov Institute of Plague Control, Rostov-on-Don, Russia

V. D Kruglikov

Rostov Institute of Plague Control, Rostov-on-Don, Russia

N. G Zheleznyak

Rostov Institute of Plague Control, Rostov-on-Don, Russia

S. V Titova

Rostov Institute of Plague Control, Rostov-on-Don, Russia

References

  1. Виноградова К.А., Булгакова В.Г., Полин А.Н., Кожевин П.А. Устойчивость микроорганизмов к антибиотикам: резистома, ее объем, разнообразие и развитие. Антибиотики и химиотерапия. 2013, 5-6: 38-48.
  2. Гржибовский А.М. Доверительные интервалы для частот и долей. Экология человека. 2008, 5: 57-60.
  3. Дудина Н.А., Рыжко И.В., Ломов Ю.М., Цураева Р.И., Шутько А.Г. Активность антибактериальных препаратов различных групп in vitro и in vivo в отношении штаммов холерного вибриона эльтор, выделенных в г.Казани в 2001г. Успехи совр. естествознан. 2003, 6: 48-49.
  4. Литвин В.Ю. Экосистемный пусковой механизм эпидемического проявления сапронозов (на примере холеры Эль-Тор). Журн. микробиол. 1996, 3: 11-15.
  5. Михайлова А.Е., Хайтович А.Б. Vibrio cholerae О1 биовара eltor в окружающей среде. Журн. микробиол. 2002, 2: 14-17.
  6. Онищенко Г.Г., Ломов Ю.М., Москвитина Э.А., Подосинникова Л.С. Водяницкая С.Ю., Прометной В.И., Монахова Е.В., Водопьянов С.О., Телесманич Н.Р., Дудина Н.А. Холера, обусловленная Vibrio cholerae О1ctxAB- tcpA+. Журн. микробиол. 2007, 1: 23-29.
  7. Онищенко Г.Г., Ломов Ю.М., Мишанькин Б.Н., Мазрухо Б.Л., Подосинникова Л.С., Кудрякова ТА., Москвитина Э.А , Водопьянов С.О., Рыжко И.В., Казакова Е.С. Шарова И.Н. Плотникова Е.А., Давыдова Н.А., Абрамова Е.Г. Характеристика холерных вибрионов эльтор, выделенных в г. Казань в 2001 г. Журн. микробиол. 2002, 2: 3-6.
  8. Определение чувствительности возбудителей опасных бактериальных инфекций (чума, сибирская язва, холера, туляремия, бруцеллез, сап, мелиоидоз) к антибактериальным препаратам. мУк 4.2.2495-09. М., 2009.
  9. Селянская Н.А., Рыжко И.В., Веркина Л.М., Тришина А.В., Миронова А.В. Индукция трансмиссивной устойчивости к тетрациклину, хлорамфениколу и ампициллину у культур Vibrio cholerae не О1/ не О139 серогрупп, выделенных в 1990-2005 гг. Антибиотики и химиотерапия. 2011, 7-8: 16-21.
  10. Солодовников Ю.П., Иваненко А.В., Устюжанин В.Ю., Мефодьев В.В., Филатов Н.Н., Самчук Г.Ф., Ушакова Н.С. Классификация кишечных инфекций: инфекции, ассоциированные с водным и пищевым путями передачи возбудителя. Журн. микробиол. 2009, 1: 94-96.
  11. Хайтович А.Б. Биологические свойства Vibrio cholerae как составная часть эпиднадзора за холерой. Журн.микробиол. 2001, 1: 5-9.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download

Copyright (c) 2014 Selyanskaya N.A., Trishina A.V., Verkina L.M., Arkhangelskaya I.V., Kruglikov V.D., Zheleznyak N.G., Titova S.V.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС77-75442 от 01.04.2019 г.


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies