СРАВНЕНИЕ ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ ЭФФЕКТИВНОСТИ МЕТОДОВ ДЕТЕКЦИИ COXIELLA BURNETII В КРОВИ БОЛЬНЫХ ЛИХОРАДКОЙ КУ НА ОСНОВЕ АМПЛИФИКАЦИИ ФРАГМЕНТОВ ГЕНА 16S рРНК (СТАНДАРТНАЯ ПЦР) И ГЕНА groEL (ПЦР В РЕЖИМЕ РЕАЛЬНОГО ВРЕМЕНИ)
- Авторы: Панфёрова Ю.А.1, Фрейлихман О.А.1, Токаревич Н.К.1, Карпенко С.Ф.2, Галимзянов Х.М.2
-
Учреждения:
- НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Пастера
- Астраханский государственный медицинский университет
- Выпуск: Том 93, № 3 (2016)
- Страницы: 70-74
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- Дата подачи: 10.04.2019
- Дата публикации: 28.06.2016
- URL: https://microbiol.crie.ru/jour/article/view/52
- DOI: https://doi.org/10.36233/0372-9311-2016-3-70-74
- ID: 52
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Ключевые слова
Об авторах
Ю. А. Панфёрова
НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Пастера
Автор, ответственный за переписку.
Email: noemail@neicon.ru
Россия
О. А. Фрейлихман
НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Пастера
Email: noemail@neicon.ru
Россия
Н. К. Токаревич
НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Пастера
Email: noemail@neicon.ru
Россия
С. Ф. Карпенко
Астраханский государственный медицинский университет
Email: noemail@neicon.ru
Россия
Х. М. Галимзянов
Астраханский государственный медицинский университет
Email: noemail@neicon.ru
Россия
Список литературы
- Бармин А.Н., Колчин Е.А., Шуваев Н.С., Дмитриева М.В. Анализ проявления природно-очаговых заболеваний на территории Астраханской обл. Естес. науки. 2012, 3 (40): 44-50.
- Садретдинов Р.А, Галимзянов Х.М. Гемодинамические типы микроциркуляции у больных инфекционными лихорадками. Фундамент, исслед. 2010, 7: 63-66.
- Фрейлихман О.А., Панфёрова Ю.А., Токаревич Н.К. Совершенствование метода детекции Coxiella burnetii в биологическом материале на основе амплификации гена groEL. Журн. микробиол. 2010, 4: 71-74.
- Arricau-Bouvery N., HauckY., BejaouiA. etal. Molecular characterisation of Coxiella burnetii isolates by infrequent restriction site-PC Rand MLVA typing. BMC Microbiology. 2006,6 (38). doi: 10.1186/1471-2180-6-38.
- Bielawska-Drozd A., Cieslik P., Mirski T. et al. Q fever - selected issues. Ann. Agric. Environmental Med. 2013, 20 (2): 222-232.
- Freylikhman O., Tokarevich N., Suvorov A. et al. persistence in three generation of mice after application of live attenuated human M-44 vaccine against Q fever. Ann. N.Y. Acad. Sci. 2003, 990: 496-499.
- Jaton K., Peter O., Raoult D. et al. Development of a high throughput PCR to detect Coxiella burnetii and its application in a diagnostic laboratory over a 7-year period. New Microbes New Infect. 2013, 1 (1): 6-12. doi: 10/1002/2052-2975.8.
- MarrieT., Raoult D. Qfever-a review and issues for the next century. Int. J. Antimicrob. Agents. 1997, 8 (3): 145-161. doi: 10.1016/S0924-8579(96)00369-X.
- Maurin M., Raoult D. Q fever. Clin. Microbiol. Rev. 1999, 12 (4): 518-553.
- Raele D., Garofolo G., Galante D. et al. Molecular detection of Coxiella burnetii using an alternative loop-mediated isothermal amplification assay. Veterinaria Italiana. 2015, 51 (1): 73-78. doi: 10.12834/VetIt.3041168.4.
- Tilburg J., Melchers W., Pettersson A. et al. Interlaboratory evaluation of different extraction and real-time PCR methods for detection of Coxiella burnetii in serum. J. Clin. Microbiol. 2010, 48 (11): 3924-3927. doi: 10.1128/JCM.01006-10.
- van Schaik E., Chen C., Mertens K. et al. Molecular pathogenesis of obligate intracellular bacterium. Nat. Rev. Microbiol. 2013, 11 (8): 561-573. doi: 10.1038/nrmicro3049.