STUDY OF THE ROLE OF INNATE IMMUNITY FACTORS (TLR2, HBD-2, TNF-a, TGF-P) IN PERIODONTITIS PATHOGENESIS


Cite item

Full Text

Abstract

Aim. Study of the role of innate immunity factors, namely, expression of TLR2 and HBD-2 genes, as well as TNF-a and TGF-P in pathogenesis of periodontium tissue inflammation. Materials and methods. 59 individuals with periodontitis illnesses were included into the study; 15 healthy donors represented the comparison group. Study of the TLR2 and HBD-2 gene expression levels was carried out by rRT-PCR, cytokine production evaluation - by EIA. Results. The results of the study have shown the presence of TLR-mediated disbalance in the innate immunity system in the periodontium tissue during chronic generalized periodontitis. TLR2 gene hyperexpression was accompanied by the reduction of expression of anti-microbial peptide HBD-2, as well as an increase of production of TNF-a and TGF-P by epithelial cells of periodontium mucosa. Conclusion. The study carried out has shown that disturbance of molecular mechanisms of innate immunity system has an important place in pathogenesis of periodontitis.

Full Text

Общемедицинская значимость воспалительных заболеваний пародонта определяется их значительной распространенностью в мире, большим процентом связанной с ними потери зубов и отрицательным влиянием пародонтальных очагов инфекции на организм в целом [1]. Хронический пародонтит представляет собой воспалительный процесс в тканях пародонта, вызываемый микроорганизмами, присутствующими в зубном налете. При хроническом генерализованном пародонтите (ХГП) у взрослых людей может иметь место прогрессирующее ухудшение состояния с неизбежной потерей зубов, несмотря на интенсивное лечение [6]. Известно, что одним из основных этиологических факторов пародонтита является инфекция. Врожденный иммунитет представляет первую линию защиты организма от патогенов [5]. Среди распознающих рецепторов врожденного иммунитета ключевая роль принадлежит Toll-подобным рецепторам (TLRs), которые распознают консервативные молекулярные структуры патогенных микроорганизмов [4]. В сформировавшемся зубодесневом кармане под действием патогенной микрофлоры происходит активация TLRs, присутствующих на различных клетках пародонта, таких как макрофаги, фибробласты, остеобласты и др. Сигналы с TLRs индуцируют выработку провоспалительных цитокинов и противомикробных пептидов (Р-дефенсинов) эпителиальными клетками пародонта. Известно, что Р-дефенсин-1 (HBD-1) вырабатывается конститутивно, выработка HBD-2, HBD-3, HBD-4 индуцируется действием микробных компонентов, цитокинов и др. факторов [15]. Сигнальная функция Toll-подобных рецепторов на участке соединения эпителия десны с зубом имеет важнейшее значение как для поддержания здорового состояния пародонта, так и для развития пародонтита. Однако в настоящее время существуют значительные пробелы в понимании механизмов, посредством которых TLRs могут участвовать в развитии патологического процесса в тканях пародонта. Цель настоящего исследования - изучение факторов врожденного иммунитета (TLR2, HBD-2 и цитокинов TNF-a, TGF-P) у больных хроническим генерализованным пародонтитом. В исследование были включены 59 пациентов в возрасте от 24 до 65 лет (31 мужчина и 28 женщин), обратившихся в ФКУ «стоматологическая поликлиника» в период 2012 - 2014 гг. Группа сравнения представлена 15 здоровыми донорами (24 - 54 лет). Постановка диагноза проводилась согласно классификации заболеваний парод онта, принятой на заседании Президиума секции пародонтологии Стоматологической ассоциации России (2001) на основе МКБ-10 (ВОЗ, 1997) и с использованием рентгенологических критериев оценки тяжести заболевания по Н.А.Рабухиной, А.П.Аржанцеву (2003). Всем включенным в исследование были определены: индекс налета (IPL, SilnessandLoe, 1964); индекс кровоточивости десневой борозды (PBI, Muhleman, 1975);пародонтальный индекс (CPITN, ВОЗ,1978) [1, 11]. Критерии включения в исследование для пациентов с ХГП: минимум 18 сохранившихся зубов; отсутствие системных заболеваний; отсутствие системной антибактериальной и противовоспалительной терапии в течение 6 месяцев перед данным исследованием. После измерения глубины пародонтальных карманов (ПК), клинической потери прикрепления, получения рентгенологических данных о деструкции альвеолярной кости (использован метод панорамной рентгенографии на ортопантомографе Othophos 3, Sirona, Germany, рентгенологическая нагрузка 0,07 мЗв) пациенты были разделены по степени тяжести на три группы: 1 - с пародонтитом тяжелой степени проявления (13 пациентов в возрасте от 34 до 57 лет с глубиной ПК 5,94±0,39 мм); 2 - с пародонтитом средней степени тяжести (23 пациента в возрасте от 30 до 49 лет с глубиной ПК 4,34±0,43 мм); 3 - с пародонтитом легкой степени тяжести (8 пациентов в возрасте от 21 до 61 года с глубиной ПК 3,3±0,23 мм). Анализ микрофлоры из пародонтального кармана определяли в лаборатории Инвитро (Москва). В посеве у всех пациентов определяли Porphyromonas gingivalis, Actinobacillus actinomycetemcomitans, Bacteroides forythus; у 34% пациентов определены Haemophilus parainfluenzae, у 22% - Neisseria flavescens. Для получения биологического материала проводился соскоб эпителиальных клеток из пародонтального кармана у каждого пациента в группах с ХГП. Для определения уровня экспрессии генов в группе здоровых доноров забор эпителиальных клеток проводился из зубодесневой борозды во время стоматологического приема. Образцы клеток были собраны браншами (Dispodent, Франция) в 1,5 мл пробирки типа эппендорф с содержащимся в них физиологическим раствором. Образцы хранили при температуре минус 70°C. Материал эпителиальных клеток использовали для определения уровня экспрессии исследуемых показателей. Зубодесневую жидкость из пародонтального кармана использовали для определения концентрации цитокинов TNF-a и TGF-p. Выделение РНК для определения уровня экспрессии генов TLR2 и HBD-2 проводили с использованием набора RNeasyMiniKit (Quagen, Германия). Далее проводили реакцию обратной транскрипции (ОТ) и ПЦР. ОТ-реакцию проводили с компонентами из набора ОТ-1 (Синтол, РФ). Праймеры и зонды для ОТ-реакции и ПЦР были моделированы в компьютерной программе \fector NTI 8,0 в соответствии с последовательностями ДНК исследуемых генов (последовательности были взяты в базе GenBank) и синтезированы на фирме Синтол (РФ). Для приготовления ПЦР-смеси в реакциях использовали HotStartTaq DNA Polymerase (Синтол, РФ), а также наборы «Набор реактивов для проведения ПЦР-РВ в присутствии интеркалирующего красителя SYBR Green I (Буфер Б)» (Синтол, РФ). ПЦР-РВ проводили в амплификаторе ДТ-96 (ДНК-технология, РФ) с заданной программой: 95°C - 10 минут (95°C - 20 сек, 60°C - 40 секунд) 40 циклов. Программное обеспечение прибора ДТ-96 позволяет получить данные по пороговому циклу. Системы для определения уровня экспрессии генов TLR2 и HBD-2 были отработаны ранее [2, 13]. Определение уровня экспрессии генов проводилось относительно экспрессии гена Р -актина [13]. Данные по экспрессии исследуемых генов представлены в виде десятичного логарифма от числа копий соответствующего гена относительно 106 копий гена актина. Концентрацию цитокинов TNF-a и TGF-P в зубодесневой жидкости из пародонтального кармана определяли с помощью метода иммуноферментного анализа, применяя коммерческие тест-системы «Biosource». Статистический анализ проводили с использованием общепринятых статистических методов. Полученные данные обрабатывали с помощью программ Excel и Statistica. Для оценки достоверности различий между группами применяли непараметрический критерий Манна-Уитни. Различие показателей считали достоверным при уровне значимости менее 0,05 [3]. На первом этапе работы проводили исследование уровня экспрессии генов TLR2 и HBD-2 в эпителиальных клетках пародонта у здоровых доноров и у пациентов с ХГП. Показано, что в клетках пародонта в норме экспрессируются гены распознающего рецептора TLR2 и Р-дефенсина 2 (HBD-2), средние показатели которых составили 585х105 и 175х105 копий мРНК относительно 1 млн копий гена актина, соответственно. В группе пациентов с ХГП показатели врожденного иммунитета менялись неоднозначно. У больных пародонтитом средней степени тяжести экспрессия гена TLR2 увеличивалась в 32,7 раза на фоне снижения экспрессии гена HBD-2 в 3,7 раза по сравнению со здоровыми донорами (p<0,05). Не выявлено достоверных отличий в уровне экспрессии генов TLR2 и HBD-1 у пациентов с тяжелой и легкой степенью пародонтита. Таким образом, у больных пародонтитом наблюдался дисбаланс в экспрессии рецепторов врожденного иммунитета и противомикробных пептидов. В нашем исследовании было выявлено достоверное повышение TNF-a в зубодесневой жидкости больных с пародонтитом средней степени тяжести, по сравнению с группой контроля. Концентрация TNF-a составила 17,97+1,93 пг/мл в группе с ХГП и 12,76+2,48 пг/мл - в группе сравнения. В группе с тяжелой формой пародонтита наблюдается тенденция к повышению продукции TNF-a, однако статистическая достоверность, по сравнению с группой контроля, отсутствует (p=0,21). Содержание TGF-P в зубодесневой жидкости у больных пародонтитом также существенно повышено по сравнению с группой контроля (p<0,01) (10 747+1661 пг/мл в группе с ХГП и 4550±362пг/мл - в группе сравнения). При этом достоверное повышение уровня TGF-P наблюдалось в группах со средней и тяжелой формой заболевания. В норме система Toll-подобных рецепторов обеспечивает распознавание компонентов микроорганизмов и адекватную реакцию на них преимущественно в виде продукции противомикробных пептидов и цитокинов как провоспалительных, так и противовоспалительных. Как показали наши исследования, у больных хроническим генерализованным пародонтитом развивается дисбаланс, проявляющийся в снижении экспрессии гена противомикробного пептида HBD-2 и гиперэкспрессии гена паттернраспознающего рецептора TLR2. Гиперэкспрессия TLR совместно с повышенной микробной нагрузкой приводит к увеличению продукции цитокинов и хемокинов, что обеспечивает развитие хронического воспаления и повреждение тканей пародонта [12]. Анализ цитокинов в зубодесневой жидкости у больных пародонтитом показал увеличение концентрации провоспалительного цитокина TNF-a и TGF-p. TGF-P является противовоспалительным цитокином, его действие приводит к снижению активности воспалительных факторов, разрушению соединительной ткани [7, 8]. Однако в литературе есть сведения, свидетельствующие о значимой роли TGF-P в развитии хронического воспаления. Показана его потенциальная возможность стимулировать хемотаксис нейтрофилов, моноцитов и лимфоцитов благодаря усилению экспрессии интегринов на их поверхности, что может приводить к хронизации воспалительных процессов [14]. Кроме того, есть сведения, что повышенная продукция TGF-P способствует разрастанию тканей десны, в том числе развитию фиброза [9], увеличивающего тяжесть течения заболевания. Известно, что повышенная продукция TNF-a, также как и других провоспалительных цитокинов, у больных пародонтитом может способствовать активации матриксных металлопротеиназ, выработке простагландинов, активации остеокластов [5]. Эти факторы вызывают усиление деструкции межклеточного матрикса, в том числе соединительной ткани, формирующей пародонт, а также резорбцию костной ткани [10]. Вместе с тем, известно, что активация TLR способна индуцировать выработку и противовоспалительных цитокинов. В частности, взаимодействие ЛПС возбудителя пародонтита P. gingivalis с TLR2 приводит к индукции синтеза противовоспалительных цитокинов (ИЛ-10, ИЛ-13, TGF-P) и хемокина ИЛ-8. Такая комбинация медиаторов, вырабатываемых при активации TLR2, вызывает развитие длительного хронического процесса в тканях пародонта с умеренным проявлением воспалительных явлений [12]. Это подтверждают результаты, полученные нами: у больных пародонтитом средней степени тяжести выявлена гиперэкспрессия гена TLR2, сочетающаяся с повышенной продукцией противовоспалительного цитокина TGF-P и сниженной экспрессией гена противомикробного пептида HBD-2. Проведенное исследование доказывает, что в патогенезе пародонтита важное место занимает нарушение механизмов системы врожденного иммунитета (дисбаланс экспрессии генов TLR2 и HBD-2, а также цитокинов TNF-a и TGF-P). Это позволяет по-новому взглянуть на подходы к лечению ХГП. Данный подход дает возможность разработать алгоритм оценки показателей врожденного иммунитета в слизистой пародонта, позволяющий выявить дефекты иммунной защиты при различных заболеваниях пародонта.
×

About the authors

L. V Gankovskaya

Pirogov Russian National Research Medical University

N. M Helminskaya

Pirogov Russian National Research Medical University

O. A Svitich

Mechnikov Research Institute of Vaccines and Sera

E. A Molchanova

Pirogov Russian National Research Medical University

V. V Grechenko

Pirogov Russian National Research Medical University

E. V Sokolova

Pirogov Russian National Research Medical University

K. V Rusanova

Pirogov Russian National Research Medical University

References

  1. Боровский Е.В., Иванов В.С., Максимовский Ю.М. и др. Терапевтическая стоматология. М., Медицина,1998.
  2. Ганковская О.А. Исследование ассоциации полиморфных маркеров генов TLR2 и TLR9 с преждевременными родами и внутриутробным инфицированием. Медицинская иммунология. 2010, 12 (1-2): 87-94.
  3. Гланц С. Медико-биологическая статистика. М., Практика, 1999.
  4. Ковальчук Л.В., Ганковская Л.В., Мешкова Р.Я. Клиническая иммунология и аллергология, 2011.
  5. Chang Y C., Yang S.F., Lai C.C. et al. Regulation of matrix metalloproteinase production by cytokines, pharmacological agents and periodontal pathogens in human periodontal ligament fibroblast cultures. J. Periodontal Res. 2002, 37 (3): 196-203.
  6. Gemmell E., Yamazaki K., Seymour G.J. The role of T cells in periodontal disease: homeostasis and autoimmunity. Periodontol. 2000, 2007, 43: 14-40.
  7. Honda T. 1., Domon H., Okui T. et al. Balance of inflammatory response in stable gingivitis and progressive periodontitis lesions. Clin. Exp. Immunol. 2006, 144 (1): 35-40.
  8. Marcopoulou C.E., Vavouraki H.N., Dereka X.E. et al. Proliferative effect of growth factors TGF-beta, PDGF-BB and rhBMP-2 on human gingival fibroblasts and periodontal ligament cells. J. Int. Acad. Periodontol. 2003, 5 (3): 63-70.
  9. Ni(ulescu E.A., Crai(oiu M.M., Bani(a M. et al. The involvement of TGF-P1 and CTGF in regional gingival overgrowth. Rom. J. Morphol. Embryol. 2012, 53 (1): 143-150.
  10. Noh M.K., Jung M., Kim S.H. et al. Assessment of IL-6, IL-8 and TNF-a levels in the gingival tissue of patients with periodontitis. Exp. Ther. Med. 2013, 6 (3): 847-851.
  11. Scheffler R.M. Peridontal disease: Assessing the effectiveness and costs of the keyes technique. Washington, D.C. 1981.
  12. Shaddox L.M., Gonsalves P.F., Vovk A. et al. LPS-induced inflammatory response after therapy of aggressive periodontitis. J. Dent. Res. 2013, 92 (8): 702-708.
  13. Svitich O.A., Gankovskaya L.V, Lavrov V.F. et al. Herpes simplex virus type 2 infection during pregnancy is correlated with elevated TLR9 and TNFa expression in cervical cells. Int. Trends Immunol. 2014, 2: 62-66.
  14. Wahl S.M., Costa G.L., Mizel D.E. et al. Role of transforming growth factor beta in the pathophysiology of chronic inflammation. J. Periodonto^y. 1993, 64 (5): 450-455.
  15. Yoshihiro A., Masto S., Nishimura M. et al. Role of b-defensinsin oral epithelial health and disease. Med. Mol. Morphol. 2007, 40: 179-184.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2015 Gankovskaya L.V., Helminskaya N.M., Svitich O.A., Molchanova E.A., Grechenko V.V., Sokolova E.V., Rusanova K.V.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС77-75442 от 01.04.2019 г.


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies