THE ROLE OF PROTEINS OF STREPTOCOCCUS PNEUMONIAE IN THE DEVELOPMENT OF SEROTYPE-INDEPENDENT PNEUMOCOCCAL VACCINES

Cover Page


Cite item

Full Text

Abstract

Infections caused by Streptococcus pneumoniae are relevant for Russia and the world. One of the key factors in the pathogenicity of pneumococcus is a polysaccharide capsule. The structure of polysaccharide antigens is described more than 90 serotypes of the pathogen. The experience of using polysaccharide and conjugated pneumococcal vaccines shows that these preventive drugs protect against a limited number of serotypes of the pneumococcus. It is of interest to study the protective properties of pneumococcal proteins, as they are conservative and have high homology within the species, potentially expanding serotype non-specific protection level. Thus, the efforts of researchers focus on the development of protein vaccines or conjugated vaccines based on proteins of S. pneumoniae. The review considers the biological properties of the most well-known proteins of pneumococcus and provides data on preclinical studies of the obtained recombinant proteins as experimental vaccine preparations. Immunization with various proteins of S. pneumoniae provides protection of animals from nasopharyngeal colonization, pneumonia and sepsis. Currently, clinical trials (I/II phases) are being tested with several experimental protein vaccines. In the near future it will be possible to assess the real effectiveness of such vaccines.

Full Text

Проблема пневмококковых инфекций в последние десятилетия остается ак-
туальной для России и мира. Streptococcus pneumoniae способен вызывать как
локальные формы (отит), так и тяжелые инвазивные формы (пневмония, менин-
гит, сепсис) заболеваний. Группами риска являются дети младше 2 лет, пожилые
людей старше 65 лет, лица с иммунодефицитными состояниями, больные хрони-
ческой обструктивной болезнью легких, пациенты после спленэктомии [1].
Несмотря на успех применения современных вакцин на основе капсульных анти-
генов пневмококка [36], проблема пневмококковых инфекций по-прежнему
стоит остро из-за явления замещения серотипов и появления антибиотикоустой-
чивых штаммов [11].
В настоящее время официально зарегистрированы два принципиально разных
типа вакцин, способных предотвратить развитие инфекций, вызван ных пневмо-
кокком. Это поливалентная полисахаридная вакцин «Пневмо-23» и конъюгиро-
ванные вакцины, в которых капсульные полисахариды связаны с дифтерийным,
столбнячным анатоксинами или D-протеином гемофильной палочки [2]. Несмотря
на иммуногенность и безопасность полисахаридных вакцин, исследователи от-
мечают низкую эффективность в старших возраст ных группах [18], неспособность
обеспечить иммунитет слизистых и нестойкий иммунитет у детей до 2 лет [37].
Конъюгированные вакцины эффективны в группах риска [32], однако количество
серотипов, от которых защищает вакцина, ограничено, и следовательно, усили-
вается колонизация слизистой носоглотки невакцинными серотипами S.
pneumoniae [11]. Также повышается частота колонизации носоглотки другими
патогенами, такими как Staphylo coccus aureus и Haemophilus influenzae, а также
другими стрептококками и анаэробной флорой [5].
Вышеперечисленные ограничения современных пневмококковых вакцин за-
ставляют задуматься о необходимости разработки серотипнезависимой вакцины,
которая обеспечивала бы защиту от подавляющего большинства серотипов S.
pneumoniae. На роль протективного антигена подходят белки S. pneumoniae,
имеющие высокую степень гомологии внутри вида. Разработка нового поколения
экспериментальных пневмококковых вакцин основана на использовании реком-
бинантных белков и рекомбинантных штаммов S.pneumoniae и ведется в несколь-
ких направлениях 1) конъюгация рекомбинантных белков с капсульными поли-
сахаридами; 2) один рекомбинантный белок или сочетание нескольких
рекомбинантных белков; 3)рекомбинантные гибридные белки пневмококка; 4)
цельноклеточная рекомбинантная убитая вакцина со сниженным уровнем экс-
прессии капсулы [11].
Рассмотрим более подробно возможные белки-кандидаты для создания серо-
типнезависимой вакцины от S. pneumoniae.
Пневмолизин (Pneumolysin, Ply). Пневмолизин является внутриклеточным бел-
ком пневмококка. Известно, что все клинические изоляты пневмококка синте-
зируют пневмолизины, мало отличающиеся по аминокислотной последователь-
ности, что делает пневмолизин весьма перспективным кандидатом для создания
серотипнезависимой вакцины [37]. В основном пневмолизин не секретируется
пневмококком во внешнюю среду, а белок покидает клетку после лизиса, но есть
данные о расположении пневмолизина в клеточной стенке, а также о частичной
секреции пневмолизина во внешнюю среду [38]. В высоких концентрациях пнев-
молизин образует поры в клетках млекопитающих, индуцируя гибель клетки [4].
В более низких концентрациях пневмолизин обладает несколькими эффектами:
угнетает сокращение ресничек дыхательного эпителия, снижает бактерицидную
активность и миграцию нейтрофилов, угнетает пролиферацию лимфоцитов и
синтез антител [4]. Хотя нативный пневмолизин не может быть непосредственно
включен в состав новой вакцины из-за своей токсичности, существует возмож-
ность модификации его структуры с целью снижения токсичности путем направ-
ленного мутагенеза [27].
Иммуногенность и протективный эффект пневмолизина и его нетоксич ных
мутантов были оценены на различных животных моделях: нативный белок вы-
зывал задержку гибели мышей после интраперитонеального заражения [28],
тогда как пневмолизоиды защищали мышей от нескольких серотипов пневмо-
кокка (60 — 85% выживаемость) в модели пневмонии и сепсиса [3].
Поверхностный белок А (Pneumococcal surface protein, PspA). Поверхностный
пневмококковый белок А — это холин-связывающий белок, который затрудняет
фиксацию компонента комплемента С3 на поверхности клеточной стенки бакте-
рии, а также защищает бактерию от лактоферрина [8]. В структуре PspA выделяют
3 домена. По различиям в N-концевой последовательности белка выделяют 3
семейства и 6 клэйдов [22]. Согласно данным, полученным при секвенировании,
существует гомология между поверхностным белком А и сердечным миозином
человека, поэтому в целях безопасности в настоящее время ведутся исследования
с участками PspA, негомологичными миозину [13].
В опыте на мышах продемонстрирована защита (до 100%) при иммунизации
PspA и заражении штаммом, содержащим PspA из одного «семейства» [9, 33].
Получены гибридные белки PspA разных клэйдов: PspA3+2, PspA2+4, PspA2+5.
Иммунизация мышей подкожно вариантом PspA3+2 обеспечила высокую вы-
живаемость(60 — 100%) животных при интраназальном инфицировании штам-
мами с вариантами PspA клэйдов 1-5 по сравнению с контрольной группой жи-
вотных и по сравнению с группами, иммунизированными вариантами PspA2+4
и PspA2+5 соответственно [30].
Поверхностный белок С (Pneumococcal surface protein C, PspC). По своей струк-
туре PspC похож на поверхностный белок А и имеет в своей структуре холин-
связывающий домен [8]. Поверхностный белок С связывается с секреторным IgA
и фактором H, регулирующим активность системы комплемента. Cвязывание с
фактором Н предотвращает отложение С3 на бактериальной стенке [10].
Поверхностный белок С отличается вариабельностью, выделяют 11 аллельных
вариантов [17]. Эта особенность может отразиться на спектре защиты при имму-
низации белком PspC.
В структуре PspC, также как и в структуре PspA, есть богатый пролином участок
(proline rich region, PRR). В структуре PRR PspC и PspA есть довольно консерва-
тивный безпролиновый блок (NPB), состоящий из 33 аминокислотных остатков.
Иммунизация рекомбинантными PR-молекулами и молекулами NPB показали
протективный эффект (выживаемость 80%) против пневмококковой инфекции
на модели сепсиса у мышей [7].
Холин-связывающий белок А (Pneumococcal choline-binding protein A, PcpA). По
данным Selva L. et al. [35], более 90% штаммов пневмококка синтезируют поверх-
ностный белок А. Судя по структуре (наличие LRR, lipid rich region), играет роль
в адгезии пневмококка. Экспрессия этого белка регулируется концентрацией
ионов марганца. Уровень экспрессии белка выше во время острого заболевания
и значительно снижается в условиях колонизации слизистой носоглотки, где
концентрация ионов марганца выше [8].
В опытах на мышах подкожная иммунизация PcpA способствовала отсрочен-
ной гибели в модели сепсиса [14]. Также было продемонстрировано, что челове-
ческие антитела к PcpA препятствовали бактериальной адгезии к легочному
эпителию и эпителию носоглотки в культуре клеток [21].
Белки полигистидиновой триады (Polyhistidine triad, Phts). Семейство поверх-
ностных белков, отличающихся высокой консервативностью. Выделяют белки
PhtA, PhtB, PhtD, PhtE. Белки PhtD и PhtE относятся к адгезинам, способствуют
колонизации эпителия дыхательных путей [20]. Ингибируют отложение компле-
мента на клеточной стенке, связывают ионы цинка [31].
Белки полигистидиновой триады при внутримышечной иммунизации защи-
щали мышей от разных серотипов пневмококка в модели пневмонии (выживае-
мость 60%), назофарингеальной и легочной колонизации [15]. Антитела к Phts
способны пассивно защищать мышей (60% выживаемость) при летальном интра-
назальном заражении [15].
Поверхностный антиген А (Pneumococcal surface antigen, PsaA). Липопротеин,
ответственный за адгезию и колонизацию путем связывания с Е-кадгерином.
Относится к поверхностным антигенам, обладает транспортной активностью,
способен связывать ионы металлов (марганца), повышает устойчивость пневмо-
кокка к оксидативному стрессу [8].
Антитела к PsaA нарушают адгезию пневмококка к эпителию носоглотки че-
ловека в культуре клеток [34]. Подкожная иммунизация поверхностным анти -
геном А предотвращала колонизацию S.pneumoniae [19].
Белки пилей (RrgA, RrgB, RrgC). Белок RrgB образует остов структуры пилей, а
RrgA и RrgC являются дополнительными белками, расположенными соответствен-
но снаружи и внутри клетки. RrgA — белок-адгезин, участвующий в образовании
биопленки. RrgB существует в трех различных вариантах. Пили присутствуют не
более чем у одной трети от всех тестированных штаммов пневмококка [8].
Иммунизация белком RrgB защищала мышей при заражении летальными до-
зами. Так как RrgB существует в виде трех структурных вариантов, между которы-
ми не существует перекрестной активности, был создан RrgB321, в структуре
которого содержатся все 3 варианта. При интраперитонеальной иммунизации
RrgB321 вызывал выработку антител против всех трех вариантов RrgB и защищал
(до 70% в зависимости от штамма) мышей в модели пневмококкового сепсиса,
вызванного серотипами, имеющими пили (PI-1) [16].
Сериновая/треониновая протеинкиназа (Serin/threonine proteinkinase, StrkP)и
белок, необходимый для репарации клеточной стенки (Sell wall separation protein of
group B, PcsB). Сериновая/треониновая протеинкиназа является высококонсер-
вативным белком, участвующим в регуляции многих процессов бактериальной
клетки: экспрессия генов, захват ионов железа, репарация ДНК, биосинтез пи-
римидинов, метаболизм клеточной стенки [8].
Белок PcsB функционально представляет собой гидралазу, участвует в репара-
ции клеточной стенки. Расположен поверхностно и соответственно доступен для
действия протективных антител [26].
В серии исследований на животных StrkP и PcsB показали перекрестную за-
щиту в модели сепсиса (60% выживаемость) и пневмонии. Вышеназванные белки
защищали мышей от пневмококковой инфекции при интраперито неальном и
интраназальном заражении летальными дозами различных серотипов S. pneumoniae
[12].
Нейраминидазы (Neuraminidase, Nan). Пневмококк синтезирует два типа ней-
раминидаз: NanA и NanB. NanA необходима для успешной колонизации слизи-
стых, тогда как NanB вносит свой вклад в выживание пневмококка в крови [25].
Функциональное действие: отщепление остатка сиаловой кислоты от глико-
конъюгатов, экспозиция «рецепторов» для пневмококка [23]. Протективный
эффект NanА показан в модели колонизации и отита у шиншил [24].
ABC-транспортеры (Pneumococcal iron uptake PiuA, Pia). PiuA, PiaA являются
компонентами системы захвата ионов железа. По структуре они относятся к ли-
попротеинам, расположены в клеточной стенке. По данным анализа с помощью
ПЦР, эти липопротеины присутствуют у всех штаммов пневмококка, а также
имеют значительное структурное сходство с поверхностными рецепторами за-
хвата железа других организмов [8].
Интраперитонеальная иммунизация мышей PiuA и PiаA как совместно, так и
по отдельности обеспечивала защиту от системной инфекции S. pneumoniae (вы-
живаемость 80, 52 и 39% соответственно) [6]. Антитела к этим белкам обладают
перекрестной активностью между собой, а также взаимодействуют с PiuA и PiаA
разных штаммов пневмококка [6].
Аутолизины (Autolysine, LytA, LytC). У пневмококка открыто два типа аутоли-
зинов: LytA (амидаза) и LytC (мурамидаза) [29]. Аутолизин LytA отвечает за кле-
точный аутолиз, благодаря которому осуществляется высвобождение токсичных
веществ, таких как пневмолизин или продукты деградации клеточной стенки, что
способствует нарушению эпителиального и эндотелиального барьера и позволя-
ет пневмококку выйти в кровеносное русло. Пневмококк защищен от литической
активности LytA во время экспоненциальной фазы роста и становится восприим-
чив во время стационарной фазы, однако механизмы, регулирующие аутолиз, до
конца не ясны [29].
Полученные рекомбинантные образцы LytA в опыте на мышах продемон-
стрировали при интраназальном заражении мышей выработку сывороточных
IgG и IgA, а также выработку секреторных IgA. Мыши, иммунизированные
интраназально рекомбинантным LytA штамма SH137 (серотип 23F), показали
высокую выживаемость (75, 65, 62,5 и 60 %) при интраперитонеальном зараже-
нии штаммами серотипов 19F, 14, 6A и 6B соответственно [39].
В настоящее время многие вакцины против пневмококка на основе рекомби-
нантных белков находятся уже на разных стадиях клинических испытаний. «Sanofi-
Pasteur» успешно провел I фазу клинических испытаний сразу нескольких
вариантов потенциальных вакцин: моновалентной PlyD1; ком бинированной
PcpA+PhtD; комбинированной PcpA+PhtD+dPly [11]. «GlaxoSmithKline
Biologicals» сообщили о завершении I фазы для своей вакцины, содержащей про-
теин D, dPly и PhtD. Моновалентная вакцина «GlaxoSmithKline Vaccines» на
основе PhtD прошла I и II фазы клинических испытаний. Все указанные выше
вакцины характеризуются как препараты с широкой защитой от многих серотипов
пневмококка. Однако на данный момент не выработано четких критериев, по
которым можно оценить эффективность этого типа вакцин [32].
×

About the authors

E. S. Petukhova

Mechnikov Research Institute of Vaccines and Sera

Author for correspondence.
Email: fake@neicon.ru
Moscow Russian Federation

D. S. Vorobyev

Sechenov First Moscow State Medical University

Email: fake@neicon.ru
Moscow Russian Federation

I. B. Semenova

Mechnikov Research Institute of Vaccines and Sera

Email: fake@neicon.ru
Moscow Russian Federation

References

  1. Воробьев Д.С., Семенова И.Б., Курбатова Е.А. Белки Streptococcus pneumoniae: перспективы создания вакцины против пневмококковой инфекции. Журн. микробиол. 2010, 6: 98-104.
  2. Семенова И.Б., Михайлова Н.А. Серотипнезависимые вакцины против пневмококковой инфекции. Журн. микробиол. 2016, 4: 76-85.
  3. Alexander J.E., Lock R.A., Peeters C.A.M. et al. Immunization of mice with pneumolysin toxoid confers a significant degree of protection against at least nine serotypes of Streptococcus pneumoniae. Infect. Immun. 1994, 62 (12): 5683-5688.
  4. Alonso Develasco E., Verheul A.F.M., Verhoef J. et al. Streptococcus pneumoniae: virulence factors, pathogenesis, and vaccines. Microbiol. Reviews. 1995, 59 (4): 591-603.
  5. Biesbroek G., Wang X., Keijser B.J. et al. Seven-valent pneumococcal conjugate vaccine and nasopharyngeal microbiota in healthy children. Emerg. Infect. Dis. 2014, 20 (2): 201-210.
  6. Brown J.C., Ogunniyi A.D., Woodrow M.C. et al. Immunization with components of two iron uptake ABC transporters protects mice against systemic Streptococcus pneumoniae infection. Infect. Immun. 2001, 69 (11): 6702-6704.
  7. Daniels C.C., Coan P., King J. et al. The proline rich region of pneumococcal surface protein A and C contains surface accessible epitopes common to all pneumococci and elicits antibody mediated protection against sepsis. Infect. Immun. 2010, 78 (5): 2163-2172.
  8. Darriex M., Goulart C., Briles D. et al. Current status and perspectives on protein-based pneumococcal vaccines. Crit. Rev. Microbiol. 2013, doi: 10.3109/1040841X.2013.813902.
  9. Darriex M., Miyaji E.N., Ferreira D.M. et al. Fusion proteins containing family 1 and family 2 PspA fragments elicit protection against Streptococcus pneumoniae that correlates with antibody mediated enhancement of complement deposition. Infect. Immun. 2007, 75 (12): 5930-5938.
  10. Dave S., Brooks-Walter A., Pangburn M.K. et al. Pspc, a pneumococcal surface protein, binds human factor H. Infect. Immun. 2001, 69 (5): 3435-3437.
  11. Feldman C., Anderson R. Review: Current and new generation pneumococcal vaccines, J. Infect. 2014, doi: 10.1016/j.jinf.2014.06.006.
  12. Giefring C., Meinke A.L., Hanner M. et al. Discovery of a novel class of highly conserved vaccine antigens using genomic scale antigenic fingerprinting of pneumococcus with human antibodies. J. Exp. Med. 2008, 205 (1): 117-131.
  13. Ginsburg A.S., Nahm M.H., Khambaty F.M. et al. Issues and challenges in the development of pneumococcal protein vaccines: a two day international symposium, Expert. Rev. Vaccines. 2012, 11 (3): 279-285.
  14. Glover D.T., Hollingshead S.K., Briles D.E. Streptococcus pneumoniae surface protein PcpA elicits protection against lung infection and fatal sepsis. Infect. Immun. 2008, 76 (6): 2767-2776.
  15. Godfroid F., Hermand P., Verlant V. et al. Preclinical evaluation of the Pht proteins as potential cross-protective pneumococcal vaccine antigens. Infect. Immun. 2011, 79 (1): 238-245.
  16. Harfouche C., Filippini S., Gianfaldoni C. et al. RrgB321, a fusion protein of the three variants of the pneumococcal pilus backbone RrgB, is protective in vivo and elicits opsonic antibodies. Infect. Immun. 2012, 80 (1): 451-460.
  17. Iannelli F., Oggioni M.R., Pozzi G. Allelic variation in the highly polymorphic locus pspC of Streptococcus pneumoniae. Gene. 2002, 284: 63–71.
  18. Jackson L.A., Janoff E.N. Pneumococcal vaccination of elderly adults: new paradigm for protection. Clin. Infect. Dis. 2008, 47: 1328-1338.
  19. Johnson S.E., Dykes J.K., Jue D.L. et al. Inhibition of pneumococcal carriage in mice by subcutaneous immunization with peptides from the common surface protein pneumococcal surface adhesion A. J. Infect. Dis. 2002, 185: 489-496.
  20. Khan M.N., Pichichero M.E. Vaccine candidates PhtD and PhtE of Streptococcus pneumoniae are adhesins that elicit functional antibodies in humans. Vaccine. 2012, 30 (18): 2900-2907.
  21. Khan M.N., Sharma S.K., Filkins L.M. et al. PcpA of Streptococcus pneumoniae mediates adherence to nasopharyngeal and lung epithelial cells and elicits functional antibodies in humans. Microbes Infect. 2012, 14 (12): 1102-1110.
  22. Khan N., Jan A.T. Towards identifying protective B-cell epitopes: the PspA story. Front. Microbiol. 2017, 8: 742.
  23. King S.J., Hippe K.R., Weiser J.N. Deglycosylation of human glycoconjugates by the sequential activities of exoglycosidases expressed by Streptococcus pneumoniae. Mol. Microbiol. 2006, 59 (3): 961-974.
  24. Long J.P., Tong H.H., DeMaria T.F. Immunization with native or recombinant Streptococcus pneumoniae neuraminidase affords protection in the chinchilla otitis media model. Infect. Immun. 2004, 72 (7): 4309-4313.
  25. Manco S., Hernon F., Yesilkaya H., et al. Pneumococcal neuraminidases A and B both have essential roles during infection of the respiratory tract and sepsis. Infect. Immun. 2006, 74 (7): 4014-4020.
  26. Mills M.F., Marquart M.E., Mcdaniel L.S. Localization of PcsB of Streptococcus pneumoniae and its differential expression in response to stress. J. Bacteriol. 2007, 189 (12): 4544-4546.
  27. Oloo E.O., Yethan J.A., Ochs M.M. et al. Structure guided antigen engineering yields pneumolysin mutants suitable for vaccination against pneumococcal disease. J. Biol. Chem. 2011, 286 (14): 12133-12140.
  28. Paton J.C., Lock R.A., Hansman D.J. Effect of immunization with pneumolysin on survival time of mice challenged with Streptococcus pneumoniae. Infect. Immun. 1983, 40 (2): 548-552.
  29. Perez-Dorado I., Galan-Bartual S., Hermoso J.A. Pneumococcal surface proteins: when the whole is greater than the sum of its parts. Molecular Oral Microbiology. 2012, 27: 221-245.
  30. Piao Z., Akeda Y., Takeuchi D., et al. Protective properties of a fusion pneumococcal surface protein A (PspA) vaccine against pneumococcal challenge by five different PspA clades in mice. Vaccine. 2014, 32: 5607-5613.
  31. Plumptre C.D., Ogunniyi A.D., Paton J.C. Surface association of Pht proteins of Streptococcus pneumoniae. Infect. Immun. 2013, 81 (10): 3644-3651.
  32. Principi N., Esposito S. Development of pneumococcal vaccines over the last 10 years. Expert. Opin. Biol. Ther. 2018, 18 (1): 7-17. doi: 10.1080/14712598.2018.1384462. Epub 2017 Oct 12.
  33. Roche H., Ren B., McDaniel L.S. et al. Relative role of genetic background and variation in PspA in the ability of antibodies to PspA to protect against capsular type 3 and 4 strains of Streptococcus pneumoniae. Infect. Immun. 2003, 71 (8): 4498-4505.
  34. Romero-Steiner S., Pilshvili T., Sampson J.S. et al. Inhibition of pneumococcal adherence to human nasopharyngeal epithelial cells by anti-PsaA antibodies. Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2003, 10 (2): 246-251.
  35. Selva L., Ciruela P., Blanchette K. et al. Prevalence and clonal distribution of PcpA, PsrP and Pilus-1 among pediatric isolates of Streptococcus pneumoniae. PLoS One. 2012, 7 (7): e41587.
  36. Sings H.L. Pneumococcal conjugate vaccine use in adults — Addressing an unmet medical need for non-bacteremic pneumococcal pneumonia. Vaccine. 2017, http://dx.doi.org/10.1016/j.vaccine.2017.05.075.
  37. Tarahomjoo S. Resent approaches in vaccine development against Streptococcus pneumoniae. J. Mol. Microbiol. Biotechnol. 2014, 24: 215-227.
  38. Vernatter J., Pirofski L.A. Current concepts in host-microbe interaction leading to pneumococcal pneumonia. Curr. Opin. Infect. Dis. 2013, 26 (3): 277-283.
  39. Yuan Z.Q., Lv Z.Y., Gan H.Q. et al. Intranasal immunization with autolysin (LytA) in mice model induced protection against five prevalent Streptococcus pneumoniae serotypes in China. Immunol. Res. 2011, 51: 108-115.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2018 Petukhova E.S., Vorobyev D.S., Semenova I.B.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС77-75442 от 01.04.2019 г.


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies