ANTIFUNGAL ACTIVITY OF HUMAN AND SOME MAMMALS SERA

Cover Page


Cite item

Full Text

Abstract

Aim. Estimation of activity of native human serum and its antimicrobial peptides fraction against clinically important yeasts and comparison with the activity of some mammals sera. Materials and methods. Pooled samples of human, bovine, rabbit and mouse sera and collection strains of yeasts Candida albicans, Rhodotorula mucilaginosa, Malassezia furfur, Cryptococcus neoformans, Geotrichum candidum, Trichosporon cutaneum, Saccharomyces cerevisiae were used in the study. Antimicrobial peptides fractions (AMP) were obtained by filtration through molecular filters with 100 kDa pores. Activity of sera and their AMP-fractions were estimated by spectrophotometric method. Results. Activity of native mammal sera varied in diapason 73÷89% independently from yeast genus, although AMP-fractions activity varied more significantly. The minimal sensitivity to AMP-fractions of sera demonstrated M. furfur (activity values were equal 0÷13,5%) and G. candidum (0÷6,5%), but the maximal — R. mucilaginosa (12,3÷56,4%), C. albicans (22,0÷32,9%), and C. neoformans (17,1÷29,9%). Activity values of AMP-fractions of human serum were correlated meaningfully with no of the values of other mammals (Pirson coefficient r=0,459÷0,527). Considerable correlation of the indexes took place between rabbit and bovine sera (r=0,827), as well as between rabbit and mouse sera (r = 0,753). Conclusion. The differences between AMP-fractions activity towards studied yeast genera/specia indicate the occurrence of its specificity probably related with structural organization of cytoplasmic membrane of yeast cells as well as with variations in AMP composition in different mammals.

Full Text

ВВЕДЕНИЕ
Противомикробный гуморальный иммунитет сыворотки млекопитающих скла-
дывается из белков системы комплемента, иммуноглобулинов и антимикробных пеп-
тидов/полипептидов (АМП). Независимо от пути реализации системы комплемента —
классического или альтернативного, а также от механизма действия иммуноглобули-
нов и различных АМП (которых в сыворотке крови свыше 25), происходит, прежде
всего, повреждение клеточной мембраны патогенных микроорганизмов или их лизис
[15]. На этом свойстве сыворотки основаны все известные на сегодня методы оценки
ее микробицидности. Метод определения бактерицидных свойств крови, основанный
на классическом способе посевов, входит в «Номенклатуру клинических лабораторных
исследований» (п.6.3.2 — общие бактерицидные свойства сыворотки крови, секретов),
утвержденную Приказом Министерства здравоохранения РФ № 64 от 21.02.2000 г.
Однако в силу трудоемкости и длительности выполнения этот метод не нашел широ-
кого применения в клинической практике. Не менее сложны в выполнении и более
современные методы [4, 17]. Недавно нами предложен способ оценки активности
фракции антимикробных пептидов эпителиальных секретов, заключающийся в мик-
роскопировании окрашенных суспензий клеток дрожжей Candida albicans с целью
подсчета процента убитых клеток [2]. Данный метод с некоторыми модификациями
можно применить и к сывороткам крови, причем, как к цельным, так и к их низко-
молекулярным фракциям (2,8 — 80 кДа), в которые входят АМП, но не иммуноглобу-
лины и белки комплемента. Такая модификация была использована для определения
активности АМП-фракций мышиных сывороток [5]. Использование данного способа
дает возможность оценить микробицидную активность человеческих сывороток, обус-
ловленную разными их фракциями, и сравнить ее с таковой у других млекопитающих.
МАТ Е Р И А Л Ы И М Е Т О Д Ы
Человеческие сыворотки получены из венозной крови 6 здоровых доброволь-
цев женского и мужского пола в возрасте 22 — 24 года. Использована коммерческая
бычья сыворотка «Adult bovine serum» (PAA Laboratories GmbH, Австрия), хранив-
шаяся до использования в замороженном виде при -250С. Пуловую кроличью сы-
воротку получали от 6 здоровых кроликов-самок породы Шиншилла весом 1,5 кг,
питомник Филиал «Андреевка» ФГБУН «НЦБМТ» ФМБА России. Пуловая мы-
шиная сыворотка получена от 35 беспородных мышей-самок весом 18-20 г из того
же питомника. Все эксперименты на животных проводили в соответствии с межго-
сударственным стандартом по содержанию и уходу за лабораторными животными
(ГОСТ 33217—2014).
Использованы штаммы дрожжей Candida albicans №927, Rhodotorula mucilaginosa
№132, Malassezia furfur №1451, Cryptococcus neoformans №3465, Geotrichum candidum
№1206, Trichosporon cutaneum №18 из коллекции НИИВС им. И.И.Мечникова;
Saccharomyces cerevisiae Y-375 из ВКМ (Пущино, Россия). Суспензии клеток дрож-
жей готовили из экспоненциальных культур, выращенных на плотной среде Сабуро
(в случае M. furfur — на модифицированной среде Диксона) при 250С из расчета 1010
КОЕ/мл.
Для получения АМП-фракций образцы сыворотки фильтровали через моле-
кулярные фильтры «Amicon Ultra-4» (Millipore, Merсk) с диаметром пор100 кДа на
центрифуге в течение 45 мин при 7500 об/мин. Определение противогрибковой ак-
тивности проводили следующим образом: образцы сывороток или их АМП фракций
объемом 300 мкл (контрольная пробирка содержала физраствор) соединяли с 50 мкл
суспензии дрожжей, пробирки инкубировали 2 часа при 320С на шейкере, затем сме-
си центрифугировали в течение 5 мин при 10000 об/мин, супернатанты удаляли, а к
осадкам добавляли по 300 мкл раствора бромкрезолового пурпурного в фосфатном
буфере рН 4,6, суспендировали и инкубировали 45 мин при 320С на шейкере. После
этого суспензии вновь центрифугировали и по 50 мкл полученных супернатантов
добавляли в заранее подготовленные пробирки, содержащие по 2,5 мл фосфатного
буфера рН 4,6. Оптическую плотность полученных растворов измеряли на спектро-
фотометре при длине волны 440 нм в кюветах 1 см. Противогрибковую активность
выражали в процентах и рассчитывали по формуле: А = (ОПконтр. — ОПопыт. )*100 /
ОПконтр., где ОПконтр. — это оптическая плотность смеси из контрольной пробирки;
ОПопыт. — это оптическая плотность смеси из пробирки фракции I либо фракции II.
Осадки клеток микроскопировали с помощью микроскопа МБИ-6 («Ломо»,
СССР) при общем увеличении х1750. Статистическую обработку данных проводили
с помощью программы Excel. В качестве показателя наличия корреляционных взаи-
мосвязей использовали коэффициент Пирсона (r).
Р Е З У Л ЬТАТ Ы И О Б С У Ж Д Е Н И Е
Сравнение величин активности АМП-фракций сыворотки, рассчитанных с ис-
пользованием метода спектрофотометрии, и величин активности, рассчитанных с
помощью микроскопии (т.е. процент убитых клеток), показало наличие корреляции
высокой степени (r=0,836): соотношение этих показателей составляло в среднем
1,2±0,1. То есть, если активность АМП-фракции, полученная методом спектрофо-
тометрии, составляло 30%, то число клеток, убитых при их инкубации с данным
образцом сыворотки, равнялось примерно 36%. Необходимо отметить, что расчет
активности цельной сыворотки по методу микроскопии невозможен, так как в ре-
зультате действия этого ликвора клетки дрожжей частично разрушаются с образо-
ванием мелких везикул. Тем не менее, в данном случае использование метода спек-
трофотометрии правомерно, поскольку везикулы также наполняются красителем.
Важно отметить, что даже в этом случае остается значительная часть живых клеток.
Судя по данным микроскопии можно заключить, что в первую очередь разруши-
тельному воздействию подвергаются именно мертвые клетки.
Результаты оценки противогрибковой активности цельных человеческих, бы-
чьих, кроличьих и мышиных сывороток, а также их АМП-фракций представлены в
табл. Видно, что общая противогрибковая активность сывороток млекопитающих
примерно одинакова в отношении всех изученных видов дрожжей: она варьирует
в пределах 73 — 89%. Исключение составила лишь активность мышиной и бычьей
сыворПри этом имела место значимая корреляция активности человеческих цель-
ных сывороток разных видов дрожжей с таковой кроличьих (r=0,724), но не бычьих
(r =0,401и мышиных сывороток (r=0,207).
Активность АМП-фракций имела гораздо больший разброс, чем общая актив-
ность сывороток. Отрицательные значения в таблице означают, что оптическая плот-
ность опытных растворов была выше контрольной. Это можно объяснить отсутствием
противогрибкового действия данной фракции на данный вид дрожжей, в связи с чем,
по-видимому, за 2 часа инкубации клетки начинают расти на неактивной фракции,
используя ее как субстрат. Таким образом, отрицательные значения можно считать ну-
левыми в плане их противогрибковой активности. Значения активности АМП-фрак-
ций варьировали в диапазоне от 0 до 56,4%. Активность АМП-фракций человеческой
сыворотки значимо не коррелировала ни с одной из таковых у прочих млекопитающих
(r=0,459÷0,527). Однако имели место значимые корреляции между этими показателя-
ми между кроличьей и бычьей сыворотками (r=0,827), а также между кроличьей и мы-
шиной сыворотками (r=0,753). При исследовании вклада активности АМП-фракций
сывороток разных млекопитающих в общую противогрибковую активность сывороток
обращает на себя внимание тот факт, что наименьший вклад соответствует дрожжам
M. furfur и G. candidum, а наибольший — R. mucilaginosa и C. neoformans.
Человек и животные на протяжении жизни постоянно сталкиваются с различ-
ными видами дрожжевых грибов, причем некоторые из них относятся к условно
патогенным микроорганизмам. Так, для человека из более чем 200 видов известных
дрожжей около 40 считаются условными патогенами, несмотря на то, что эти виды в
норме заселяют различные локусы: Malassezia spp.— кожу, Candida spp., Rhodotorula
spp. — кишечник и половые органы, Geotrichum spp. и Saccharomyces spp. — кишеч-
ник [3]. Однако при нарушениях иммунитета, например, при атопическом дермати-
те, все указанные роды, а также Trichosporon spp. и Cryptococcus spp. могут являться
сильнейшими иммуногенами. Животные также подвержены дрожжевым инфекциям:
описаны маститы у коров, связанные с вышеперечисленными родами дрожжей [14],
а также криптококковый менингоэнцефалит [9]. Тот факт, что в ответ на взаимодейс-
твие с антигенами дрожжей образуются специфические иммуноглобулины (антитела),
не вызывает сомнений. Антитела не только помогают распознавать и обезвреживать
высокомолекулярные продукты жизнедеятельности дрожжей, но и обладают непос-
редственной противогрибковой активностью [8]. Поскольку общая микробицидная
активность сывороток состоит по большей части из активности комплемента и им-
муноглобулинов, то неудивительно, что этот показатель для человеческой сыворотки
варьирует примерно в одинаковых пределах в отношении всех изученных видов дрож-
жей — 77÷89%. Удивительно то, что такие разные млекопитающие, как человек, бык,
кролик и мышь, имеют сходные величины этой активности (табл.).
Иная ситуация наблюдается с активностью АМП-фракций: ее величины, ко-
нечно, значительно ниже активности цельных сывороток, но варьируют в широком
диапазоне, причем у всех представленных видов млекопитающих. На основании по-
лученных данных можно заключить, что имеет место специфичность АМП по отно-
шению к разным видам дрожжей. Это трудно себе представить, поскольку АМП не
имеют такой сложной и разветвленной структуры, как иммуноглобулины. Основной
мишенью АМП является мембрана микроорганизмов, при атаке которой происхо-
дит нарушение целостности мембраны, ведущее к гибели клетки. Несмотря на боль-
шое структурное разнообразие, большинство мембраноактивных пептидов образуют
амфифильные структуры в присутствии мембраны [6]. Селективное действие АМП
обусловлено липидным составом мембран и определяется, в основном, электроста-
тическими взаимодействиями. Так катионные АМП атакуют бактериальные клетки,
у которых во внешней мембране содержится большая доля отрицательно заряженных
липидов, в отличие от электрически нейтральных мембран клеток эукариот. Кроме
того, на антимикробную активность пептидов влияет упаковка и физические свойс-
тва липидного бислоя, например, наличие в составе мембраны специфических мо-
лекул-мишеней (стеринов, гликосфинголипидов) или липидов, влияющих на спон-
танную кривизну бислоя, таких как фосфатидилэтаноламин. Кроме того, некоторые
пептиды атакуют специфические внутриклеточные мишени [6].
В человеческой сыворотке присутствуют следующие АМП: гепцидин, гистатины,
дефензины, кателицидины, дермицидины, адреномедуллин, псориазин, секретор-
ный ингибитор лейкопротеазы, лизоцим, РНКазы, липокалины, азуроцидин, каль-
протектин, BPI (бактерицидный белок, повышающий проницаемость мембран —
bactericidal permeability-increasing protein) и лактоферрин. Многие из них выполня-
ют несколько функций помимо противомикробной.
Наиболее представленными в человеческой сыворотке в количественном от-
ношении являются лизоцим (2800±800 нг/мл) [7], РНКазы (2200±400 нг/мл) [10]
и дермцидины (2100±100 нг/мл) [11]. Их концентрации в данном ликворе вполне
соотносятся с их минимальными ингибирующими концентрациями в отношении
C. albicans, что дает основание считать именно эти АМП отвечающими за противо-
кандидозную активность сыворотки.
Лизоцим при взаимодействии с клетками C. albicans оказывает литическое
действие на клеточную стенку и цитоплазматическую мембрану [13]. Человеческие
РНКазы легко связываются с мембраной клеток C. albicans, что приводит к депо-
ляризации и разрушению мембраны. Помимо дестабилизации мембраны РНКазы
атакуют клеточную РНК, что ведет к блокированию механизмов трансляции кле-
точного белка [12]. Дермицидины, в отличие от большинства АМП, являются от-
рицательно заряженными молекулами и действуют на клетки по так называемому
«ковровому» механизму, образуют гексамерные каналы даже при отсутствии липо-
фильных молекул (детергентов или липидов) [16].
Возможно, низкие значения активности АМП-фракции сывороток в отношении
клеток M. furfur обусловлены именно их необычным строением: помимо обычной
клеточной стенки они покрыты липидной «шубкой», которая помогает им выживать
в условиях повышенных концентраций солей и липидов на поверхности кожи [1].
АМП человека и мыши, очевидно, не способны преодолеть данный барьер, тогда
как АМП быка и кролика все же проявляют некоторую активность против клеток
M. furfur (табл.). Вероятно, высокая чувствительность клеток C. albicans, R. mucilaginosa
и C. neoformans к пептидам АМП-фракции обусловлена строением их мембран
и наличием соответствующих клеточных мишеней: скорее всего, какие-то из при-
сутствующих в сыворотке АМП функционируют именно при взаимодействии с клет-
ками этих дрожжей, но не M. furfur и G. candidum. Тот факт, что клетки наиболее
клинически значимых и изученных дрожжей — C. albicans и C. neoformans — являют-
ся высокочувствительными к сывороточным АМП, открывает перспективу создания
новых противогрибковых препаратов на основе фракций сывороточных пептидов.
×

About the authors

V. G. Arzumanyan

Mechnikov Research Institute of Vaccines and Sera

Author for correspondence.
Email: fake@neicon.ru
Moscow Russian Federation

T. A. Artemeva

Mechnikov Research Institute of Vaccines and Sera

Email: fake@neicon.ru
Moscow Russian Federation

A. M. Iksanova

Mechnikov Research Institute of Vaccines and Sera

Email: fake@neicon.ru
Moscow Russian Federation

References

  1. Арзуманян В.Г. Дрожжи рода Malassezia: таксономия, идентификация, значение в экологии и патологии человека. Новое в систематике и номенклатуре грибов (ред.Ю.Т.Дьяков, Ю.В.Сергеев). Москва, Медицина для всех. 2003:458-492.
  2. Арзуманян В.Г., Мальбахова Е.Т., Фошина Е.П., Артемьева Т.А., Бутовченко Л.М., Вартанова Н.О., Шмелева О.А. Патент на изобретение № 2602298 от 21.10.2016 по заявке № 2015113069, приоритет 10.04.2015: Способ определения совокупной активности антимикробных пептидов как маркера состояния местного иммунитета различных эпителиальных тканей. Патентообладатель ФГБНУ НИИВС им. Мечникова.
  3. Арзуманян В.Г., Шмелева О.А. Клинически значимые дрожжевые грибы — классификация, антигены и современные методы диагностики. Микология сегодня. Ю.Т.Дьяков, А.Ю.Сергеев (ред.). М.: Национальная академия микологии. 2016, 3:116-139.
  4. Поляков Е.Г., Дерябин Д.Г., Гриценко В.А. Патент на изобретение № 2247987 от 10.03.2005, приоритет 22.01.2003. Способ определения бактерицидной активности сыворотки крови. Патентообладатель ООО «Центр научного зондирования» (RU).
  5. Arzumanian V., Shmeleva O., Michailova N. Elevated Activity Levels of Serum Antimicrobial Peptides in Mice as Response to Immunization with Yeast Antigens. Med. Mycol. Open. Access. 2017, 3(1):23.
  6. Guimarгes L.L., Marcos S., Toledo M.S. et al. Structural diversity and biological significance of glycosphingolipids in pathogenic and opportunistic fungi Front. Cell. Infect. Microbiol. 2014, 4:138-146.
  7. Johansson B.G., Malmquist J. Quantitative Immunochemical Determination of Lysozyme (Muramidase) in Serum and Urine. Scandinavian Journal of Clinical and Laboratory Investigation. 1971, 27(3):255-261.
  8. Kavishwar Amol, Shukla P K. Candidacidal activity of a monoclonal antibody that binds with glycosyl moieties of proteins of Candida albicans. Medical Mycology. 2006, 44(2):159-167.
  9. Magalhгes G.M., Saut J.P., Beninati T. et al. Cerebral cryptococcomas in a cow. J. Comp. Pathol. 2012, 147(2-3):106-110.
  10. Martin L., Koczera P., Simons N. et al. The Human Host Defense Ribonucleases 1, 3 and 7 Are Elevated in Patients with Sepsis after Major Surgery — A Pilot Study. Int. J. Mol. Sci. 2016, 17(3):294-305.
  11. Ortega-Martínez I., Gardeazabal J., Erramuzpe A. et al. Vitronectin and dermcidin serum levels predict the metastatic progression of AJCC I—II early-stage melanoma. Int. J. Cancer. 2016, 139(7):1598-1607.
  12. Salazar V.A., Arranz-Trullén J., Navarro S. et al. Secretory RNase 3 and RNase 7 against Candida albicans. Microbiology open. 2016, 5(5):830-845.
  13. Sebaa S., Hizette N., Boucherit-Otmani Z. et al. Dose-dependent effect of lysozyme upon Candida albicans biofilm. Mol. Med. Rep. 2017, 15(3):1135-1142.
  14. Wawron W., Bochniarz M., Piech T.Yeast mastitis in dairy cows in the middle-eastern part of Poland. Bull. Vet. Inst. Pulawy. 2010, 54:201-204.
  15. Zasloff M. Antimicrobial Peptides in Health and Disease. The New England Journal of Medicine. 2002, 347(1):1199-1200.
  16. Zeth K., Sancho-Vaello E. The Human Antimicrobial Peptides Dermcidin and LL-37 Show Novel Distinct Pathways in Membrane Interactions. Front. Chem. 2017, 5:86-92.
  17. Zimmerman L.B., Worley B.V., Palermo E.F. et al. Absorbance-based assay for membrane disruption by antimicrobial peptides and synthetic copolymers using pyrroloquinoline quinone-loaded liposomes. Anal. Biochem. 2011, 411(2):194-199.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2019 Arzumanyan V.G., Artemeva T.A., Iksanova A.M.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС77-75442 от 01.04.2019 г.


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies