Improvement of the bacteriological method for isolation of Listeria monocytogenes

Cover Image


Cite item

Full Text

Abstract

Introduction. Currently, listeriosis is regarded as one of the dangerous infections that cannot be prevented by vaccination and is characterized by the severity of the clinical process and high mortality. Improving laboratory diagnostic methods especially in listeriosis meningitis to identify the pathogen in the shortest possible time remains an urgent problem.

The aim of the study was to investigate the behavior of collection and clinical strains of various listeria species on GBM-agar — a nutrient medium for isolating pathogens of purulent bacterial meningitis — in order to improve the bacteriological method for isolating and identifying Listeria monocytogenes.

Materials and methods. In the current study, 1125 samples of clinical material and food produces were used. Of these, 95 were isolated and 5 were reference strains of Listeria spp. The following culture media to isolate listeria were used: Agar Listeria by Ottaviani and Agosti (ALOA); Listeria enrichment broth (LEB), Listeria isolation agar (LIA), GBM-agar.

Results. Of the 1125 samples involved the following strains were isolated using LEB, LIA and ALOA media: L. monocytogenes — 89, L. welshimeri — 2, L. innocua — 3, L. seeligeri — 1. All isolates and reference strains were subcultured by using conventional selective media (LIA, ALOA) and additionally GBM-agar modified by adding a selective additive to isolate L. monocytogenes, and yolk emulsion. Colonies grown on the modified GBM-agar and belonging to the Listeria genus were larger and had distinctive morphological traits making them differ from colonies obtained by means of conventional listeriosis media. This allowed for the primary differentiation of L. monocytogenes from non-pathogenic listeria species and some other pathogens of purulent bacterial meningitis.

Conclusion. It is shown that the algorithm of the culture method can use a new nutrient medium (modified GBM agar) possessing improved growth properties for L. monocytogenes, the introduction of which will serve as an additional effective means for differentiating listeria during research in sanitary and clinical microbiology.

Full Text

Введение

Листериоз является не только медико-социальной, но и экономической проблемой. Несмотря на то что в последние годы заболеваемость листериозом держится на уровне спорадических случаев, листериоз расценивается как одна из опасных вакцинонеуправляемых инфекций, характеризуется тяжестью клинического процесса и высокой летальностью (до 20%) [1, 2].

Заболеваемость листериозом обусловлена контаминацией и активным размножением листерий в продуктах питания, повышением восприимчивости к листериям у групп риска на фоне нарушений клеточного иммунитета [1, 3]. В последние годы получены данные о циркуляции листерий в растительных, почвенных, водных субстратах, их высоких адаптивных возможностях в широком температурном диапазоне, влажности и рН среды. Имеются данные о контаминации возбудителем листериоза водных источников вблизи животноводческих предприятий [4].

У здоровых людей инфицирование обычно протекает бессимптомно или в виде гастроэнтерита [1, 2, 5]. У пожилых людей с ослабленным иммунитетом, беременных женщин и новорождённых или у пациентов, получающих иммуносупрессивную терапию, листериоз может проявляться в виде бактериемии или сепсиса, поражения центральной нервной системы и т. д., приводя к серьёзным или потенциально смертельным заболеваниям, включая сепсис или менингит [2, 6, 7–12].

Клинические проявления этих форм заболевания, включая листериозный менингит, неспецифичны, в основном это повышение температуры, головная боль, рвота и расстройства сознания, что аналогично другим типам гнойного менингита [2, 3, 6, 7].

Листериоз вызывают грамположительные, факультативно анаэробные, энтероинвазивные бактерии рода Listeria. Основным возбудителем заболеваний человека является L. monocytogenes, который способен вызвать листериоз и у животных [1]. Основной возбудитель листериоза у животных — L. ivanovii, который в редких случаях может привести к заболеванию у людей [19]. Известны единичные случаи листериоза, вызванные L. innocua и L. seeligeri [20, 21].

При лабораторной диагностике листериозов и санитарно-бактериологических исследованиях ведущую роль занимает бактериологический метод с использованием питательных сред [13].

Выделение листерий из нестерильного клинического материала и пищевых продуктов удаётся лишь с помощью селективных питательных сред или процедуры обогащения. В качестве селективных сред обогащения используют питательный бульон для выделения и культивирования листерий (ПБЛ), бульон Фрейзера, бульон UVM, в качестве селективных дифференциально-диагностических сред: питательный агар для выделения листерий (ПАЛ), агар Listeria пo Оттавиани и Агости (ALOA), Бриллианс Listeria агар, Оксфорд агар, Палкам агар и др.

Среды ПАЛ, Палкам агар не обеспечивают видовую дифференциацию листерий. На таких средах выделение листерий основано на их способности гидролизовать эскулин с образованием эскулетина, который в присутствии ионов железа образует чёрный комплекс; в результате листерии всех видов формируют колонии сероватого цвета с чёрной зоной вокруг.

Хромогенные среды (ALOA и Бриллианс Listeria агар) со специальной селективной и хромогенной добавками позволяют выделять листерии разных видов в виде колоний сине-зелёного цвета и дифференцировать L. monocytogenes и некоторые штаммы L. ivanovii от других видов Listeria по образованию характерного ореола вокруг колоний за счёт способности продуцировать фосфолипазу С.

Селективность сред по отношению к сопутствующей микрофлоре обеспечивается включением в их состав хлорида лития, акрифлавина, циклогексимида, налидиксиновой кислоты, полимиксина и других антибиотиков [14].

Для выделения листерий из стерильных в норме биологических субстратов (кровь, спинномозговая жидкость и др.), что характерно при бактериологическом исследовании менингита, могут быть использованы кровяной и шоколадный агары, а также ГБМ-агар — питательная среда для выделения и культивирования возбудителей гнойных бактериальных менингитов без селективных добавок [15]. Листерии на этих средах через 24–48 ч культивирования вырастают в виде круглых выпуклых полупрозрачных непигментированных колоний с гладкой поверхностью.

Богатая основа ГБМ-агара, содержащая гидролизат казеина, пептон, дрожжевой экстракт, стимулятор роста гемофильных микроорганизмов, глюкозу, способна поддерживать рост листерий различных видов.

Поскольку основное назначение ГБМ-агара связано с культивированием и выделением трех основных возбудителей бактериальных менингитов: Haemophilus influenzae type B, Streptococcus pneumoniae, Neisseria meningitidis, в его состав входят селективные добавки только для них. Селективные добавки для листерий имеют иной состав антибиотиков и содержат краситель акрифлавин, обладающий антисептическими свойствами и способный придавать колониям L. monocytogenes зелёный цвет.

Предварительные исследования клинического материала от больных менингитом показали, что использование ГБМ-агара с селективной добавкой для листерий позволяет выделить возбудитель листериоза в более короткие сроки, чем обычные листериозные среды.

Для внедрения питательной среды в схему лабораторной диагностики листериоза необходимы исследования с использованием широкого набора штаммов, относящихся к L. monocytogenes и другим видам листерий.

Цель исследования — изучить поведение музейных и клинических штаммов различных видов листерий на ГБМ-агаре для усовершенствования бактериологического метода при выделении и идентификации L. monocytogenes в клинической и санитарной микробиологии.

Материалы и методы

В работе использованы: клинический материал (секционный материал, кровь, спинномозговая жидкость, отделяемое цервикального канала), продовольственное сырье и пищевые продукты, поступившие в испытательный лабораторный центр ГНЦ прикладной микробиологии и биотехнологии (ГНЦ ПМБ) (всего 1125 образцов); музейные тест-штаммы микроорганизмов, полученные из Государственной коллекции патогенных микроорганизмов и клеточных культур «ГКПМ-Оболенск»: L. monocytogenes 766, L. monocytogenes NCTC11994, L. ivanovii ATCC19119, L. innocua NCTC 11288, L. seeligeri АТСС 35967, Escherichia coli АТСС 25922, Proteus vulgaris HX 19 222, Staphylococcus aureus Wood-46, S. pneumoniae ATCC 6305, N. meningitidis ATCC 13102, H. influenzae ATCC 49247. Пробоподготовка образцов и их исследования осуществлены с использованием алгоритмов и методов, рекомендованных СанПиН 3.3686-211, МУК 4.2.1122-022, ГОСТ 32031-20223. Исследование проводилось при добровольном информированном согласии пациентов или их законных представителей. Протокол исследования одобрен Этическим комитетом ГНЦ ПМБ (протокол № ВП-2025/3 от 17.05.2025).

Для накопления листерий использованы питательные среды производства ГНЦ ПМ: питательный бульон для культивирования и выделения листерий c внесением селективной добавки (Среда ПБЛ, ГНЦПМБ, РУ № ФСР 2010/09161); в качестве дифференциально-диагностических — питательный агар для культивирования и выделения листерий c внесением селективной добавки (Среда ПАЛ, ГНЦ ПМБ, РУ № ФСР 2010/09162); Listeria Ottaviani Agosti HiCynth Agar (ALOA, «HiMedia», РУ № ФСЗ 2009/03705) c внесением добавок Enrichment Supplement (FD214), Selective Supplement (FD 212A); питательная среда для выделения возбудителей гнойных бактериальных менингитов (ГБМ-агар, ГНЦ ПМБ, РУ № РЗН 2016/4872) с внесением селективной добавки (полимиксина В сульфат — 0,01 г/л; налидиксовая кислота — 0,025 г/л; акрифлавин — 0,01 г/л) (далее — модифицированный ГБМ-агар).

Для определения лецитиназной активности использовали питательную среду для количественного определения микробной загрязнённости (среда № 1 ГРМ, ГНЦ ПМБ, РУ № ФСР 2011/11415) и модифицированный ГБМ-агар с внесением ex tempore 5% желточной эмульсии, и эти же среды с внесением активированного угля в концентрации 0,5%.

Идентификацию изолятов проводили на автоматической системе «MALDI Biotyper» («Bruker Daltonik»).

Результаты

Исследования проведены в 2 этапа. Первый этап был посвящён выделению возбудителя листериоза из клинического материала, продовольственного сырья и пищевых продуктов. Подготовленные к исследованию образцы высевали на среду обогащения — ПБЛ. Через 24 и 48 ч инкубации при 37 ± 1°С со среды ПБЛ проводили высевы культуральной жидкости на специальные питательные среды для выделения листерий (ПАЛ, ALOA). После инкубации отобраны характерные колонии, предположительно относящиеся к листериям, и субкультивированы на среде № 1 ГРМ для последующей идентификации с помощью автоматической системы «MALDI Biotyper». В ходе исследования выделены 89 изолятов L. monocytogenes, 2 изолята L. welshimeri, 3 изолята L. innocua, 1 изолят L. seeligeri.

На втором этапе изучили поведение всех выделенных изолятов, в том числе от больных менингитом, и тест-штаммов листерий на ГБМ-агаре в сравнении с поведением их на классических питательных средах (ПАЛ, ALOA) в условиях равнозначности.

На среде ПАЛ выделенные культуры и тест-штаммы L. monocytogenes через 24 ч формировали мелкие, сероватого цвета колонии диаметром до 1,0 мм; на 2-е сутки их размер увеличивался до 1,2–1,4 мм. На среде ALOA L. monocytogenes вырастали в виде колоний сине-зелёного цвета, окружённых непрозрачным ореолом диаметром 0,6–0,8 мм на 1-е сутки инкубации посевов и диаметром до 2,0 мм — на 2-е сутки. На модифицированном ГБМ-агаре уже через 18 ч инкубации L. monocytogenes диаметр колоний достигал 1,5–2,5 мм (рис. 1). Колонии приобретали при этом зеленоватый цвет, в отличие от колоний, полученных на классической среде ПАЛ.

 

Рис. 1. Рост выделенных культур L. monocytogenes на ПАЛ (1), ALOA (2) и модифицированном ГБМ-агаре (3).

 

Рост других видов листерий на ГБМ-агаре отличался от роста L. monocytogenes. При изучении характера их роста музейные тест-штаммы: L. ivanovii ATCC19119, L. innocua NCTC 11288, L. seeligeri АТСС 35967 и выделенные культуры листерий: L. welshimeri, L. innocua, L. seeligeri высевали на модифицированный ГБМ-агар и среды сравнения ПАЛ и ALOA. Через 18–24 ч инкубации на модифицированном ГБМ-агаре рост данных видов листерий обнаруживался в виде гладких колоний молочного цвета диаметром 1,6–2,0 мм, в отличие от сред ПАЛ и ALOA, на которых наблюдался рост мелких колоний диаметром 0,3–0,8 мм.

При посеве из смеси тест-штамма L. monocytogenes 766 и L. innocua NCTC 11288 на модифицированный ГБМ-агар и последующей инкубации при 37 ± 1°С в течение 18 ч обнаружено, что среда обладает дифференцирующими свойствами: рост тест-штамма L. monocytogenes 766 наблюдался в виде колоний зеленоватого цвета диаметром 1,8–2,2 мм; L. innocua NCTC 11288 — в виде колоний молочного цвета диаметром 1,5–1,8 мм (рис. 2).

 

Рис. 2. Рост смеси тест-штаммов L. monocytogenes 766 и L. innocua NCTC 11288 на модифицированном ГБМ-агаре.

 

Кроме того, при добавлении в модифицированную среду ГБМ-агар желточной эмульсии обеспечивалась чёткая дифференциация тест-штамма L. ivanovii ATCC19119, обладающего лецитиназной активностью, от тест-штамма L. innocua NCTC 11288, не имеющего лецитиназы (рис. 3).

 

Рис. 3. Рост смеси тест-штаммов L. ivanovii ATCC19119 и L. innocua NCTC 11288 на модифицированном ГБМ-агаре с внесением желточной эмульсии.

 

Исследования клинического материала, продовольственного сырья и пищевых продуктов на наличие листерий включают стадию по определению лецитиназной активности, наличие которой является показателем патогенности, для подтверждения принадлежности выделенных бактерий к виду L. monocytogenes. Оригинальность бактериологического метода основана на сопоставлении лецитиназной активности культуры в присутствии или при отсутствии активированного угля. В данной работе предпринята попытка определить лецитиназную активность листерий в соответствии с методикой, регламентированной нормативными документами МУК 4.2.1122-02 и ГОСТ 32031-2022 при использовании модифицированного ГБМ-агара с внесением желточной эмульсии с активированным углём и без него. Выделенные культуры L. monocytogenes и тест-штаммы L. monocytogenes 766 и L. ivanovii ATCC19119 высевали на среду из разведений 10–6. Посевы инкубировали при 37 ± 1°С в течение 24 ч и просматривали их в проходящем свете. В качестве контрольной среды сравнения применяли традиционно используемую для этих целей среду № 1 ГРМ.

На среде № 1 ГРМ с внесением желточной эмульсии в присутствии угля через 24 ч наблюдалась плотная зона помутнения вокруг колоний выделенных штаммов L. monocytogenes, тест-штамма L. monocytogenes 766 и L. ivanovii ATCC19119 шириной более 2,0 мм, характерной для проявления лецитиназной активности культур. На той же среде без активированного угля вокруг колоний L. monocytogenes зон помутнения не отмечалось, в отличие от колоний L. ivanovii ATCC19119.

На модифицированном ГБМ-агаре с желточной эмульсией без угля также наблюдалось чётко различимое проявление лецитиназной активности только вокруг колоний L. ivanovii ATCC19119 (рис. 4).

 

Рис. 4. Рост тест-штамма L. ivanovii ATCC19119 на модифицированной среде ГБМ-агар с внесением желточной эмульсии.

 

Внесение в модифицированный ГБМ-агар активированного угля в тех же концентрациях приводило к более интенсивному почернению среды, что не дало возможности рассмотреть и правильно интерпретировать результаты по выявлению лецитиназной активности.

При определении селективных свойств модифицированного ГБМ-агара обнаруживалось подавление роста тест-штаммов E. coli АТСС 25922, P. vulgaris HX 19 222, S. aureus Wood-46, S. pneumoniae ATCC 6305, N. meningitidis ATCC 13102, H. influenzae ATCC 49247 из разведений 10–4.

Обсуждение

Менингит, вызванный L. monocytogenes, является серьёзным и опасным для жизни заболеванием. В последние годы L. monocytogenes является третьей по распространённости причиной бактериального менингита у пожилых людей после S. pneumoniae и N. meningitidis из-за снижения заболеваемости менингитом, вызванным H. influenzae типа b в связи с вакцинацией [18]. Заболевание чаще встречается у пожилых людей, клинические проявления при этом виде менингита не специфичны, поэтому для правильной постановки диагноза важно учитывать результаты бактериологического исследования, направленного на выделение и идентификацию возбудителя.

Питательная среда ГБМ-агар, предназначенная для выделения основных возбудителей гнойных бактериальных менингитов, хорошо зарекомендовала себя при исследовании клинического материала на наличие S. pneumoniae, N. meningitidis и H. influenzae типа b [15]. Поэтому представляло интерес изучение возможности использования данной питательной среды для выделения листерий, но при использовании для этого специальной селективной добавки для листерий. Входящие в её состав антибиотики ингибируют рост основных возбудителей гнойного бактериального менингита, а также ряда других микроорганизмов (например, E. coli, P. vulgaris, S. aureus). Среду с селективной добавкой назвали модифицированным ГБМ-агаром.

В нашем исследовании изучено поведение различных видов листерий на модифицированном ГБМ-агаре: 89 изолятов L. monocytogenes, 2 изолята L. welshimeri, 3 изолята L. innocua, 1 изолят L. seeligeri и 5 тест-штаммов Listeria spp. На модифицированном ГБМ-агаре колонии L. monocytogenes приобретали зеленоватый цвет и уже через 18 ч инкубации значительно превосходили по размеру колонии на классической среде ПАЛ и даже ALOA. При этом непатогенные листерии формировали некрупные колонии молочного/кремового цвета. Такая способность модифицированного ГБМ-агара позволит ускорить выделение и дифференциацию основного возбудителя листериоза — L. monocytogenes — от других видов листерий по морфологическим особенностям колоний (цвет и размер).

Добавление в модифицированный ГБМ-агар желточной эмульсии обеспечивало чёткую дифференциацию тест-штамма L. ivanovii ATCC19119, обладающего лецитиназной активностью, от тест-штамма L. innocua NCTC 11288, не имеющего лецитиназы. Однако добавление активированного угля, который активизирует проявление лецитиназной активности у L. monocytogenes на среде № 1 ГРМ, зон помутнения вокруг колоний L. monocytogenes не наблюдали. Возможно, такая ситуация объясняется более интенсивным почернением ГБМ-агара, который из-за входящего в его состав стимулятора роста гемофильных микроорганизмов уже окрашен в тёмно-коричневый цвет. И на такой тёмной питательной среде трудно рассмотреть и правильно интерпретировать результаты по выявлению лецитиназной активности.

И.С. Тартаковским и соавт. было отмечено, что идентификация L. monocytogenes по выявлению лецитиназной активности часто затруднена вследствие морфологических и биохимических особенностей возбудителя листериоза [13]. В работах отечественных и зарубежных авторов упоминается, что при культивировании на питательных средах, содержащих желточную эмульсию, лецитиназная активность листерий выявляется чрезвычайно слабо или вообще не наблюдается. Добавление активированного угля может сорбировать секретируемый листериями продукт, ингибирующий продуцирование фермента лецитиназы [13, 16, 17].

Заключение

Показана возможность использования в алгоритме культурального метода новой питательной среды (модифицированный ГБМ-агар), обладающей улучшенными ростовыми свойствами в отношении L. monocytogenes. Её внедрение послужит дополнительным эффективным средством для дифференциации листерий при проведении исследований в санитарной и клинической микробиологии.

 

1 СанПиН 3.3686-21 «Санитарно-эпидемиологические требования по профилактике инфекционных болезней» (введён в действие 01.09.2021).

2 МУК 4.2.1122-02 «Организация контроля и методы выявления бактерий Listeria monocytogenes в пищевых продуктах: методические указания». М.; 2002.

3 ГОСТ 32031-2022 «Продукты пищевые. Методы выявления бактерий Listeria monocytogenes и других видов Listeria (Listeria spp.)».

×

About the authors

Mikhail V. Khramov

State Research Center for Applied Microbiology and Biotechnology

Email: khramov@obolensk.org
ORCID iD: 0000-0002-4553-3826

Cand. Sci. (Med.), Deputy director for quality and development

Россия, Obolensk

Lyubov V. Domotenko

State Research Center for Applied Microbiology and Biotechnology

Email: domotenko@obolensk.org
ORCID iD: 0000-0002-4785-6418

Cand. Sci. (Chem.), leading researcher, Nutrient medium development laboratory

Россия, Obolensk

Olga V. Polosenko

State Research Center for Applied Microbiology and Biotechnology

Author for correspondence.
Email: polosenko.olga@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-5961-9041

Cand. Sci. (Biol.), leading researcher, Microbiology research sector

Россия, Obolensk

Irina P. Mitsevich

State Research Center for Applied Microbiology and Biotechnology

Email: mitsevichev@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-2324-502X

senior researcher, Аntimicrobial drugs laboratory

Россия, Obolensk

References

  1. Тюкавкина С.Ю., Котиева И.М., Додохова М.А. и др. Патогенез и клинические формы листериоза человека. Южно-Российский журнал терапевтической практики. 2024;5(1):99–111. Tyukavkina S.Yu., Kotieva I.M., Dodokhova M.A., et al. Pathogenesis and clinical forms of human listeriosis. South-Russian Journal of Therapeutic Practice. 2024;5(1):99–111. DOI: https://doi.org/10.21886/2712-8156-2024-5-1-99-111 EDN: https://elibrary.ru/kztkts
  2. Тагирова З.Г., Понежева Ж.Б., Макашова В.В. и др. Менингоэнцефалит листериозной этиологии. Случай из практики. Лечащий врач. 2023;11(26):21–5. Tagirova Z.G., Ponezheva Zh.B., Makashova V.V., et al. Meningoencephalitis of listeriosis etiology. A case from practice. Lechaschi Vrach Journal. 2023;11(26):21–5. DOI: https://doi.org/10.51793/OS.2023.26.11.003 EDN: https://elibrary.ru/jfslpg
  3. Нагибина М.В., Бессараб Т.П., Венгеров Ю.Я. и др. Листериозный менингоэнцефалит как оппортунистическое заболевание при ВИЧ-инфекции. Журнал инфектологии. 2023; 15(1):68–77. Nagibina M.V., Bessarab T.P., Vengerov Yu.Ya., et al. Listeriosis meningoencephalitis as an opportunistic disease in HIV infection. Journal Infectology. 2023;15(1):68–77. DOI: https://doi.org/10.22625/2072-6732-2023-15-1-68-77 EDN: https://elibrary.ru/ifevbe
  4. Алексеева E.A., Полосенко О.В., Фурсова Н.К. и др. Первый случай выявления Listeria monocytogenes сиквенс-типов ST7, ST20, ST425 в сточных водах при обследовании водных объектов Вологодской области. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2022;99(4):453–64. Alekseeva E.A., Polosenko O.V., Fursova N.K. et al. The first case of detection of Listeria monocytogenes sequence types ST7, ST20, ST425 in wastewater during an investigation of water bodies in the Vologda region. Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology 2022; 99(4): 453–464. DOI: https://doi.org/10.36233/0372-9311-266 EDN: https://elibrary.ru/gashhr
  5. Hobbs J.L., Lee C., Thompson B., et al. Two Listeria monocytogenes outbreaks in a cancer centre: onsite food premises and their potential health risk to patients. BMC Public Health. 2023;23(1):1443. DOI: https://doi.org/10.1186/s12889-023-16371-7
  6. Сорокина М.Н., Иванова В.В., Скрипченко Н.В. Бактериальные менингиты у детей. М.;2003. Sorokina M.N., Ivanova V.V., Skripchenko N.V. Bacterial Meningitis in Children. Moscow;2003.
  7. Тагирова З.Г., Нагибина М.В., Макашова В.В. и др. Листериозный менингоэнцефалит: особенности течения и диагностики (клиническое наблюдение). РМЖ. Медицинское обозрение. 2023;7(11):766–70. Tagirova Z.G., Nagibina M.V., Makashova V.V., et al. Listeria meningoencephalitis: specifics of its course and diagnosis (case report). Russian Medical Inquiry. 2023;7(11):766–770. DOI: https://doi.org/10.32364/2587-6821-2023-7-11-9 EDN: https://elibrary.ru/xfibcs
  8. Воронина О.Л., Рыжова Н.Н., Кунда М.С., и др. Динамика спектра генотипов Listeria monocytogenes, вызвавшей инвазивный листериоз в период циркуляции вариантов SARS-CoV-2 Omicron. Молекулярная генетика, микробиология и вирусология. 2024;42(3):29–36. Voronina O.L., Ryzhova N.N., Kunda M.S., et al. Dynamics of the spectrum of genotypes of Listeria monocytogenes, which caused invasive listeriosis during the period of circulation of SARS-CoV-2 Omicron variants. Molecular Genetics, Microbiology and Virology. 2024;42(3):29–36. DOI: https://doi.org/10.17116/molgen20244203129 EDN: https://elibrary.ru/mjgjvp
  9. Алексеева E.A., Шепелин А.П., Полосенко О.В. Опыт выделения Listeria monocytogenes на территории Вологодской области. Бактериология. 2019;4(2):31–6. Alekseeva E.A., Shepelin А.Р., Polosenko O.V. Experience a selection of Listeria monocytogenes in the territory of the Vologda region. Bacteriology. 2019;4(2):31–6. DOI: https://doi.org/10.20953/2500-1027-2019-2-31-36 EDN: https://elibrary.ru/humtek
  10. Меньшиков В.В., ред. Клиническая лабораторная аналитика. Частные аналитические технологии в клинической лаборатории. Том 6. М.;2003:578–82. Men'shikov V.V., ed. Clinical Laboratory Analysis. Private Analytical Technologies in the Clinical Laboratory. Volume 6. Moscow;2003:578–82.
  11. Xu X., Shan Y., Cen Y., et al. Clinical characteristics and treatment of Listeria monocytogenes infections in the central nervous system. Infect. Drug Resist. 2023;16:5899–909. DOI: https://doi.org/10.2147/idr.s424012
  12. Paranjape N. Rhombencephalitis due to Listeria monocytogenes. IDCases. 2021;24:e01081. DOI: https://doi.org/10.1016/j.idcr.2021.e01081
  13. Тартаковский И.С., Малеев В.В., Ермолаева С.А. Листерии: роль в инфекционной патологии человека и лабораторная диагностика. М.;2002. Tartakovsky I.S., Maleev V.V., Ermolaeva S.A. Listeria: its role in human infectious pathology and laboratory diagnostics. Moscow;2002. EDN: https://elibrary.ru/pbdion
  14. Алексеева Е.А., Миронов А.Ю., Полосенко О.В. и др. Выделение и идентификация листерий из клинического материала. Клиническая лабораторная диагностика. 2022;67(6):362–8. Alekseeva E.A., Mironov A.Yu., Polosenko O.V., et al. Isolation and identification of Listeria in clinical material. Clinical Laboratory Diagnostics. 2022;67(6):362–8. DOI: https://doi.org/10.51620/0869-2084-2022-67-6-362-368 EDN: https://elibrary.ru/hiaphn
  15. Подкопаев Я.В., Домотенко Л.В., Круглов А.Н. и др. Сравнительная оценка питательных сред для выделения возбудителей гнойных бактериальных менингитов. Инфекция и иммунитет. 2016;6(4):389–94. Podkopaev Ya.V., Domotenko L.V., Kruglov A.N., et al. Comparative evaluation of culture media for pathogen isolation of purulent bacterial meningitis. Russian Journal of Infection and Immunity. 2016;6(4):389–94. EDN: https://elibrary.ru/xetljd
  16. Омарова С.М., Исаева Р.И., Багандова Д.Ш. и др. Разработка и изучение питательных сред для определения биологических свойств листерий. Клиническая лабораторная диагностика. 2022;67(2):110–4. Omarova S.M., Isaeva R.I., Bagandova D.Sh.. et al. Development and study of nutrient media for determining the biological properties of Listeria. Clinical Laboratory Diagnostics. 2022;67(2):110–4. DOI: https://doi.org/10.51620/0869-2084-2022-67-2-110-114 EDN: https://elibrary.ru/vuylev
  17. Vazquez-Boland J.A., Kocks C., Dramsi S., et al. Nucleotide sequence of the lecithinase operon of Listeria monocytogenes and possible role of lecithinase in cell-to-cell spread. Infect. Immun. 1992;60(1):219–30. DOI: https://doi.org/10.1128/iai.60.1.219-230.1992
  18. Amaya-Villar R., García-Cabrera E., Sulleiro-Igual E., et al. Three-year multicenter surveillance of community-acquired Listeria monocytogenes meningitis in adults. BMC Infect. Dis. 2010;10:324. DOI: https://doi.org/10.1186/1471-2334-10-324
  19. Guillet C., Join-Lambert O., Le Monnier A., et al. Human listeriosis caused by Listeria ivanovii. Emerg. Infect. Dis. 2010;16(1):136–8. DOI: https://doi.org/10.3201/eid1601.091155
  20. Perrin M., Bemer M., Delamare C. Fatal case of Listeria innocua bacteremia. J. Clin. Microbiol. 2003;41(11):5308–9. DOI: https://doi.org/10.1128/jcm.41.11.5308-5309.2003
  21. Rocourt J., Hof H., Schrettenbrunner A., et al. Acute purulent Listeria seelingeri meningitis in an immunocompetent adult. Schweiz. Med. Wochenschr. 1986;116(8):248–51. (in French)

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
Download
2. Fig. 1. Growth of isolated L. monocytogenes cultures on PAL (1), ALOA (2) and modified GBM agar (3).

Download (96KB)
Indexing metadata
3. Fig. 2. Growth of a mixture of test strains L. monocytogenes 766 and L. innocua NCTC 11288 on modified GBM agar.

Download (77KB)
Indexing metadata
4. Fig. 3. Growth of a mixture of test strains L. ivanovii ATCC19119 and L. innocua NCTC 11288 on modified GBM agar with the addition of yolk emulsion.

Download (46KB)
Indexing metadata
5. Fig. 4. Growth of the test strain L. ivanovii ATCC19119 on modified GBM-agar medium with the addition of yolk emulsion.

Download (37KB)
Indexing metadata

Copyright (c) 2025 Khramov M.V., Domotenko L.V., Polosenko O.V., Mitsevich I.P.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС77-75442 от 01.04.2019 г.


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies