Results of reconnaissance epizootiological monitoring for West Nile fever in certain regions of European Russia and the Urals in 2024
- Authors: Borodai N.V.1, Nesgovorova A.V.1, Mendygalieva A.K.1, Koloskova A.Y.1, Udovichenko S.K.1, Zarubin N.A.1, Kargashin S.A.1, Gusev Y.A.1, Baturin A.A.1, Khabarova I.A.1, Putintseva E.V.1, Toporkov A.V.1
-
Affiliations:
- Volgograd Plague Control Research Institute
- Issue: Vol 102, No 4 (2025)
- Pages: 413-424
- Section: ORIGINAL RESEARCHES
- URL: https://microbiol.crie.ru/jour/article/view/18767
- DOI: https://doi.org/10.36233/0372-9311-654
- EDN: https://elibrary.ru/VMOBYD
- ID: 18767
Cite item
Full Text
Abstract
Introduction. Climate warming contributes to the intensification of epizootic and epidemic processes of West Nile fever (WNF). In southern Russia, the activity of the epizootic process is recorded annually, but in the central region of the European part of the country and in the Urals, the enzootic circulation of the West Nile virus (WNV) has not been confirmed in the territory of 20 subjects.
The aim of the study is to investigate zoological and entomological material for WNV infection to confirm the ongoing epizootic process in old WNV foci and in previously non-endemic areas.
Materials and methods. Field samples were collected in 2024 in 19 subjects in accordance with the methods regulated in normative documents. The material was studied using the reverse transcription polymerase chain reaction method.
Results. In total, during the 2024 field season, 5,419 samples of field samples were examined: 684 samples of birds from 74 species, 455 samples of small mammals from 13 species, 45 samples of frogs from 1 species, 3,665 samples of blood-sucking mosquitoes from 33 species (93,438 specimens), and 570 samples of ixodid ticks from 17 species (4,809 specimens). Markers of WNV in field samples were detected in 7 subjects from 3 federal districts. In the Kirov and Chelyabinsk regions and the Republic of Mordovia, evidence of the ongoing epizootic process of WNF has been obtained for the first time. WNV RNA was detected in 6 (0.5%) out of 1184 tested samples of vertebrate animals and in 27 (0.6%) out of 4235 samples of arthropods. The level of individual infection was 0.03% in blood-sucking mosquitoes, 0.06% in ixodid ticks, and 0.9% in birds.
Conclusion. The results of the studies confirm the enzootic circulation of WNV in the territories of the Southern, Volga and Ural Federal Districts.
Full Text
Введение
Лихорадка Западного Нила (ЛЗН) — энзоотичное природно-очаговое трансмиссивное инфекционное заболевание, возбудителем которого является вирус Западного Нила (ВЗН) из рода Orthoflavivirus. Резервуарный хозяин возбудителя инфекции — птицы, переносчики — кровососущие комары [1].
Потепление климата за последние десятилетия способствовало трансформации многих экосистем на планете, что повлекло за собой изменения в естественной среде обитания различных видов животных, в том числе резервуаров и переносчиков ВЗН. Повышение температуры приводит к увеличению скорости репликации возбудителя, удлинению периода пребывания перелётных птиц в местах гнездования, а также ускоренному развитию, увеличению сроков активности и расширению ареалов кровососущих комаров-переносчиков [2, 3]. Всё это способствует интенсификации эпизоотического и эпидемического процессов ЛЗН на природно-очаговых территориях и расширению ареала циркуляции ВЗН.
Целенаправленный мониторинг инфицированности популяций резервуаров и переносчиков даёт возможность выявить признаки активизации эпизоотического процесса, своевременно провести мероприятия по снижению численности переносчиков и информировать население о необходимости применения средств индивидуальной и коллективной защиты от укусов комаров. Кроме того, эффективный мониторинг позволяет осуществлять динамические наблюдения за активностью природных очагов ЛЗН.
В начале изучения ЛЗН общеприняты были представления о том, что ареал ВЗН ограничен только территориями экваториального, субэкваториального, тропического, субтропического и южной части умеренного климатических поясов. На территории бывшего СССР он охватывал юг европейской части России, Белоруссию, Молдавию, Украину, Азербайджан, Грузию, Таджикистан, Киргизию, Казахстан, Туркменистан. Впервые в СССР вирус был выделен в 1963 г. из иксодовых клещей Hyalomma plumbeum (совр. Hyalomma marginatum) в Астраханской области, а также поползня и чёрного дрозда из Азербайджана [4]. В 1980-х гг. возбудитель был обнаружен в регионах, расположенных значительно севернее: в грачах и нидиколах их гнёзд из Омской области, в нидиколах из Новосибирской области [5], комарах Aedes vexans из Республики Татарстан [6]. Во время вспышки ЛЗН в Москве в 2021 г. при исследовании полевого материала РНК ВЗН была выявлена в 14,2% проб от общего количества исследованных кровососущих комаров, 68,0% особей павших и 32,0% живых птиц [7]. Полученные данные свидетельствовали о более широком территориальном распространении возбудителя ЛЗН, чем было принято ранее [8]. По состоянию на начало 2024 г. на территории Российской Федерации маркеры ЛЗН выявлены в материале от носителей и переносчиков в 52 субъектах. На юге России активность эпизоотического процесса регистрируют ежегодно. Вместе с тем обращает на себя внимание отсутствие положительных находок в некоторых субъектах центрального региона европейской части России и на Урале — энзоотическая циркуляция ВЗН не подтверждена на территории 10 субъектов Центрального федерального округа (ЦФО), 6 — Приволжского (ПФО), 4 — Уральского (УФО). На некоторых из таких «молчащих» территорий выявлены местные случаи заболевания людей ЛЗН, что указывает на наличие очагов этой арбовирусной инфекции. Поэтому проведение активных рекогносцировочных обследований, направленных на уточнение нозоареала, является актуальным.
Цель настоящей работы — исследовать зоолого-энтомологический материал на инфицированность ВЗН для подтверждения течения эпизоотического процесса в «старых» очагах ЛЗН и на ранее неэндемичных территориях.
Материалы и методы
Сбор полевого материала для исследований на базе Референс-центра по мониторингу за возбудителем ЛЗН в сезон 2024 г. осуществлён с апреля по ноябрь в 19 субъектах РФ (рисунок) сотрудниками ФКУЗ «Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт» Роспотребнадзора, а также противочумными учреждениями и ФБУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии» в субъектах РФ. Авторы подтверждают соблюдение институциональных и национальных стандартов по использованию лабораторных животных в соответствии с «Consensus Author Guidelines for Animal Use» (IAVES, 23.07.2010).
Субъекты, на территории которых проведён отбор проб зоолого-энтомологического материала в 2024 г., и точки выявления положительных находок РНК ВЗН от птиц и членистоногих.
Отлов мелких млекопитающих осуществляли ловушками Геро. Птиц добывали сотрудники охотничьих хозяйств отстрелом, сбор павших особей проводили сотрудники зоогрупп и научные сотрудники. Отбор проб кровососущих комаров в открытых биотопах на приусадебных участках, берегах водоёмов, кладбищах, в лесах осуществляли с помощью автоматических ловушек «BG-sentinel-2» («Biogents AG»), «ЛовКом» («ПроТехноСистемс»), «Mosquito Magnet Executive» («Woodstream»), «Black Kill М3000» («Black Kill») и энтомологического сачка. В закрытых биотопах (птичники, хлева, подвалы многоэтажных домов) комаров отлавливали с помощью эксгаустеров и аккумуляторных пылесосов: «BLV 18-200» («Karcher») и «Tefal X-PERT 3.60 Versatile Handstick TY6975WO» («Tefal»). Сбор иксодовых клещей проводили классическими методами: в природе — энтомологическим флагом по растительности, в населённых пунктах — с животных (мелкий и крупный рогатый скот, собаки, кошки).
Собранных членистоногих доставляли в термоконтейнерах с аккумуляторами холода в лабораторию, определяли с помощью стереомикроскопов «Stemi 2000C» («Karl Zeiss») и «МСП-1» («ЛОМО») на охлаждённой поверхности до вида по стандартным ключам [9–12]. Пулировали членистоногих в криопробирки объёмом 2 мл.
Транспортировали полевой материал на сухом льду или в автомобильных холодильниках при –20℃. Для анализа климатических факторов использовали данные Федеральной службы по гидрометеорологии и мониторингу окружающей среды в Российской Федерации1.
Полевой материал исследовали методом полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией на стационарной лабораторной базе Волгоградского научно-исследовательского противочумного института Роспотребнадзора. Для экстракции РНК ВЗН готовили суспензии кровососущих членистоногих, а также органов птиц, мелких млекопитающих и лягушек (в объединённой пробе от каждой особи — головной мозг, почки, селезёнка). Обнаружение РНК ВЗН проводили с использованием набора реагентов «АмплиСенс WNV-FL» (ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора) в соответствии с инструкцией производителя. Определение генотипа ВЗН в положительных пробах осуществляли посредством набора реагентов «Амплиген-WNV-генотип-1/2/4» (Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора).
Инфицированность позвоночных определяли путём выделения доли положительных проб от общего объёма исследованных (в %), индивидуальную инфицированность членистоногих — по формуле В.Н. Беклемишева [13]. Статистическую обработку материалов и вычисления проводили в программе «Microsoft Excel».
Результаты
Всего в полевой сезон 2024 г. исследовано 5419 проб полевого материала: 684 пробы птиц 74 видов, 455 проб мелких млекопитающих 13 видов, 45 проб лягушек 1 вида, 3665 проб кровососущих комаров 33 видов (93 438 экземпляров), 570 проб иксодовых клещей 17 видов (4809 экземпляров). В табл. 1 представлены объёмы птиц, мелких млекопитающих, комаров и иксодовых клещей по субъектам. В Волгоградской области также собрано 45 лягушек.
Таблица 1. Объёмы собранного в 2024 г. полевого материала
Субъект | Птицы (особей) | Мелкие млекопитающие (особей) | Комары | Иксодовые клещи | ||
экземпляров | проб | экземпляров | проб | |||
Астраханская область | – | – | 7231 | 254 | 559 | 81 |
Волгоградская область | 332 | – | 11 355 | 423 | 350 | 75 |
Ростовская область | – | – | 3189 | 124 | 5 | 2 |
Республика Калмыкия | – | – | 598 | 25 | – | |
Республика Адыгея | 7 | 9 | 2926 | 112 | 370 | 67 |
Краснодарский край | 1 | – | 9736 | 341 | – | – |
Челябинская область | – | – | 2430 | 97 | – | – |
Оренбургская область | 20 | 35 | 8855 | 312 | 230 | 23 |
Республика Башкортостан | 5 | 30 | 4102 | 158 | 400 | 40 |
Пермский край | 24 | 54 | 3034 | 142 | 779 | 70 |
Кировская область | – | 75 | 7067 | 276 | 200 | 21 |
Республика Мордовия | 44 | 60 | 5252 | 254 | 109 | 24 |
Удмуртская Республика | 23 | 73 | 2995 | 120 | 222 | 20 |
Брянская область | 166 | – | 2493 | 97 | – | – |
Смоленская область | 4 | 35 | 5650 | 214 | 400 | 20 |
Орловская область | 20 | 15 | 2736 | 117 | 310 | 33 |
Московская область | 17 | 18 | 4054 | 168 | 57 | 8 |
Калужская область | 21 | 16 | 3941 | 180 | 403 | 43 |
Рязанская область | 0 | 35 | 5794 | 251 | 415 | 43 |
Итого | 684 | 455 | 93 438 | 3665 | 4809 | 570 |
Видовой состав, объемы и результаты исследований представлены в табл. 2 и табл. 3.
Таблица 2. Результаты исследований позвоночных на наличие РНК ВЗН в 2024 г.
Вид | Количество исследованных особей | Количество положительных особей |
Птицы | ||
Белый аист — Ciconia ciconia Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Серая куропатка — Perdix perdix Linnaeus, 1758 | 4 | 0 |
Обыкновенный фазан — Phasianus colchicus Linnaeus, 1758 | 5 | 0 |
Тетерев — Lyrurus tetrix Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Сизый голубь — Columba livia Gmelin, 1789 | 84 | 0 |
Вяхирь — Columba palumbus Linnaeus, 1758 | 2 | 0 |
Пестрая утка — Anas fulvigula Ridgway, 1874 | 2 | 0 |
Серая утка — Mareca strepera Linnaeus, 1758 | 4 | 0 |
Хохлатая чернеть — Aythya fuligula Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Белолобый гусь — Anser albifrons Scopoli, 1769 | 12 | 0 |
Серый гусь — Anser anser Linnaeus, 1758 | 6 | 0 |
Чирок-трескунок — Spatula querquedula Linnaeus, 1758 | 7 | 0 |
Чирок-свистунок — Anas crecca Linnaeus, 1758 | 12 | 0 |
Кряква — Anas platyrhynchos Linnaeus, 1758 | 157 | 0 |
Красноголовый нырок — Aythya ferina Linnaeus, 1758 | 3 | 0 |
Широконоска — Spatula clypeata Linnaeus, 1758 | 2 | 0 |
Свиязь — Mareca penelope Linnaeus, 1758 | 2 | 0 |
Большой крохаль — Mergus merganser Linnaeus, 1758 | 2 | 0 |
Огарь — Tadorna ferruginea Pallas, 1764 | 1 | 0 |
Обыкновенный гоголь — Bucephala clangula Linnaeus, 1758 | 3 | 0 |
Вальдшнеп — Scolopax rusticola Linnaeus, 1758 | 54 | 0 |
Бекас — Gallinago gallinago Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Озерная чайка — Chroicocephalus ridibundus Linnaeus, 1766 | 9 | 0 |
Речная крачка — Sterna hirundo Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Малая крачка — Sternula albifrons Pallas, 1764 | 2 | 0 |
Хохотунья — Larus cachinnans Pallas, 1811 | 1 | 0 |
Чибис — Vanellus vanellus Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Хрустан — Eudromias morinellus Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Перевозчик — Actitis hypoleucos Linnaeus, 1758 | 2 | 0 |
Коростель — Crex crex Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Лысуха — Fulica atra Linnaeus, 1758 | 17 | 0 |
Серая цапля — Ardea cinerea Linnaeus, 1758 | 12 | 2 |
Обыкновенная кваква — Nycticorax nycticorax Linnaeus, 1758 | 2 | 0 |
Рыжая цапля — Ardea purpurea Linnaeus, 1766 | 4 | 0 |
Каравайка — Plegadis falcinellus Linnaeus, 1766 | 1 | 0 |
Большой баклан — Phalacrocorax carbo Linnaeus, 1758 | 43 | 2 |
Серая ворона — Corvus cornix Linnaeus, 1758 | 50 | 1 |
Ворон — Corvus corax Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Грач — Corvus frugilegus Linnaeus, 1758 | 79 | 0 |
Обыкновенная сорока — Pica pica Linnaeus, 1758 | 22 | 0 |
Галка — Coloeus monedula Linnaeus, 1758 | 2 | 0 |
Сойка — Garrulus glandarius Linnaeus, 1758 | 6 | 0 |
Полевой воробей — Passer montanus Linnaeus, 1758 | 3 | 0 |
Домовый воробей — Passer domesticus Linnaeus, 1758 | 3 | 0 |
Большая синица — Parus major Linnaeus, 1758 | 7 | 0 |
Сорокопут-жулан — Lanius collurio Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Вид | Количество исследованных особей | Количество положительных особей |
Певчий дрозд — Turdus philomelos Brehm, 1831 | 2 | 0 |
Странствующий дрозд — Turdus migratorius Linnaeus, 1766 | 1 | 0 |
Черный дрозд — Turdus merula Linnaeus, 1758 | 2 | 0 |
Дрозд-рябинник — Turdus pilaris Linnaeus, 1758 | 7 | 0 |
Садовая славка — Sylvia borin Boddaert, 1783 | 1 | 0 |
Обыкновенная горихвостка — Phoenicurus phoenicurus Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Обыкновенная зеленушка — Chloris chloris Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Свиристель — Bombycilla garrulus Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Деревенская ласточка — Hirundo rustica Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Обыкновенная овсянка — Emberiza citrinella Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Зарянка — Erithacus rubecula Linnaeus, 1758 | 5 | 0 |
Зяблик — Fringilla coelebs Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Садовая камышовка — Acrocephalus dumetorum Blyth, 1849 | 2 | 0 |
Пеночка-таловка — Phylloscopus borealis Blasius, 1858 | 2 | 0 |
Крапивник — Troglodytes troglodytes Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Обыкновенный сверчок — Locustella naevia Boddaert, 1783 | 1 | 1 |
Серая мухоловка — Muscicapa striata Pallas, 1764 | 1 | 0 |
Ястребиная славка — Curruca nisoria Bechstein, 1795 | 1 | 0 |
Чёрный стриж — Apus apus Linnaeus, 1758 | 2 | 0 |
Желна — Dryocopus martius Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Большой пёстрый дятел — Dendrocopos major Linnaeus, 1758 | 2 | 0 |
Обыкновенный козодой — Caprimulgus europaeus Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Длиннохвостая неясыть — Strix uralensis Pallas, 1771 | 1 | 0 |
Серая неясыть — Strix aluco Linnaeus, 1758 | 4 | 0 |
Кобчик — Falco vespertinus Linnaeus, 1766 | 1 | 0 |
Болотный лунь — Circus aeruginosus Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Чёрный коршун — Milvus migrans Boddaert, 1783 | 1 | 0 |
Обыкновенный канюк — Buteo buteo Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Итого | 684 | 6 |
Мелкие млекопитающие |
|
|
Рыжая полёвка — Myodes glareolusи Schreber, 1780 | 186 | 0 |
Кустарниковая полёвка — Microtus majori Satunin, 1907 | 1 | 0 |
Обыкновенная полёвка — Microtus arvalis Pallas, 1779 | 40 | 0 |
Серая полёвка Microtus Schrank, 1798, sp. | 7 | 0 |
Водяная полёвка — Arvicola amphibius Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Домовая мышь — Mus musculus Linnaeus, 1758 | 8 | 0 |
Желтогорлая мышь — Apodemus flavicollis Melchior, 1834 | 9 | 0 |
Малая лесная мышь — Sylvaemus uralensis Pallas, 1811 | 134 | 0 |
Полевая мышь — Apodemus agrarius Pallas, 1771 | 35 | 0 |
Пашенная полёвка — Microtus agrestis Linnaeus, 1761 | 1 | 0 |
Серая крыса — Rattus norvegicus Berkenhout, 1769 | 5 | 0 |
Европейский крот — Talpa europaea Linnaeus, 1758 | 1 | 0 |
Обыкновенная бурозубка — Sorex araneus Linnaeus, 1758 | 27 | 0 |
Итого | 455 | 0 |
Земноводные |
|
|
Озёрная лягушка — Pelophylax ridibundus Pallas, 1771 | 45 | 0 |
Таблица 3. Результаты исследований членистоногих на наличие РНК ВЗН в 2024 г.
Вид | Количество экземпляров | Количество исследованных проб | Количество положительных проб |
Кровососущие комары | |||
Anopheles algeriensis Theobald, 1903 | 172 | 7 | 0 |
Anopheles claviger Meigen, 1804 | 695 | 36 | 0 |
Anopheles hyrcanus Pallas, 1771 | 4096 | 146 | 0 |
к. Anopheles maculipennis Meigen, 1818 | 38 292 | 1577 | 2 |
Anopheles plumbeus Stephens, 1828 | 8 | 2 | 0 |
Aedes albopictus Skuse, 1895 | 30 | 1 | 0 |
Aedes annulipes Meigen, 1830 | 111 | 6 | 0 |
Aedes behningi Martini, 1926 | 201 | 11 | 0 |
Aedes cantans Meigen, 1818 | 4687 | 164 | 0 |
Aedes caspius Pallas, 1771 | 2865 | 109 | 0 |
Aedes cataphylla Dyar, 1916 | 204 | 8 | 0 |
Aedes cinereus Meigen, 1818 | 2066 | 80 | 1 |
Aedes communis De Geer, 1776 | 964 | 36 | 0 |
Aedes cyprius Ludlow, 1920 | 5 | 1 | 0 |
Aedes dorsalis Meigen, 1830 | 878 | 34 | 0 |
Aedes excrucians Walker, 1856 | 709 | 25 | 0 |
Aedes flavescens Muller, 1764 | 1014 | 52 | 0 |
Aedes geniculatus Olivier, 1791 | 214 | 11 | 0 |
Aedes intrudens Dyar, 1919 | 380 | 14 | 0 |
Aedes nigrinus Eckstein, 1918 | 15 | 1 | 0 |
Aedes pulcritarsis Rondani, 1872 | 83 | 4 | 0 |
Aedes punctor Kirby, 1837 | 132 | 5 | 0 |
Aedes riparius Dyar et Knab, 1907 | 63 | 3 | 0 |
Aedes sticticus Meigen, 1838 | 3974 | 143 | 0 |
Aedes subdiversus Martini, 1926 | 1 | 1 | 0 |
Aedes vexans Meigen, 1830 | 8344 | 293 | 0 |
Culex modestus Ficalbi, 1890 | 5197 | 188 | 2 |
Culex pipiens Linnaeus, 1758 | 13 428 | 477 | 11 |
Culiseta alaskaensis Ludlow, 1906 | 322 | 24 | 0 |
Culiseta annulata Schrank, 1776 | 480 | 46 | 0 |
Culiseta longiareolata Macquart, 1838 | 59 | 6 | 0 |
Coquillettidia richiardii Ficalbi, 1889 | 3573 | 146 | 2 |
Uranotaenia unguiculata Edwards, 1913 | 176 | 8 | 6 |
Итого | 93 438 | 3665 | 24 |
Иксодовые клещи | |||
Dermacentor marginatus Sulzer, 1776 | 96 | 13 | 0 |
Dermacentor niveus Neumann, 1897 | 33 | 3 | 0 |
Dermacentor reticulatus Fabricius, 1794 | 1688 | 193 | 0 |
Haemaphysalis punctata Canestrini and Fanzago, 1878 | 9 | 1 | 0 |
Hyalomma detritum Schulze, 1919 | 20 | 1 | 0 |
Hyalomma marginatum Koch, 1844 | 197 | 50 | 2 |
Hyalomma scupense Schulze, 1919 | 181 | 39 | 0 |
Ixodes persulcatus Schulze, 1930 | 960 | 86 | 0 |
Вид | Количество экземпляров | Количество исследованных проб | Количество положительных проб |
Ixodes ricinus Linnaeus, 1758 | 895 | 77 | 0 |
Rhipicephalus annulatus Say, 1821 | 342 | 64 | 0 |
Rhipicephalus niveus Yamazaki (1919) | 15 | 2 | 0 |
Rhipicephalus rossicus Yakimov et Kohl-Yakimova, 1911 | 169 | 18 | 1 |
Rhipicephalus sanguineus Latreille, 1806 | 66 | 9 | 0 |
Rhipicephalus turanicus Pomerantsev 1936 | 20 | 2 | 0 |
Rhipicephalus pumilio Schulze, 1935 | 118 | 12 | 0 |
Итого | 4809 | 570 | 3 |
Маркеры возбудителя ЛЗН в полевом материале обнаружены в 7 субъектах из 3 федеральных округов (рисунок), в том числе в 3 субъектах (Кировская, Челябинская области и Республика Мордовия) доказательства течения эпизоотического процесса ЛЗН получены впервые. Из указанных территорий в Челябинской области в 2010 и 2011 гг. были зарегистрированы местные случаи заболевания ЛЗН [14], однако за 2010–2023 гг. маркеры ВЗН в полевом материале не обнаружены.
РНК ВЗН выявлена в 6 (0,5%) из 1184 исследованных проб позвоночных животных и в 27 (0,6%) из 4235 проб членистоногих. В 1 пробе РНК типирована как 1-й генотип (Ростовская область), в 25 пробах — 2-й генотип (Ростовская, Волгоградская, Кировская, Челябинская, Астраханская области, Республика Мордовия, Краснодарский край), в 6 пробах — 4-й генотип (Волгоградская область).
Общий уровень индивидуальной заражённости (заражённость каждой особи) кровососущих комаров составил 0,03%, иксодовых клещей — 0,06%, птиц — 0,9%. При исследовании проб от мелких млекопитающих и лягушек маркеров ВЗН не обнаружено.
Из ЦФО с отрицательным результатом исследовано 228 птиц, 119 мелких млекопитающих, 1027 проб комаров, 147 проб иксодовых клещей.
Наибольшее количество проб от общего числа исследованных пришлось на Южный федеральный округ (ЮФО) и ПФО. Из ЮФО протестировано 340 птиц, 9 мелких млекопитающих, 45 лягушек, 1279 проб комаров, 225 проб иксодовых клещей. РНК ВЗН выявлена в 20 пробах комаров (индивидуальная заражённость составила 0,06%), 3 пробах иксодовых клещей (0,24%) и 6 пробах птиц (1,76%). Позвоночные из ПФО в исследованиях были представлены 116 птицами, 327 мелкими млекопитающими. Положительных находок от позвоночных не выявлено. Из 1262 проб комаров, собранных в этом округе, РНК ВЗН обнаружена в 3 (индивидуальная заражённость — 0,01%). Результаты исследований 198 проб иксодовых клещей — отрицательные.
Из УФО доставлены для исследований 97 проб комаров. РНК-маркеры ВЗН выявлены в 1 пробе. Уровень индивидуальной заражённости комаров составил 0,04%.
Обсуждение
Одним из ведущих факторов, обусловливающим активизацию эпизоотического процесса по ЛЗН, являются высокие показатели температуры воздуха. В 2024 г. на большей части территории России осреднённые аномалии были значительными в апреле, во все летние месяцы и в сентябре, что способствовало увеличению скорости репликации возбудителя, ускоренному прохождению всех стадий развития переносчиков и длительному пребыванию перелётных птиц на гнездовых ареалах.
При исследовании материала от птиц все пробы с положительным результатом выявлены только в Волгоградской области. Среди них есть осёдлые (серая ворона) и перелётные птицы (обыкновенный сверчок, большие бакланы, серые цапли). Павший обыкновенный сверчок обнаружен нами в районе многоэтажной застройки в центре Волгограда в середине августа в период максимальной активности возбудителя и комаров рода Culex. Вместе с тем за многолетний период изучения ЛЗН на юге России официально эпизоотии среди птиц с летальными исходами (Волгоградская и Астраханская области) не регистрировались. Данный факт объяснялся возможной адаптацией популяций местных птиц в результате взаимодействия в течение длительного времени с популяцией возбудителя [15]. Подтверждение этиологической роли возбудителя ЛЗН в возникновении заболевания с летальным исходом у птицы на территории «старого» очага болезни в сезон 2024 г. позволяет предположить, что здесь не осуществляются активный мониторинг за заболеваемостью диких и синантропных птиц, а также прицельное обследование на наличие маркеров ВЗН павших особей в соответствии с нормативным документом2.
Остальные птицы с выявленной РНК ВЗН добыты на рыбоводных прудах и озёрах Волго-Ахтубинской поймы в Волгоградской области с 28 сентября по 3 ноября. Большие бакланы и серые цапли используют данные биотопы в качестве остановок для отдыха и кормёжки в период осенней миграции к местам зимовок, а осёдлые серые вороны тяготеют к этим водоёмам из-за постоянного наличия на их берегах остатков пищи от других птиц.
Маркеры ВЗН на территории России за весь период наблюдений обнаружены в комарах 19 видов [16–18]. По результатам наших исследований, в 2024 г. положительными на наличие РНК ВЗН были комары 6 видов. В структуре положительных находок на долю C. pipiens приходится 45,8%, U. unguiculata — 25,0%, C. richiardii, Cx. modestus и комаров An. maculipennis — по 8,3%, Ae. cinereus — 4,2%.
Уровень индивидуальной инфицированности комаров, питающихся на птицах и млекопитающих, в том числе на людях, составил у C. pipiens — 0,08%, C. richiardii — 0,06%, Cx. modestus и Ae. cinereus — по 0,04%, An. maculipennis — 0,006%. Этот показатель у комаров U. unguiculata, основными прокормителями которых являются лягушки — носители ВЗН 4-го генотипа, достигал 6,3%. Патогенность ВЗН 4-го генотипа для человека на сегодняшний день не доказана.
Все комары C. pipiens, An. maculipennis и C. richiardii, в которых выявлены маркеры ВЗН, собраны в населённых пунктах. Комары Ae. cinereus и Cx. modestus отловлены на берегах водоёмов в местах концентрации водоплавающих птиц. Это свидетельствует о высоком риске заражения населения ВЗН как в урбанизированных, так и в природных биотопах.
Территориально, как и ожидалось, максимальное количество (20) положительных находок от комаров выявлено в ЮФО: 8 — в Астраханской области, 10 — в Волгоградской, по 1 — в Ростовской области и Краснодарском крае. В ПФО в комарах маркеры ВЗН обнаружены: в 2 пробах из Республики Мордовия и 1 — из Кировской области. Из 97 проб, собранных на юге УФО в Челябинской области, возбудитель обнаружен в 1 пробе от теплолюбивых комаров Cx. modestus, которые достигают высокой численности только в ЮФО. В центральной же России они встречаются, как правило, в незначительном количестве и не во всех субъектах. И хотя среднелетние показатели температуры Южного Урала на 2,0–3,5°C ниже, чем в целом по ЦФО, обитание на данной территории одного из основных переносчиков ВЗН в Европе и выявление от него РНК возбудителя указывает на достаточно высокий риск заражения населения в Челябинской области.
В остальных обследованных субъектах заражённые ВЗН переносчики не обнаружены, что не исключает наличие здесь очагов ЛЗН и требует проведения повторных исследований с выбором иных биотопов для сбора полевого материала.
Положительные на наличие РНК ВЗН пробы от иксодовых клещей выявлены только в ЮФО: 2 — от H. marginatum из Волгоградской области и 1 — от Rhipicephalus rossicus из Ростовской области. Их уровень индивидуальной инфицированности составил 1,0 и 1,8% соответственно.
Выявление РНК ВЗН в середине апреля от клещей и в июне от комаров и клещей указывает на раннюю активизацию эпизоотического процесса в 2024 г. Кроме того, апрельские находки также могут свидетельствовать о сохранении ВЗН в клещах в зимний период.
Представляет научный интерес установленная нами сочетанная циркуляция ВЗН 1-го и 2-го генотипов в Ростовской области.
Выводы
На юге России энзоотичная циркуляция ВЗН в 2024 г. подтверждена на территории Волгоградской, Астраханской, Ростовской областей и Краснодарского края. Начало активизации эпизоотического процесса ЛЗН зарегистрировано на данных территориях (за исключением Астраханской области) в весенний–раннелетний период, что являлось предвестником возможного эпидемиологического неблагополучия. Обнаружение положительных находок в Республике Мордовия, Кировской и Челябинской областях подтверждает циркуляцию ВЗН на территориях ПФО и УФО. Информация по области распространения ВЗН в России дополнена данными по 3 новым субъектам, а самой северной точкой выявления РНК возбудителя в полевом материале в нашем исследовании была Кировская область.
1 Информационный бюллетень Федеральной службы по гидрометеорологии и мониторингу окружающей среды: обзор состояния и тенденции изменения климата России 2024 год. (декабрь 2023 — ноябрь 2024). URL: http://downloads.igce.ru/climate_change_2/monitoring-klimata/Russia/2024/2024.pdf
2 Пп. 5.18, 5.5, 8.5.1 Эпидемиологический надзор, лабораторная диагностика и профилактика лихорадки Западного Нила. МУ 3.1/4.2.4063-24. М.; 2024. 46 с.
About the authors
Natalia V. Borodai
Volgograd Plague Control Research Institute
Author for correspondence.
Email: borodai.nat@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-2076-5276
Researcher, Laboratory of epidemiological analysis and epizootological monitoring
Россия, VolgogradAnna V. Nesgovorova
Volgograd Plague Control Research Institute
Email: info@vnipchi.rospotrebnadzor.ru
ORCID iD: 0000-0001-5810-8864
Researcher, Laboratory of epidemiological analysis and epizootological monitoring
Россия, VolgogradAina K. Mendygalieva
Volgograd Plague Control Research Institute
Email: info@vnipchi.rospotrebnadzor.ru
ORCID iD: 0000-0002-3862-9133
Researcher, Laboratory of epidemiological analysis and epizootological monitoring
Россия, VolgogradAnna Yu. Koloskova
Volgograd Plague Control Research Institute
Email: info@vnipchi.rospotrebnadzor.ru
ORCID iD: 0009-0008-4086-0327
Researcher, Laboratory of epidemiological analysis and epizootological monitoring
Россия, VolgogradSvetlana K. Udovichenko
Volgograd Plague Control Research Institute
Email: info@vnipchi.rospotrebnadzor.ru
ORCID iD: 0000-0001-8682-1536
Cand. Sci. (Med.), leading researcher, Laboratory of epidemiological analysis and epizootological monitoring
Россия, VolgogradNikolay A. Zarubin
Volgograd Plague Control Research Institute
Email: info@vnipchi.rospotrebnadzor.ru
ORCID iD: 0000-0001-7689-3421
Junior researcher, Laboratory of epidemiological analysis and epizootological monitoring
Россия, VolgogradStanislav A. Kargashin
Volgograd Plague Control Research Institute
Email: info@vnipchi.rospotrebnadzor.ru
ORCID iD: 0000-0002-2498-9947
Junior researcher, Laboratory of epidemiological analysis and epizootological monitoring
Россия, VolgogradYevgeny A. Gusev
Volgograd Plague Control Research Institute
Email: info@vnipchi.rospotrebnadzor.ru
ORCID iD: 0000-0002-9143-7907
Researcher, Laboratory of arboviral infections
Россия, VolgogradArtem A. Baturin
Volgograd Plague Control Research Institute
Email: info@vnipchi.rospotrebnadzor.ru
ORCID iD: 0000-0001-9510-7246
Cand. Sci. (Biol.), Senior researcher, Laboratory of gene diagnostics of particularly dangerous infections
Россия, VolgogradIrina A. Khabarova
Volgograd Plague Control Research Institute
Email: info@vnipchi.rospotrebnadzor.ru
ORCID iD: 0000-0003-1767-7790
Researcher, Laboratory of experimental biomodels
Россия, VolgogradElena V. Putintseva
Volgograd Plague Control Research Institute
Email: info@vnipchi.rospotrebnadzor.ru
ORCID iD: 0000-0002-9368-6165
Cand. Sci. (Med.), leading researcher, Laboratory of epidemiological analysis and epizootological monitoring
Россия, VolgogradAndrey V. Toporkov
Volgograd Plague Control Research Institute
Email: info@vnipchi.rospotrebnadzor.ru
ORCID iD: 0000-0002-3449-4657
Dr. Sci. (Med.), Associate Professor, Director
Россия, VolgogradReferences
- Топорков А.В., ред. Лихорадка Западного Нила. Волгоград; 2017. Toporkov A.V., ed. West Nile Virus. Volgograd;2017.
- Захаров К.С., Магеррамов Ш.В., Матросов А.Н. Экологические аспекты районирования территории Саратовской области по уровню риска формирования очагов лихорадки Западного Нила. Поволжский экологический журнал. 2021;(1):3–15. Zakharov K.S., Magerramov Sh.V., Matrosov A.N. Ecological aspects of zoning the territory of the Saratov region by the risk level of formation of West Nile fever foci. Povolzhskiy Journal of Ecology. 2021;(1):3–15. DOI: https://doi.org/10.35885/1684-7318-2021-1-3-15 EDN: https://elibrary.ru/pafkqi
- Frasca F., Sorrentino L., Fracella M., et al. An update on the entomology, virology, pathogenesis, and epidemiology status of West Nile and Dengue viruses in Europe (2018–2023). Trop. Med. Infect. Dis. 2024;9(7):166. DOI: https://doi.org/10.3390/tropicalmed9070166
- Львов Д.К., ред. Вирусы и вирусные инфекции человека и животных. М.;2013. L'vov D.K., ed. Viruses and Viral Infections of Humans and Animals. Moscow;2013.
- Якименко В.В., Малькова М.Г., Тюлько Ж.С. и др. Трансмиссивные вирусные инфекции Западной Сибири (региональные аспекты эпидемиологии, экологии возбудителей и вопросы микроэволюции). Омск;2019. Yakimenko V.V., Malkova M.G., Tyulko J.S., et al. Transmissible Viral Infections of Western Siberia (Regional Aspects of Epidemiology, Ecology of Pathogens and Issues of Microevolution). Omsk;2019.
- Трифонов В.А., Бойко В.А., Потапов B.C. и др. Основные эпидемиологические закономерности заболеваемости некоторыми природно-очаговыми инфекциями в Республике Татарстан. Дезинфекционное дело. 2009;(3):39–42. Trifonov V.A., Boyko V.A., Potapov V.S., et al. Basic epidemiological patterns of incidence of some natural focal infections in the Republic of Tatarstan. Disinfection Affairs. 2009;(3):39–42. EDN: https://elibrary.ru/kwhowj
- Сычева К.А., Федорова М.В., Макенов М.Т. и др. Переносчики и резервуарные хозяева возбудителя лихорадки Западного Нила во время вспышки заболевания в Москве. В кн.: Материалы ХIV Ежегодного Всероссийского Конгресса по инфекционным болезням имени академика В.И. Покровского. Инфекционные болезни в современном мире: эволюция, текущие и будущие угрозы. М.;2022. Sycheva K.A., Fedorova M.V., Makenov M.T., et al. Vectors and reservoir hosts of the West Nile fever pathogen during the disease outbreak in Moscow. In: Proceedings of the XIV Annual All-Russian Congress on Infectious Diseases named after Academician V.I. Pokrovsky. Infectious Diseases in the Modern World: Evolution, Current and Future Threats. Moscow;2022. EDN: https://elibrary.ru/lguirc
- Львов Д.К., Альховский С.В., Жирнов О.П. 130 лет вирусологии. Вопросы вирусологии. 2022;67(5):357–84. L'vov D.K., Alkhovsky S.V., Zhirnov O.P. 130th anniversary of virology. Problems of Virology. 2022;67(5):357–84. DOI: https://doi.org/10.36233/0507-4088-140 EDN: https://elibrary.ru/qhembl
- Горностаева Р.М. Комары Москвы и Московской области. М.;1999. Gornostaeva R.M. Mosquitoes of Moscow and the Moscow Region. Moscow;1999.
- Гуцевич А.В., Мончадский А.С., Штакельберг А.А. Фауна СССР. Насекомые двукрылые. Комары. Семейство Culicidae. Том 3. Ленинград;1970. Gutsevich A.V., Monchadsky A.S., Shtakelberg A.A. Fauna of the USSR. Diptera Insects. Mosquitoes. The Family Culicidae. Volume 3. Leningrad;1970.
- Филиппова Н.А. Иксодовые клещи подсем. Ixodinae. Фауна СССР. Паукообразные. Том 4. М.;1977. Filippova N.A. Ixodic Ticks of the Subfamily. Ixodinae. Fauna of the USSR. Arachnids. Volume 4. Moscow;1977.
- Федорова М.В., Сычева К.А. Кровососущие комары (Diptera:Culicidae) Краснодарского края и полуострова Крым: определитель. М.;2024. Fedorova M.V., Sycheva K.A. Bloodsucking Mosquitoes (Diptera:Culicidae) of the Krasnodar Territory and the Crimean Peninsula: Identification Guide. Moscow;2024.
- Беклемишев В.Н. К изучению зараженности клещей – переносчиков энцефалита методом биопробы. Вопросы вирусологии. 1963;8(2):240–2. Beklemishev V.N. On the study of infection of ticks – carriers of encephalitis by the bioprobe method. Problems of Virology. 1963;8(2):240–2.
- Антонов В.А., Смоленский В.Ю., Путинцева Е.В. и др. Эпидемиологическая ситуация по лихорадке Западного Нила в 2011 году на территории Российской Федерации и прогноз ее развития. Проблемы особо опасных инфекций. 2012;(1):17–21. Antonov V.A., Smolensky V.Yu., Putintseva E.V., et al. West Nile fever epidemic situation in the Russian Federation territory in 2011 and prognosis of its development. Problems of Particularly Dangerous Infections. 2012;(1):17–21. DOI: https://doi.org/10.21055/0370-1069-2012-1(111)-17-21 EDN: https://elibrary.ru/origtz
- Львов Д.К., Савченко С.Т., Алексеев В.В. и др. Эпидемиологическая ситуация и прогноз заболеваемости лихорадкой Западного Нила на территории Российской Федерации. Проблемы особо опасных инфекций. 2008;(1):10–2. L'vov D.K., Savchenko S.T., Alekseev V.V. et al. Epidemiological situation and prognostication of the West Nile fever morbidity in the territory of the Russian Federation. Problems of Particularly Dangerous Infections. 2008;(1):10–2. DOI: https://doi.org/10.21055/0370-1069-2008-1(95)-10-12 EDN: https://elibrary.ru/iqfwsf
- Федорова М.В., Бородай Н.В. О необходимости и путях совершенствования энтомологического мониторинга при эпидемиологическом надзоре за лихорадкой Западного Нила. Медицинская паразитология и паразитарные болезни. 2017;(2):37–42. Fedorova M.V., Borodai N.V. On the necessity and ways to improve entomological monitoring in the epidemiological surveillance of West Nile fever. Medical parasitology and parasitic diseases. 2017;(2):37–42. EDN: https://elibrary.ru/ysticd
- Квасов Д.А., Бородай Н.В., Гайдукова Е.П. и др. Результаты мониторинга за Лихорадкой Западного Нила в Воронежской области. В сб.: Состояние и проблемы экосистем Среднерусской лесостепи. Труды биологического центра ВГУ «Веневитиново», Том 34. Воронеж;2022:37–44. Kvasov D.A., Borodai N.V., Gaidukova E.P., et al. Monitoring results for West Nile fever in the Voronezh region. In: The State and Problems of Ecosystems of the Central Russian Forest Steppe. Proceedings of the Biological Center of VSU «Venevitinovo», Volume 34. Voronezh;2022:37–44. EDN: https://elibrary.ru/ocvpck
- Алексейчик И.О., Путинцева Е.В., Смелянский В.П. и др. Особенности эпидемической ситуации по лихорадке Западного Нила на территории Российской Федерации в 2018 г. и прогноз ее развития на 2019 г. Проблемы особо опасных инфекций. 2019;(1):17–25. Alekseichik I.O., Putintseva E.V., Smelyansky V.P., et al. Peculiarities of the epidemic situation on West Nile fever in the territory of the Russian Federation in 2018 and forecast of its development in 2019. Problems of Particularly Dangerous Infections. 2019;(1):17–25. DOI: https://doi.org/10.21055/0370-1069-2019-1-17-25 EDN: https://elibrary.ru/cgbjja
Supplementary files
