CONTROL OF POLIOMYELITIS AND ENTEROVIRUS INFECTION IN SEVERAL AREAS OF RUSSIAN FEDERATION
- Authors: Romanenkova N.I1, Bichurina M.A1, Rozaeva N.R1
-
Affiliations:
- Pasteur Research Institute of Epidemiology and Microbiology
- Issue: Vol 88, No 6 (2011)
- Pages: 32-36
- Section: Articles
- Submitted: 09.06.2023
- Published: 15.12.2011
- URL: https://microbiol.crie.ru/jour/article/view/13595
- ID: 13595
Cite item
Full Text
Abstract
Aim. Control of poliovirus circulation by study of material from patients with acute flaccid paralysis and contact individuals, from children of risk groups; molecular characteristics ofisolated polioviruses; monitoring of circulation of polioviruses and nonpoliomyelitis enteroviruses in population and the environment. Materials and methods. Isolation and study of polioviruses and nonpoliomyelitis enteroviruses from various sources was performed in accordance with WHO recommendations. Results. Prolonged persistence and circulation of vaccine related strains of polioviruses in children is demonstrated. Enterovirus serotypes that circulate in the population and the environment more frequently are determined. Conclusion. Long term control of poliomyelitis and acute flaccid paralysis in combination with additional control variants in children from risk groups and objects of the environment allowed to obtain valuable data on poliovirus and nonpoliomyelitis enteroviruses circulation for the Program of eradication of poliomyelitis
Full Text
ВВЕДЕНИЕ В Копенгагене 21 июня 2002 г. Европейская комиссия по сертификации объявила Европейский регион свободным от полиомиелита. Европейский ре- гион стал третьим свободным от полиомиелита после Американского и Западно-Тихоокеанского. В 2010 г. произошло импортирование дикого полиовируса в Европейский регион ВОЗ. Дикий полиовирус типа 1 индийского происхождения был импортирован в Таджикистан, где возникла крупная вспышка полиомиелита (458 лабораторно подтвержденных случаев). Распространение инфекции стало возможно в связи с низким уровнем коллективного иммунитета, к чему привели нарушения в проведении вакцинации в течение ряда лет и низкое качество надзора за полиомиелитом и острыми вялыми параличами (ОВП). В Туркмении было зарегистрировано 3 случая полиомиелита, вызванные диким полиовирусом типа 1, в Казахстане - 1 такой случай. В Российской Федерации было лабораторно подтверждено 14 случаев полиомиелита с выделением дикого полиовируса типа 1 [10]. Эти события еще раз доказывают, что пока существует циркуляция дикого полиовируса в мире, нельзя исключить возможность его завоза на территории, свободные от полиомиелита. Во избежание распространения инфекции необходимо поддержание высокого уровня охвата вакцинацией против полиомиелита и обеспечение высокого качества эпидемиологического и вирусологического надзора за полиомиелитом и ОВП. Целью работы стал надзор за циркуляцией полиовирусов среди населения путем исследования материала от больных острыми вялыми параличами и контактных лиц, от детей из групп риска (дети из домов ребенка); молекулярногенетическая характеристика выделенных полиовирусов; слежение за циркуляцией полиовирусов и неполиомиелитных энтеровирусов среди населения и в окружающей среде. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ Исследовано более 2000 проб фекалий от больных ОВП и контактных лиц, пробы фекалий от 198 здоровых детей из группы риска (воспитанников домов ребенка), 6088 проб сточной воды и 6054 проб фекалий от больных энтеровирусной инфекцией. Выделение и идентификацию полиовирусов проводили с помощью стандартных процедур, рекомендованных ВОЗ [14], с использованием культур клеток RD, L20B, Hep-2. Идентификацию выделенных вирусов осуществляли с помощью теста микронейтрализации с кроличьими антисыворотками к вирусам полиомиелита, RIVM (Bilthoven, Netherlands). Внутритиповую дифференциацию проводили в Региональной референс лаборатории по диагностике полиомиелита (Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов им. М.П. Чумакова, Москва) с использованием ИФА с перекрестно-адсорбированными поликлональными кроличьими антисыворотками [13] и полимеразной цепной реакции (ПЦР) с парами праймеров, специфичных к вакцинным штаммам Сэбина трех серотипов - S1 S2 и S3 [15]. Множественный RFLP анализ проводили для трех участков генома полиовируса VP3-VP1, VP1-2A и 3D-3’UTR [3]. При проведении обратной транскрипции (ОТ) и ПЦР использовали три пары олигонуклеотидных праймеров UG24 и UC1, UG19 и UC13, UG17 и UC10 [6, 8] соответственно для трех участков генома. Продукты ПЦР обрабатывали четырьмя рестриктазами - DdeI, DpnII, RsaI и HinfI. После проведения электрофореза профили рестрикции изученных штаммов сравнивали с профилями эталонных вакцинных полиовирусов. Секвени-рование продуктов ПЦР осуществляли с теми же праймерами, которые использовали для ОТ-ПЦР, и внутренними праймерами UG1 и UC11 [8]. Статистическую обработку проводили с использованием t-критерия Стьюдента. РЕЗУЛЬТАТЫ При исследовании проб от больных ОВП и контактных лиц процент выделения полиовирусов колебался от 15,9% в 1998 - 1999 гг., когда проводились национальные дни иммунизации, до 2,9% в 2007 - 2008 гг., в 2009 г. полиовирусы не выявлены. В 2010 г. исследована 131 проба от больных ОВП и контактных, от 4 больных были выделены вакцинные полиовирусы трех серотипов. Всего было выделено и изучено 152 полиовируса серотипов 1, 2 и 3, которые по результатам внутритиповой дифференциации были вакцинными. Проведен молекулярный анализ штаммов полиовирусов, выделенных от больных ОВП и контактных. Для исследования было отобрано 39 штаммов. Из них 10 были выделены от больных вакциноассоциированным паралитическим полиомиелитом (ВАПП), 25 - от больных ОВП и 4 - от здоровых детей, контактировавших с больными. Штаммы были выделены от детей, получивших ОПВ, на отдаленных сроках после вакцинации, причем у 6 детей интервал между вакцинацией и забором проб составил от 3 мес до 2 лет. Установлено, что 15 (38,5%) изученных штаммов имели модифицированные профили RFLP по сравнению с профилями эталонных вакцинных штаммов на одном или двух участках VP3-VP1 и VP1-2A. Анализ профилей RFLP на третьем участке генома 3D-3’UTR выявил модифицированные профили у 10 (25,6%) изученных штаммов, что свидетельствует о генетической рекомбинации этих штаммов с вакцинными штаммами других серотипов [11]. Были секвенированы изученные в RFLP фрагменты генома VP3-VP1 и VPI-2A. Оказалось, что 61,5% штаммов имели нуклеотидные замены. Наибольший интерес представляли пять штаммов, процент нуклеотидной дивергенции с вакцинными штаммами у которых колебался от 0,5 до 1,4% на участке VP3-2A (табл.). Полное секвенирование участка генома VP1 показало, что процент нуклеотидных замен на этом участке генома у одного штамма составил 1,1%, у четырех штаммов выявлено 0,6 - 0,9% нуклеотидных замен [3]. Важно отметить, что нуклеотидные замены зафиксированы у всех изученных штаммов от больных ВАПП и менее чем у половины штаммов от больных ОВП. Процент рекомбинантов среди штаммов от больных ВАПП был выше, Процент нуклеотидных замен на разных участках генома у пяти штаммов полиовирусов Штамм Случай Процент нуклеотидных замен на участке VP3-2A Процент нуклеотидных замен на участке VP1 D1-AR260 ВАПП 0,7 0,9 J2-SP474 ОВП 0,8 0,9 R3-PS607 ВАПП 1,4 1,1 V2-MU906 Контакт с ВАПП 0,5 0,6 W3-MU912 Контакт с ВАПП 0,6 0,7 чем среди штаммов от больных ОВП [11]. При проведении дополнительного надзора от детей из групп риска было выделено 37 вакцинных полиовирусов. Частота выделения полиовирусов в домах ребенка, где в числе прочих находились дети, рожденные от ВИЧ-инфицированных матерей, была достоверно выше (р>0,01), чем в других домах ребенка (26,3+4,0% против 7,5+2,95%). Только в этих домах ребенка полиовирусы были выделены от детей на сроках, превышающих 5 месяцев после получения ОПВ. Это говорит о том, что в домах ребенка существует риск возникновения случаев ОВП и ВАПП [1, 4, 5]. На этапе ликвидации полиомиелита важным элементом надзора за циркуляцией полиовирусов является исследование проб из окружающей среды, а именно, проб сточной воды. Было проведено специальное исследование по сравнению двух методов сбора и концентрирования проб сточной воды: двухфазного метода с использованием декстрана и полиэтиленгликоля и метода с использованием сорбционных пакетов. При исследовании проб сточной воды, отобранных на 3 очистных сооружениях Санкт-Петербурга и Ленинградской области, выявлен высокий процент полиовирусов и неполиомиелитных энтеровирусов. На всех точках забора констатировано значительное преимущество метода двухфазного концентрирования. В Санкт-Петербурге с помощью этого метода полиовирусы и неполиомиелитные энтеровирусы обнаружены в 32,6+6,9% случаев, с помощью сорбционных пакетов - в 6,5+3,7% случаев (p<0,001). В Ленинградской области разница между двумя методами также была достоверной - 54,5+7,6% и 15,9+5,6% (p<0,001), соответственно [3]. При проведении надзора за окружающей средой на 12 территориях России в 2003 - 2009 гг. частота выявления полиовирусов колебалась от 2,0 до 5,6%, средняя частота их выделения составила 4,2%. Все 257 выделенных штаммов полиовирусов по результатам внутритиповой дифференциации были вакцинными. Частота выделения неполиомиелитных энтеровирусов (НПЭВ) в разные годы колебалась от 5,0 до 7,2%, всего было выделено 374 штамма. Среди НПЭВ преобладали энтеровирусы Коксаки В1-6, которые выделяли примерно с равной частотой (от 36,6 до 45,5%) на протяжении всего периода наблюдения. Довольно часто обнаруживали вирусы серотипа ЭКХО 30 (от 12,5 до 19,4%). Максимум выделения энтеровирусов ЭКХО 6 (14,1%) и ЭКХО 7 (16,4%) пришелся на 2006 - 2007 гг., в предыдущие три и в последующие два года частота их выделения была достоверно ниже (p<0,001). Частота выделения вируса ЭКХО 13 уменьшилась с 15,6% в 2003-2005 гг. до 5,4% в 2008 -2009 гг. (p<0,001), а частота выделения энтеровируса ЭКХО 25 сократилась с 8,4% в 2003 - 2005 гг. до 0,8 - 0,9% в 2006 - 2009 гг. (p<0,001). Значительно реже выделяли энтеровирусы других серотипов. В 2008 - 2009 гг. были выделены ранее не выявлявшиеся на этих территориях вирусы ЭКХО 9, ЭКХО 19 и энтеровирус 71. В 2006 - 2009 гг. были проведены исследования материала от больных энтеровирусной инфекцией, в том числе серозным менингитом. Было изолировано 965 НПЭВ и 15 вакцинных полиовирусов. Ежегодно с высокой частотой от больных выделяли энтеровирусы Коксаки В1-6. Энтеровирусы ЭКХО 30 в 2006 г. занимали второе место в структуре выделенных вирусов, а в 2007 - 2009 гг., когда были зафиксированы вспышки серозного менингита на ряде территорий, они составили от трети до половины всех изолированных вирусов. Штаммы серотипов ЭКХО 6 и ЭКХО 7 были обнаружены с наибольшей частотой во время сезонных подъемов энтеровирусной инфекции на некоторых территориях. Энтеровирусы других серотипов выделяли значительно реже. Проведенное нами частичное секве-нирование генома 24 штаммов энтеровирусов, которые не типировались с помощью диагностических сывороток, дало возможность идентифицировать в 2008 г. ранее не выявляемые на территориях Северо-Западного ФО (СЗФО) штаммы энтеровирусов 71 и 77. Идентификация энтеровируса 71 у ребенка, заболевшего во время пребывания в Турции, позволила констатировать случай импортирования энтеровируса 71 на территорию СЗФО. В 2009 г. в 14% случаев из проб были изолированы ранее не выявляемые энтеровирусы серотипа ЭКХО 9. ОБСУЖДЕНИЕ Результаты проведенных исследований позволили сделать вывод о возможности длительной персистенции и циркуляции вакцинных и вакцинно-родственных штаммов полиовирусов среди детского населения с высоким уровнем охвата вакцинацией ОПВ, что согласуется с данными литературы [7, 11]. Поскольку число детей, получающих ОПВ в соответствии с календарем прививок, велико, каждый невакцинированный ребенок имеет высокую вероятность оказаться в контакте с одним или несколькими недавно вакцинированными детьми. Особенно опасны такие контакты в стационарах и домах ребенка [1, 2, 5]. В литературе описан случай распространения в стационаре штамма полиовируса с несколькими нуклеотидными заменами от больного ВАПП к нескольким контактным, которые были не привиты или не полностью привиты [7]. Это указывает на способность вакцинных полиовирусов быстро приобретать трансмиссивность. Введение с 2008 г. в календарь прививок ИПВ для всех детей до 1 года позволило снизить риск развития паралитических форм заболевания. Но и после введения в календарь прививок комбинированной схемы вакцинации с помощью двух вакцин ИПВ и ОПВ дома ребенка остаются учреждениями группы риска в связи с возможностью возникновения случаев ОВП и ВАПП. По данным ВОЗ исследование сточной воды является эффективным инструментом контроля за циркуляцией полиовирусов и неполиомиелитных энтеровирусов в окружающей среде [9, 12]. Учитывая значительную частоту выделения полиовирусов из сточной воды в ходе многолетнего дополнительного надзора за окружающей средой, можно сделать заключение, что надзор за объектами окружающей среды позволяет обнаружить не только вакцинные, но и дикие полиовирусы в случае их импортирования на свободные от полиомиелита территории. Выявление НПЭВ в сточной воде позволило определить их серотипы, преобладающие в циркуляции на разных территориях. Результаты проведенных исследований доказывают, что систематический вирусологический надзор за больными ОВП и дополнительные виды надзора за детьми из групп риска, за больными энтеровирусными инфекциями и за объектами окружающей среды обеспечивает получение важных для Программы ликвидации полиомиелита данных о циркуляции полиовирусов и неполиомиелитных энтеровирусов среди населения и в окружающей среде. Полученные данные свидетельствуют о том, что только сочетание активного эпидемиологического и высоко качественного вирусологического надзора гарантирует поддержание статуса территории, свободной от полиомиелита.×
About the authors
N. I Romanenkova
Pasteur Research Institute of Epidemiology and MicrobiologySt. Petersburg, Russia
M. A Bichurina
Pasteur Research Institute of Epidemiology and MicrobiologySt. Petersburg, Russia
N. R Rozaeva
Pasteur Research Institute of Epidemiology and MicrobiologySt. Petersburg, Russia
References
- Бичурина М.А., Романенкова Н.И., Розаева Н.Р. Экскреция вакцинных полиовирусов у детей - воспитанников учреждений закрытого типа. Журн. инфектол. 2010, 1: 28-33.
- Иванова О.Е., Романенкова Н.И., Еремеева Т.П. и др. Риск развития случаев острого вялого паралича и вакциноассоциированного полиомиелита в закрытых детских коллективах - домах ребенка и детских лечебных стационарах. Эпидемиол. вакцинопроф. 2005, 1: 14-18.
- Онищенко Г.Г., Дроздов С.Г., Лялина Л.В., Бичурина М.А. и др. Проблемы ликвидации полиомиелита. СПб, 2008.
- Романенкова Н.И., Розаева Н.Р., Бичурина М.А, Коваль И.Л. Изучение штаммов полиовирусов, выделенных у детей, рожденных ВИЧ-инфицированными матерями. Здоровье населения и среда обитания.2004, 10: 10-14.
- Романенкова Н.И., Бичурина М.А., Роза ева Н.Р. Характеристика вакцинных полиовирусов, выделенных в закрытых детских коллективах (домах ребенка). Вопр. вирусол. 2010, 2: 42-45.
- Balanant J., Guillot S., Candrea A. et al. The natural genomic variability of poliovirus analyzed by a restriction fragment length polymorphism assay. Virology.1991, 184: 645-654.
- Cherkasova E.A., Yakovenko M.L., Rezapkin G.V et al. Spread of vaccine-derived poliovirus from a paralytic case in an immunodeficient child: an insight into the natural evolution of oral polio vaccine. J. Virol. 2005, 79: 1062-1070.
- Guillot S., Caro V, Cuervo N. et al. Natural genetic exchanges between vaccine and wild poliovirus strains in humans. J. Virol. 2000, 74: 8434-8443.
- Hovi T, Stenvik M., Partanen H., Kangas A. Poliovirus surveillance by examining sewage specimens. Quantitative recovery of virus after introduction into sewage at remote upstream location. J. Epidemiol. Infect. 2001, 127: 101-106.
- Polio weekly global update (WHO). 19 January 2011.
- Romanenkova N.I., Guillot S., Rozaeva N.R. et al. Use of a multiple restriction fragment length polymorphism method for detecting vaccine-derived polioviruses in clinical samples. J. Clin. Microbiol. 2006, 44, 11: 4077-4084.
- Shulman L.M., Manor Y., Handsher R. et al. Molecular and antigenic characterization of a highly evolved derivative of the type 2 oral poliovaccine strain isolated from sewage in Israel. J. Clin. Microbiol. 2000, 38: 3729-3734.
- Van der Avoort H.G., Hull B.P., Hovi T. et al. Comparative study of five methods for intratypic differentiation of polioviruses. J. Clin. Microbiol. 1995, 33: 25622566.
- World Health Organization. 2004. Polio laboratory manual. WHO/IVB/04.10. World Health Organization, Geneva, Switzerland.
- Yang C.F., De L., Holloway B.P. et al. Detection and identification of vaccine-related polioviruses by the polymerase chain reaction. Virus Res. 1991, 20: 159179.