ПАТОГЕНЕЗ ДИСБАКТЕРИОЗА КИШЕЧНИКА


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Цель. На экспериментальной модели мышей изучить механизм развития дисбиоза кишечника с позиции усиления транслокации условно патогенных грамотрицательных энтеробактерий (УПЭБ) из просвета кишечника в системный кровоток и возможность его коррекции препаратами лактоглобулина. Материалы и методы. Экспериментальный лекарственный дисбактериоз кишечника воспроизводили у мышей под действием гентамицина. Исследовано изменение иммунологических показателей у животных при транслокации грамотрицательных энтеробактерий и их ЛПС из просвета кишечника в системный кровоток. Результаты. Показано, что при дисбиозах кишечника развивается выраженная воспалительная реакция на местном уровне с увеличением количества провоспалительных цитокинов с последовательностью ИЛ-1ƒИНФƒ  ИЛ-6 и усилением образования антиэндотоксиновых антител. Изменения показателей аллергизации макроорганизма под влиянием ЛПС происходили синхронно увеличению количества УПЭБ включая эшерихии с измененной лактазной активностью на фоне их транслокации в несвойственные им биотопы. При декомпенсированном варианте дисбиоза отмечена выраженная активация иммунореактивных клеток селезенки. Иммунобиологические препараты (лактоглобулин и низкомолекулярные пептиды иммунного молозива), вводимые животным параллельно с антибиотиком, оказывали дезинтоксикационный и десенсибилизирующий эффект и снижали побочный эффект его действия. Заключение. Предложена схема развития дисбиотических нарушений в кишечнике с позиции усиления транслокации УПЭБ из просвета кишечника в системный кровоток и объяснены механизмы позитивного действия препаратов лактоглобулина и низкомолекулярных пептидов иммунного молозива, перспективных для коррекции этого состояния.

Об авторах

А В Алешукина

Ростовский НИИ микробиологии и паразитологии, Ростов-на-Дону

Ростовский НИИ микробиологии и паразитологии, Ростов-на-Дону

Список литературы

  1. Бондаренко В.М. Молекулярно-генетические и молекулярно-биологические исследования представителей родов Lactobacillus и Bifidobacterium. Вестн. РАМН. 2006, 1: 18-23.
  2. Byun R., Nadkarni M.A., Chhour K.L. et al. Quantitative analysis of diverse lactobacillus species present in advanced dental caries. J. Clin. Microbiol. 2004, 42 (7): 3128-3136.
  3. Callanan M., Kaleta P., O'Callaghan J. et al. Genome sequence of Lactobacillus helveticus, an organism distinguished by selective gene loss and insertion sequence element expansion. J. Bacteriol. 2008, 190 (2): 727-735.
  4. Diancourp L., Paset V., Chervaux Ch. et al. Multilocus sequence typing of Lactobacillus casei (L. paracasei) reveals a clonal population structure with low levels of homologous recombination. Appl. Environ. Microbiol. 2007, 73 (20): 6601-6611.
  5. Endo A., Okada S. Lactobacillus farraginis sp. nov. and Lactobacillus parafarraginis sp. nov., heterofermentative lactobacilli isolated from a compost of distilled shochu residue. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2007, 57: 708-712.
  6. Fellis G.E., Dellaglio F. Taxonomy of lactobacilli and bifidobacteria. Curr. Issues Intest. Microbiol. 2007, 8 (2): 44-61.
  7. Guan L.L., Hagen K.E., Tannock G.W. et al. Detection and identification of Lactobacillus species in crops of broilers of different ages by using PCR-denaturing gradient gel electrophoresis and amplified ribosomal DNA restriction analysis. Appl. Environ. Microbiol. 2003, 69: 6750-6757.
  8. Leeber S., Vanderleyden J., De Keersmaecher S.J. Genes and molecules of Lactobacilli supporting probiotic action. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2008, 72 (4): 728-764.
  9. Leichmann G. Über die im Brennereiprozess bei der Kunsthefe auftretende spontane Milchsäuregarung. Zentalbl. Bacteriol. Parasitenk. 1896, 2: 281-285.
  10. Naser S.M, Hagen K.E., Vancanneyt M. et al. Lactobacillus suntoryeus Cachat and Priest 2005 is a later synonym of Lactobacillus helveticus (Orla-Jensen1919) Bergey et al. 1925 (Approved Lists 1980). Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2006, 56: 355-360.
  11. Naser S.M., Dawyndt P., Hoste B. et al. Identification of lactobacilli by phe S and rpo A gene sequence analyses. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2007, 57: 2777-2789.
  12. Naser S.M., Thompson F.L., Hoste B. et al. Application of multilocus sequence analysis (MLSA) for rapid identification of Enterococcus species based on rpoA and pheS genes. Microbiology. 2005, 151: 2141-2150.
  13. Reuter G. The Lactobacillus and Bifidobacterium microflora of the human intestine: composition and succession. Curr. Issues Intest. Microbiol. 2001, 2 (2): 43-53.
  14. Stackebrandt E., Ebers J. Taxonomic parameters revisited: tarnished gold standards. Microbiol. Today. 2006, 33: 152-155.
  15. Tannock G.W. A fresh look at the intestinal microflora. In: Probiotics - A critical review. Wymondham, Horizon Scientific Press, 1999.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Алешукина А.В., 2012

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС77-75442 от 01.04.2019 г.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах