EXCRETION OF EXTRACELLULAR MEMBRANE NANOVESICLES BY AEROMONAS


Cite item

Full Text

Abstract

Aim. Study of extracellular membrane nanovesicles production by Aeromonas hydrophila and Aeromonas salmonicida bacteria on a subcellular level. Materials and methods. 4 strains ofA.hydrophila: 342-1, Е 8-8, Н 336 and Н 1-6-05 and 1 strain of A.salmonicida А-450 as well as intact Wistar line rats were used. Methods of transmission electron microscopy: ultrathin sectioning and negative contrasting were used. Results. A.hydrophila and A.salmonicida bacteria produced in pure cultures excrete into the environment extracellular membrane nanovesicles. The size of these vesicles varies from 20 to 200 nm in diameter. The process of gemmation from bacterial cell and possibility ofobtaining isolated membrane nanovesicles preparations is shown. These vesicles are detected in ultrathin sections of apical surface of intact rat intestine among accumulations ofparietal microorganisms that colonize mucous membrane. Extracellular membrane nanovesicles excreted by aeromonas are analogous by size and ultrastructure to vesicles of other species of gram-negative bacteria described in the literature. Conclusion. During production of A.hydrophila and A.salmonicida bacteria in vitro nanovesicles are formed from the outer membranes of the cells and excreted into the environment, the nanovesicles are similar to those detected in ultrathin sections of the surface of intestine of rats among accumulations of parietal microorganisms and in glycocalix between epitheliocyte microvilli.

Full Text

Грамотрицательные бактерии Aero-monas hydrophila и Aeromonas salmoni-cida широко распространены в окружающей среде и способны вызывать инфекционный процесс у рыб, амфибий, моллюсков и человека. Инфицирование человека бактериями рода Aeromonas приводит к развитию таких воспалительных заболеваний, как менингит, пневмония, перитонит, ко-ньюнктивит, остеомиелит, гнойный артрит, миозит, холецистит, эндокардит, инфекции уха, горла и носа и др. [2]. Патогенность этих бактерий определяется продукцией большого количества факторов патогенности включая липазу, хитиназу, желатиназу, гемолизины, цитолитический энтеротоксин, аэролизин, термостабильный и термолабильный энтеротоксины [1, 9]. Процессы развития инфекционного процесса при заболеваниях, вызванных аэромонадами, недостаточно изучены, а механизмы выделения токсинов и их взаимодействия с клетками организма-хозяина неизвестны. В работах последнего десятилетия показано, что ряд грамотрицательных бактерий выделяют со своей внешней поверхности в окружающую среду внеклеточные мембранные нановезикулы (ВМН), содержащие компоненты периплазмы. Установлено, что ВМН ряда бактерий могут содержать факторы вирулентности. Так, например, ВМН Escherichia coli содержат токсин ClyA [8], Helicobacter pylori - VacA [5], Pseudomonas aeruginosa - Cif и PQS [6], Shigella dysenteriae - шига-подобный токсин [4]. Полагают, что ВМН патогенных бактерий являются средствами доставки факторов патогенности в ткани эукариот [3, 8]. За последние два года в ряде работ был проведен протеомный анализ ВМН с использованием методов двумерного электрофореза и масс-спектрометрии. Установлено, что изолированные везикулы содержат более ста различных белков и среди них такие белки внешней мембраны бактерий и периплазмы, как липопротеин AcfD, белок рецептора TolC, антиген внешней мембраны, фосфолипаза A1, каналообразующий белок tsx, предшественник порина LC, цитолетальные разрыхляющие токсины, протеаза, глу-тамин-связывающий белок, b-глюко-зидаза, белок-переносчик липопротеина, цитотоксичная металлопротеаза и др. [7]. Целью работы является исследование продукции внеклеточных мембранных нановезикул. В работе использовали бактерии 4 штаммов A.hydrophila: 342-1 (апатоген-ный штамм) и три патогенных: Е 8-8, Н 336 и Н 1-6-05 из коллекции НИИ ПЗК РАСХН (Москва) и эталонный штамм A.salmonicida A-450 из коллекции Университета Гвелфа (Канада). Бактерии A. hydrophila выращивали на агаризованной среде LB в течение 20 часов при 37°С, а бактерии A. salmonicida A-450 - на трип-тозном соевом агаре при 22°С. Применяли методы электронной микроскопии: ультратонкие срезы и негативное контрастирование. Для морфологической характеристики мелкие колонии всех штаммов размером 0,5 мм заливали расплавленным агаром, вырезали скальпелем и фиксировали в растворе 0,5% глутаральдеги-да и 2,5% формальдегида и затем в 1 % р-ре OsO4. После обезвоживания заливали в смолу LR White (Fluka) и проводили полимеризацию при УФ-облучении. Ультратонкие срезы контрастировали с помощью уранилацетата и цитрата свинца по Рейнольдсу. Негативное контрастирование проводили с помощью 2% ура-нилацетата или молибдата аммония. Материал просматривали с помощью трансмиссионного электронного микроскопа Zeiss Libra 200. С целью получения изолированных ВМН культуру A. salmonicida A-450 выращивали в триптозном соевом бульоне при температуре 22°С до ранней стационарной фазы роста. Клетки осаждали центрифугированием и супернатант фильтровали через целлюлозоацетатные фильтры с порами 0,45 и 0,22 мкм. После ультрацентрифугирования при 150 000 ( g осадок ВМН ресуспендировали в 50 мМ буфере HEPES (pH 6.8) и хранили при -20°C. Проведено также изучение пристеночной микрофлоры различных отделов кишечника крыс. С помощью электронной микроскопии на поверхности клеток популяции бактерий A.hydrophila и A.salmonicida выявлены мембранные нановезикулы размерами от 20 до 200 нм в диаметре. На некоторых участках в препаратах можно наблюдать процесс отпочковывания везикул от бактериальной клетки. При использовании культуры A.salmonicida получены препараты изолированных ВМН. Установлено, что эти везикулы гетерогенны по размерам (от 20 до 200 нм). На ультратонких срезах кишечника крыс обнаружены бактерии разных видов. В непосредственной близости от клеток бактерий выявлены скопления гетерогенных мембранных нановезикул. Отдельные от клеток (свободные) нановезикулы были также обнаружены в виде цепочек из нескольких пузырьков, проникающих через гликокаликс и микроворсинки апикальной поверхности эпи-телиоцитов. Учитывая данные, представленные в литературе [4, 5, 8] о содержании в ВМН грамотрицательных бактерий различных факторов патогенности, мы предполагаем, что мембранные нановезикулы, выделяемые патогенными бактериями A. hydrophila и A. salmonicida, являются одним из элементов механизма патогенеза при инфицировании организма. Кроме того, выделение ВМН бактериями является еще одним типом секреции (помимо известных и изученных шести типов секреции белков из клетки). Тот факт, что ВМН продуцируют как патогенные, так и апатогенные штаммы бактерий может говорить также о том, что функция этих везикул не ограничивается только транспортом факторов патогенности. Возможно, ВМН также представляют собой средство коммуникации грамотрицатель-ных бактерий с другими клетками прокариот и эукариот.
×

About the authors

K. A Lusta

Research Institute of Human Morphology

Moscow, Russia

Yu. E Kozlovsky

Research Institute of Human Morphology

Moscow, Russia

References

  1. Бондаренко В.М., Вертиев Ю.В. Факторы патогенности и токсигенности микроорганизмов. В: Рук-во по медицинской микробиологии. А.С.Лабинская и Е.Г.Волина (ред.). М., БИНОМ, 2008, 1, с.422-447.
  2. Altwegg M., Geiss H.K. Aeromonas as a human pathogen. Crit. Rev. Microbiol. 1989, 16 (4): 253-286.
  3. Ellis T.N., Kuehn M.J. Virulence and immunomodulatory roles of bacterial outer membrane vesicles. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2010, 74 (1): 81-94.
  4. Dutta S., Iida K., Takade A. et al. Release of Shiga toxin by membrane vesicles in Shigella dysenteriae serotype 1 strains and in vitro effects of antimicrobials on toxin production and release. Microbiol. Immunol. 2004, 48: 965-969.
  5. Keenan, J., Day T, Neal S. et al. A role for the bacterial outer membrane in the pathogenesis of Helicobacter pylori infection. FEMS Microbiol. Lett. 2000, 182: 259264.
  6. Mashburn L.M., Whiteley M. Membrane vesicles traffic signals and facilitate group activities in a prokaryote. Nature. 2005, 437: 422-425.
  7. Scorza F. B., Doro F., Rodriguez-Ortega M. J. et al. Proteomics characterization of outer membrane vesicles from the extraintestinal pathogenic Escherichia coli IHE3034 mutant. Mol. Cell. Proteomics. 2008, 7: 473-485.
  8. Wai S.N., Lindmark B., Soderblom T. et al. Vesicle-mediated export and assembly of pore-forming oligomers of the enterobacterial ClyA cytotoxin. Cell. 2003, 115: 25-35.
  9. Wu C.J., Wu J.J., Yan J.J. et al. Clinical significance and distribution of putative virulence markers of 116 consecutive clinical Aeromonas isolates in southern Taiwan. J. Infect. 2007, 54 (2): 151-158.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML

Copyright (c) 2011 Lusta K.A., Kozlovsky Y.E.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС77-75442 от 01.04.2019 г.


This website uses cookies

You consent to our cookies if you continue to use our website.

About Cookies