Система секреции 4-го типа у Clostridioides difficile: структурные особенности и её роль как фактора патогенности

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Clostridioides difficile грамположительный микроорганизм, вызывающий поражения стенки кишечника человека, которые проявляются клинически в виде антибиотикоассоциированной диареи и псевдомембранозного колита. Проблема инфекции C. difficile не теряет актуальности, а с распространением внутрибольничных вспышек и появлением внебольничных форм растёт потребность в новых видах её профилактики и лечения. Патогенез инфекции C. difficile связан с продукцией бактериями токсинов и большой группы иных белков, благоприятствующих размножению патогена в тканях макроорганизмов и его распространению в популяции людей. Исходя из исследований последних лет можно заключить, что высокой вирулентности C. difficile способствуют мобильные генетические элементы. Важнейшими компонентами этих элементов являются системы секреции 4-го типа (СС4Т), впечатляющее разнообразие которых среди грамположительных микроорганизмов вообще и C. difficile в частности говорит об их высокой эволюционной и, следовательно, медицинской значимости. Дальнейшее изучение состава и строения СС4Т позволит расширить понимание механизмов развития соответствующих инфекций и наметить патогенетически обоснованные подходы к профилактике и лечению заболеваний, вызываемых C. difficile. С другой стороны, ключевые компоненты секреторного аппарата патогена могут быть использованы для биоинформационного анализа и поиска новых адаптивных кластеров в геноме высоковирулентных штаммов.

Полный текст

Введение

Clostridioides difficile — грамположительный подвижный спорообразующий микроорганизм, вызывающий поражения кишечника человека — антибиотикоассоциированную диарею и колиты разной степени тяжести [1–3]. Патогенность C. difficile определяется способностью возбудителя вырабатывать хотя бы один из двух глюкозилирующих токсинов: TcdA и TcdB [4, 5], а также бинарный токсин (CDT), хотя роль последнего остаётся менее понятной [6–8]. Тяжесть течения заболевания, возможность развития его осложнений и переход в хронические формы, а также возникновение новых эндемичных штаммов зачастую связывают с дополнительными факторами, которые отвечают за адгезивные функции [9], спорообразование [10], формирование биоплёнок [11], модификацию клеточной стенки [12, 13] и транскрипцию [14–16]. Кроме этого, большую роль в патогенезе инфекции C. difficile играют белки систем чувства кворума (от англ. quorum-sensing) [17, 18], регулирующих, помимо прочего, уровень продукции токсинов [19], а большая группа генов резистентности к антибиотикам обусловливает беспрепятственное развитие инфекции при лечении заболевания антибактериальными препаратами [20–23].

Относительно недавно в геномах штаммов C. difficile были обнаружены нуклеотидные последовательности, предположительно кодирующие компоненты системы секреции 4-го типа (СС4Т) [24]. Данный секреторный аппарат играет ключевую роль в патогенезе инфекций, вызываемых грамотрицательными бактериями Agrobacterium tumefaciens [25], Legionella pneumophila [26], Helicobacter pylori и др. [27]. В то же время связь СС4Т с патогенезом заболеваний, вызываемых грамположительными возбудителями, только начинает привлекать внимание микробиологов [28–31]. Уже сейчас становится ясно, что изучение структуры и функции секреторного аппарата этой группы бактерий представляется важным не только для расшифровки инфекционных процессов, но и для создания средств терапии и профилактики заболеваний [28, 30]. В нашем обзоре мы постарались раскрыть особенности организации СС4Т C. difficile класса С, чтобы наметить направления и перспективы её дальнейших исследований.

Система секреции 4-го типа у грамположительных и грамотрицательных микроорганизмов

СС4Т представляет собой многокомпонентную трансмембранную белковую структуру, которая участвует в доставке токсических эффекторов в клетку-мишень [25], горизонтальном транспорте мобильных генетических элементов (МГЭ) между микроорганизмами [23] и в обмене ДНК с внешней средой [27]. По строению секреторные аппараты 4-го типа разделяют на три класса: A, B и C (СС4Т-А, СС4Т-В, СС4Т-С соответственно) [32, 33]. Последний встречается исключительно у грамположительных бактерий и входит в состав элементов конъюгативного переноса ДНК: плазмид, интегративных и конъюгативных элементов и островков патогенности [33–35].

Прототипом секреторного аппарата 4-го типа является СС4Т-А грамотрицательного фитопатогена A. tumefaciens (рис. 1, а). Она получила название VirB/VirD4 и состоит из 12 субъединиц [25]. В её состав входят цитоплазматические АТФазы (VirD4, VirB4, VirB11), которые снабжают энергией транслокационный процесс и первыми связываются с эффекторными молекулами [36], компоненты комплексов внутренней (VirB3, VirB6, VirB8) и наружной (VirB7, VirB9, VirB10) мембран, формирующие трансмембранный канал [25], а также структурные белки пилей (VirB1, VirB2, VirB5) [37]. Такой секреторный аппарат успешно транспортирует в растительную клетку фрагмент Ti-плазмиды, запускающий опухолевые процессы в эукариотической клетке [25], и ряд вспомогательных белков [38, 39]. Обе группы молекул способствуют развитию опухолевидных образований у растений («галлов»), в которых в дальнейшем происходит пролиферация бактериальных клеток [25]. СС4Т-А связывают с вирулентностью не только фитопатогенов [40], но и патогенов человека. Так, у Helicobacter pylori эффекторные молекулы СС4Т-А запускают провоспалительный ответ в эпителиальных клетках желудка [41] и обусловливают неконтролируемое деление клеток хозяина [42].

В отличие от СС4Т-А A. tumefaciens, секреторные системы В-типа доставляют в эукариотические клетки-мишени преимущественно белковые эффекторы [43] и определяют патогенез таких заболеваний, как болезнь легионеров [26] и лихорадка Ку [44, 45]. Среди СС4Т-B грамотрицательных бактерий наиболее изученным является секреторный аппарат Dot/Icm у L. pneumophila — внутриклеточного патогена и возбудителя легионеллёза. Он участвует в транспорте свыше 300 эффекторных молекул, лишь небольшая часть которых охарактеризована. Последние участвуют в формировании специализированных «репликативных» фагосом в эукариотических клетках [46] и нарушают жизнедеятельность клетки-хозяина [47, 48], способствуя внутриклеточной пролиферации легионелл [49].

Конъюгативные СС4Т-С грамположительных микроорганизмов схожи по строению с вышеописанными системами и включают гомологи соответствующих субъединиц [33]. Так, плазмида pIP501 Enterococcus sp. (рис. 1, б) содержит;

  • релаксазу TraA (необходима для образования одноцепочечного фрагмента ДНК);
  • гидролазу TraG (гомолог VirB1), которая должна разрушать связи в пептидогликане при формировании секреторного аппарата;
  • белки, формирующие канал через клеточную стенку — TraL (гомолог VirB6), TraM и TraH (последние два — предположительно гомологи VirB8);
  • АТФазы TraE и TraJ (гомологи VirB4 и VirD4, соответственно) [50–52].

 

Рис. 1. Организация СС4Т.

а — схематическое изображение секреторного аппарата 4А типа Agrobacterium tumefaciens [25]; б — компоненты СС4Т-С трех конъюгативных транспозонов C. difficile 630 в сравнении с типичными представителями СС4Т-А (A. tumefaciens pTi1D1609) и СС4Т-С (Enterococcus faecalis pIP501).

Визуализацию осуществляли в программе «Genious», данные о каждом компоненте подтверждали с помощью баз данных NCBI, UniProt, а также с помощью отдельных попарных выравниваний. КВМ — комплекс внутренней мембраны; ККНМ — коровый комплекс наружной мембраны. *VirB1 в СС4Т-А, будучи литическим ферментом, разрушает связи в пептидогликане в процессе формирования трансмембранного канала, а также входит в состав пиля.

Fig. 1. T4SS organization.

a — schematic representation of the Agrobacterium tumefaciens type 4A secretion machinery [25]; b — T4SS-C components of three conjugative transposons of C. difficile strain 630 compared to representatives of T4SS-A (A. tumefaciens pTi1D1609) and T4SS-C (Enterococcus faecalis pIP501).

The visualization was performed using the Genious software; the data on each component were verified using NCBI and UniProt databases, as well as using separate pairwise alignments. IMC — the inner membrane complex; OMCC — the outer membrane core complex. *In T4SS-A, VirB1, being a lytic enzyme, breaks bonds within the peptidoglycan during the formation of a transmembrane channel; it also forms a part of the pilus assembly.

 

Из-за отсутствия наружной мембраны у грамположительных микроорганизмов секреторный аппарат СС4Т-С может быть представлен так называемыми «минимизированными» структурами, образованными только 4–7 субъединицами [34, 35] вместо 12 у A. tumefaciens [25] или 27 у L. pneumophila [53].

Если у грамотрицательных бактерий СС4Т прочно ассоциируется с патогенезом инфекций, то в грамположительных бактериях этот тип секреторного аппарата преимущественно рассматривают в качестве участника конъюгативных процессов и, как следствие, фактора распространения генов антибиотикоустойчивости (плазмиды pCW3 Clostridium perfringes, pIP501 Enterococcus sp. и др.) [51, 52, 54]. Однако можно предположить, что, по аналогии с секреторными системами A. tumefaciens и H. pylori, грамположительные бактерии способны использовать аппарат СС4Т как для доставки одноцепочечных молекул ДНК, так и для транслокации молекул, способствующих развитию инфекционных процессов, что уже подтверждается отдельными исследованиями. Обнаружено, что адгезины, секретируемые СС4Т-С плазмиды pCF10 Enterococcus faecalis, способствуют образованию биоплёнок и повышают вирулентность энтерококка [30]. Другим примером участия СС4Т-С в патогенезе инфекционных заболеваний являются данные о связи геномного островка патогенности Sp1 Streptococcus suis со вспышками синдрома токсического шока 1998 и 2005 гг. [55, 56]. В состав Sp1, который определяет адаптивные и вирулентные свойства стрептококка, входят гомологи только 4 генов СС4Т: VirB1, VirB4, VirD4 и VirB6 [56, 57]. Несмотря на простое строение, такая минимизированная секреторная система сохраняет свои функциональные свойства и не только вовлечена в конъюгативный перенос островка патогенности, но и непосредственно определяет вирулентность S. suis [28, 29]. Таким образом, секреция белковых факторов вирулентности и транслокация МГЭ СС4Т-С свидетельствуют в пользу участия данного аппарата в патогенезе инфекций, вызываемых грамположительными микроорганизмами, как это было показано ранее для грамотрицательных бактерий.

СС4Т-С у C. difficile

Несмотря на потенциальную значимость в патогенезе инфекции, СС4Т-С у C. difficile остаётся малоизученной [24, 58]. До сих пор не определён точный состав секреторного аппарата. Помимо ранее выделенных генов VirD4, VirB6 и VirB4 [24] с использованием биоинформационного анализа мы обнаружили ген, предположительно кодирующий гомолог VirB1 во всех трех конъюгативных транспозонах: CTn4, CTn2 и CTn5 (последние обозначены нами в данной статье CTn2/CTn5) [31]. В состав конъюгативной части оперонов CTn у C. difficile также входят гены метилтрансферазы, релаксазы, хеликазы и топоизомеразы. Вероятнее всего, они кодируют компоненты релаксосомы (рис. 1, б), необходимой для образования транспортируемых одноцепочечных молекул ДНК и её передачи секреторному аппарату, как это происходит при участии белка VirD2 A. tumefaciens [25] и релаксазы TraA плазмиды pIP501 [51]. Остаётся открытым вопрос о принадлежности к СС4Т-С продукта гена конъюгативного транспозона CD630_18580, который, согласно М. Bhatty и соавт. [34], является ортологом адгезина pCF10 E. faecalis [30] и может, по аналогии с белком энтерококков, оказаться фактором вирулентности C. difficile.

Важнейшими компонентами СС4Т бактерий являются белки VirB4 и VirD4, принимающие участие в транслокации в качестве источника энергии для транспорта биомолекул. Обе АТФазы относятся к консервативным белкам секреторного аппарата [58, 59] и, как следствие, являются оптимальными объектами для таксономических исследований [60]. Так, филогенетический анализ последовательностей VirB4- и VirD4-подобных АТФаз позволяет достоверно определить, к какому семейству (А, B или C) относится СС4Т, включающая эти ферменты (рис. 2). Из-за различий в строении VirB4 и VirD4 C. difficile транспозонов CTn4 и CTn2/CTn5 оказываются в отдельных кладах, которые вместе с АТФазами островка патогенности S. suis формируют три таксономически важных группы внутри СС4Т-С, что может указывать на их различную функциональную значимость.

 

Рис. 2. Филогенетические деревья VirD4- (а) и VirB4-подобных (б) белков грамположительных и грамотрицательных бактерий.

Зелёной стрелкой обозначены АТФазы CTn4, оранжевой — CTn2/5. Выравнивание проводили методом MAFFT и K-align, деревья строили по методу максимальной схожести по модели Blosum62 [31].

Fig. 2. Phylogenetic trees of VirD4- (a) and VirB4-like (b) proteins of gram-positive and gram-negative bacteria.

The green arrow indicates CTn4 ATPases; the orange arrow indicates CTn2/5. The alignment was performed using MAFFT and K-align tools; trees were constructed using the maximum likelihood method and the Blosum62 matrix [31].

 

Единственная биохимическая работа, изучающая клостридиальный аппарат СС4Т и посвящённая данным белкам, была проведена недавно в нашей лаборатории [31]. Согласно нашим данным, оба фермента обладают Mg2+-зависимой АТФазной активностью, а максимальная скорость каталитической реакции достигается в присутствии ионов калия [31]. VirD4, но не VirB4 способна взаимодействовать с молекулами нуклеиновых кислот. Причём важную роль в этом взаимодействии играет трипофан-241, поскольку точечная замена W241A приводит к варианту белка, не способному адсорбировать ДНК [31]. VirB4 и VirD4 образуют олигомерные ферментативно-активные комплексы, а замена ключевых аминокислот в так называемых «Walker A» и «Walker B» мотивах, входящих в состав ферментативных доменов, не только снижает АТФазную активность, но и дестабилизирует олигомерный комплекс в целом [31]. Сходство обеих АТФаз с другими АТФазами СС4Т по аминокислотному строению (рис. 2), а также биохимическим и структурным особенностям [31] позволяет предположить, что данный секреторный аппарат способен транслоцировать белки, подобно системе секреции S. suis и E. faecalis. Однако эта гипотеза требует дополнительных подтверждений.

Наличие VirB4- и VirD4-подобных АТФаз у штамма 630 не является уникальным или единичным случаем. Для оценки частоты встречаемости АТФаз СС4Т-С среди представителей C. difficile оптимально подходят секвенированные аннотированные геномы, собранные до уровня хромосом. В базу данных NCBI для вида C. difficile на конец 2022 г. внесён 17 961 секвенированный геном1, 92 из которых аннотированы и собраны до уровня хромосомы, а при исключении дублирующих вариантов установленным параметрам соответствуют 89 геномов (рис. 3). Половина таких геномов (45 штаммов) содержит АТФазы СС4Т-С в составе конъюгативных транспозонов, у остальных данные аминокислотные последовательности с помощью Blast-анализа не найдены [Сорокина и др., данные не опубликованы]. У 38 штаммов гены секреторного аппарата не повреждены (рис. 3), что может указывать на их функциональную активность. Только у C. difficile 630 присутствуют три варианта генов VirB4 и VirD4 АТФаз, расположенных в транспозонах CTn2, CTn4 и CTn5. В 10 геномах и VirB4, и VirD4 найдены в 2 локусах (транспозонах), чаще всего каждый из генов представлен одной копией. Особую интересную для дальнейших исследований группу представляют АТФазы СС4Т, демонстрирующие низкую гомологию с АТФазами известных транспозонов CTn4 или CTn2/CTn5 (менее 80% идентичности). СС4Т-С, включающие подобные «новые» варианты АТФаз, практически не отличаются по организации от таковых у CTn4 или CTn2/CTn5, за исключением отдельных случаев появления между генами топоизомеразы и хеликазы гена с мотивами, свойственными белкам клеточной стенки (потенциальных факторов вирулентности) [61, 62]. Определить, насколько однородной является последняя группа при таком объёме выборки, не представляется возможным. В целом проведённый нами таксономический анализ позволяет не только выявить штаммы с АТФазами, принадлежащими к уже известным подгруппам (CTn4 или CTn2/CTn5), но и обнаружить совершенно новые варианты секреторного аппарата.

 

Рис. 3. Распределение VirB4 и VirD4 АТФаз СС4Т-С среди штаммов C. difficile с аннотированными геномами в базе данных NCBI.

АТФазы могли быть представлены в геноме в 1 (1 локус), 2 (2 локуса) или 3 (3 локуса) вариантах. В случае если аминокислотные последовательности были идентичны более чем на 87% WP_011861117.1 (VirD4Ctn4) и WP_011861114.1 (VirB4Ctn4), мы причисляли их к группе CTn4. Если обе последовательности были идентичны более чем на 87% WP_011860784.1 (VirD4Ctn2/5) и WP_042741540.1 (VirB4Ctn2/5), то их относили к группе CTn2/5. При меньших значениях АТФазы причисляли к группе CTnX. Повреждёнными считались аминокислотные последовательности без мотивов WalkerA или WalkerB, для которых доказано участие в формировании олигомерных комплексов и формирующих активный центр фермента.

Fig. 3. Distribution of VirB4 and VirD4 T4SS-C ATPases among C. difficile strains with annotated genomes in the NCBI database.

In genomes, ATPases could be present in 1 (1 locus), 2 (2 loci), or 3 (3 loci) variants. If amino acid sequences were more than 87% identical to WP_011861117.1 (VirD4Ctn4) and WP_011861114.1 (VirB4Ctn4), we assigned them to the CTn4 group. If both sequences were more than 87% identical to WP_011860784.1 (VirD4Ctn2/5) and WP_042741540.1 (VirB4Ctn2/5), they were assigned to the CTn2/5 group. At lower values, ATPases were assigned to the CTnX group. The amino acid sequences lacking Walker A or Walker B motifs, which participate in the formation of oligomeric complexes and constitute the active center of the enzyme, were seen as damaged.

 

Выводы

Проблема инфекции C. difficile и в настоящее время не теряет актуальности, а с распространением внутрибольничных вспышек и появлением внебольничных форм растёт потребность в новых видах профилактики и лечения этого заболевания. Исходя из исследований последних лет можно заключить, что МГЭ способствуют высокой вирулентности C. difficile. Важнейшими компонентами МГЭ являются СС4Т, впечатляющее разнообразие которых среди грамположительных микроорганизмов вообще и C. difficile в частности говорит об их высокой эволюционной и, следовательно, медицинской значимости. Приспособленные вначале к переносу генов адаптивного ответа к неблагоприятным факторам среды, в дальнейшем СС4Т приобрели способность к осуществлению транспорта и белковых молекул — факторов вирулентности. Эти процессы убедительно показаны в работах по системам секреции патогенных грамотрицательных микроорганизмов. У грамположительных бактерий, в частности у C. difficile, подобный тип участия МГЭ в патогенезе инфекционных заболеваний значительно менее изучен. Не определён состав секреторного аппарата, в который, помимо охарактеризованных АТФаз VirB4 и VirD4, а также белка трансмембранного канала VirB6, как мы предполагаем, входят гомолог VirB1, компоненты релаксосомы и адгезины. Последние, будучи потенциальными факторами вирулентности, представляют особый интерес. Дальнейшая работа по изучению как состава и строения СС4Т-С в целом, так и её отдельных компонентов может способствовать существенному прогрессу в понимании патогенеза соответствующих инфекций и разработке патогенетически обоснованных подходов к профилактике и лечению заболеваний, вызываемых C. difficile.

Источник финансирования. Авторы заявляют об отсутствии внешнего финансирования при проведении исследования.

Конфликт интересов. Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.

Участие авторов. Все авторы внесли существенный вклад в проведение поисково-аналитической работы и подготовку статьи, прочли и одобрили финальную версию до публикации.

Funding source. This study was not supported by any external sources of funding.

Conflict of interest. The authors declare no apparent or potential conflicts of interest related to the publication of this article.

Author contribution. Аll authors made a substantial contribution to the conception of the work, acquisition, analysis, interpretation of data for the work, drafting and revising the work, final approval of the version to be published.

1 URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/data-hub/taxonomy/1496/

×

Об авторах

Юлия Валерьевна Сорокина

Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени Н.Ф. Гамалеи

Автор, ответственный за переписку.
Email: YV_Sorokina@gamaleya.org
ORCID iD: 0000-0002-1869-742X

н.с. отдела бактериальных инфекций

Россия, Москва

Юрий Фёдорович Белый

Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени Н.Ф. Гамалеи

Email: belyi@gamaleya.org
ORCID iD: 0000-0003-2312-1465

д.м.н., рук. отдела бактериальных инфекций

Россия, Москва

Список литературы

  1. Hall I.C., O'Toole E. Intestinal flora in new-born infants: with a description of a new pathogenic anaerobe, Bacillus difficilis. Am. J. Dis. Child. 1935;49(2):390. DOI: https://doi.org/10.1001/archpedi.1935.01970020105010
  2. Riley T.V., Wymer V., Bamford V.W., Bowman R.A. Clostridium difficile in general practice and community health. J. Hyg. (Lond.). 1986;96(1):13–7. DOI: https://doi.org/10.1017/s0022172400062483
  3. Guh A.Y., Mu Y., Winston L.G., et al. Trends in U.S. Burden of Clostridioides difficile infection and outcomes. N. Engl. J. Med. 2020;382(14):1320–30. DOI: https://doi.org/10.1056/nejmoa1910215
  4. Lyerly D.M., Saum K.E., MacDonald D.K., Wilkins T.D. Effects of Clostridium difficile toxins given intragastrically to animals. Infect. Immun. 1985;47(2):349–52. DOI: https://doi.org/10.1128/iai.47.2.349-352.1985
  5. Orrell K.E., Melnyk R.A. Large clostridial toxins: mechanisms and roles in disease. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2021;85(3):e0006421. DOI: https://doi.org/10.1128/mmbr.00064-21
  6. Popoff M.R., Rubin E.J., Gill D.M., Boquet P. Actin-specific ADP-ribosyltransferase produced by a Clostridium difficile strain. Infect. Immun. 1988;56(9):2299–306. DOI: https://doi.org/10.1128/iai.56.9.2299-2306.1988
  7. Aktories K., Papatheodorou P., Schwan C. Binary Clostridium difficile toxin (CDT) — a virulence factor disturbing the cytoskeleton. Anaerobe. 2018;53:21–9. DOI: https://doi.org/10.1016/j.anaerobe.2018.03.001
  8. Riedel T., Neumann-Schaal M., Wittmann J., et al. Characterization of Clostridioides difficile DSM 101085 with A–B–CDT + phenotype from a late recurrent colonization. Genome Biol. Evol. 2020;12(5):566–77. DOI: https://doi.org/10.1093/gbe/evaa072
  9. Merrigan M.M., Venugopal A., Roxas J.L., et al. Surface-layer protein A (SlpA) is a major contributor to host-cell adherence of Clostridium difficile. PLoS One. 2013;8(11):e78404. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0078404
  10. Shen A. Clostridioides difficile spore formation and germination: new insights and opportunities for intervention. Annu. Rev. Microbiol. 2020;74(1):545–66. DOI: https://doi.org/10.1146/annurev-micro-011320-011321
  11. Taggart M.G., Snelling W.J., Naughton P.J., et al. Biofilm regulation in Clostridioides difficile: novel systems linked to hypervirulence. PLOS Pathog. 2021;17(9):e1009817. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1009817
  12. de la Riva L., Willing S.E., Tate E.W., Fairweather N.F. Roles of cysteine proteases Cwp84 and Cwp13 in biogenesis of the cell wall of Clostridium difficile. J. Bacteriol. 2011;193(13):3276–85. DOI: https://doi.org/10.1128/jb.00248-11
  13. Coullon H., Candela T. Clostridioides difficile peptidoglycan modifications. Curr. Opin. Microbiol. 2022;65:156–61. DOI: https://doi.org/10.1016/j.mib.2021.11.010
  14. McKee R.W., Harvest C.K., Tamayo R. Cyclic diguanylate regulates virulence factor genes via multiple riboswitches in Clostridium difficile. mSphere. 2018;3(5):e00423-18. DOI: https://doi.org/10.1128/msphere.00423-18
  15. Buddle J.E., Fagan R.P. Pathogenicity and virulence of Clostridioides difficile. Virulence. 2023;14(1):2150452. DOI: https://doi.org/10.1080/21505594.2022.2150452
  16. Androga G.O., Knight D.R., Hutton M.L., et al. In silico, in vitro and in vivo analysis of putative virulence factors identified in large clostridial toxin-negative, binary toxin-producing C. difficile strains. Anaerobe. 2019;60:102083. DOI: https://doi.org/10.1016/j.anaerobe.2019.102083
  17. Lee A.S.Y., Song K.P. LuxS/autoinducer-2 quorum sensing molecule regulates transcriptional virulence gene expression in Clostridium difficile. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2005;335(3):659–66. DOI: https://doi.org/10.1016/j.bbrc.2005.07.131
  18. Okada Y., Okugawa S., Ikeda M., et al. Genetic diversity and epidemiology of accessory gene regulator loci in Clostridioides difficile. Access Microbiol. 2020;2(7):acmi.0.000134. DOI: https://doi.org/10.1099/acmi.0.000134
  19. Ahmed U.K.B., Shadid T.M., Larabee J.L., Ballard J.D. Combined and distinct roles of Agr proteins in Clostridioides difficile 630 sporulation, motility, and toxin production. mBio. 2020;11(6):e03190-20. DOI: https://doi.org/10.1128/mbio.03190-20
  20. Aguilar-Zamora E., Weimer B.C., et al. Molecular epidemiology and antimicrobial resistance of Clostridioides difficile in hospitalized patients from Mexico. Front. Microbiol. 2022;12:787451. DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2021.787451
  21. Wen X., Shen C., Xia J., et al. Whole-genome sequencing reveals the high nosocomial transmission and antimicrobial resistance of Clostridioides difficile in a single center in China, a four-year retrospective study. 2021;10(1):e01322-21. DOI: https://doi.org/10.1128/spectrum.01322-21
  22. Darkoh C., Keita K., Odo C., et al. Emergence of clinical Clostridioides difficile isolates with decreased susceptibility to vancomycin. Clin. Infect. Dis. 2022;74(1):120–6. DOI: https://doi.org/10.1093/cid/ciaa912
  23. Launay A., Ballard S.A., Johnson P.D., et al. Transfer of vancomycin resistance transposon Tn1549 from Clostridium symbiosum to Enterococcus spp. in the gut of gnotobiotic mice. Antimicrob. Agents Chemother. 2006;50(3):1054–62. DOI: https://doi.org/10.1128/aac.50.3.1054-1062.2006
  24. Zhang W., Cheng Y., Du P., et al. Genomic study of the type IVC secretion system in Clostridium difficile: understanding C. difficile evolution via horizontal gene transfer. Genome. 2017;60(1):8–16. DOI: https://doi.org/10.1139/gen-2016-0053
  25. Li Y.G., Christie P.J. The agrobacterium VirB/VirD4 T4SS: mechanism and architecture defined through in vivo mutagenesis and chimeric systems. Curr. Top. Microbiol. Immunol. 2018;418:233–60. DOI: https://doi.org/10.1007/82_2018_94
  26. Böck D., Hüsler D., Steiner B., et al. The polar Legionella Icm/Dot T4SS establishes distinct contact sites with the pathogen vacuole membrane. mBio. 2021;12(5):e0218021. DOI: https://doi.org/10.1128/mbio.02180-21
  27. Grohmann E., Christie P.J., Waksman G., Backert S. Type IV secretion in gram-negative and gram-positive bacteria: type IV secretion. Mol. Microbiol. 2018;107(4):455–71. DOI: https://doi.org/10.1111/mmi.13896
  28. Zhao Y., Liu G., Li S., et al. Role of a type IV-like secretion system of Streptococcus suis 2 in the development of streptococcal toxic shock syndrome. J. Infect. Dis. 2011;204(2):274–81. DOI: https://doi.org/10.1093/infdis/jir261
  29. Zhong Q., Zhao Y., Chen T., et al. A functional peptidoglycan hydrolase characterized from T4SS in 89K pathogenicity island of epidemic Streptococcus suis serotype 2. BMC Microbiol. 2014;14:73. DOI: https://doi.org/10.1186/1471-2180-14-73
  30. Bhatty M., Cruz M.R., Frank K.L., et al. Enterococcus faecalis pCF10-encoded surface proteins PrgA, PrgB (aggregation substance), and PrgC contribute to plasmid transfer, biofilm formation, and virulence. Mol. Microbiol. 2015;95(4):660–77. DOI: https://doi.org/10.1111/mmi.12893
  31. Sorokina J., Sokolova I., Rybolovlev I., et al. VirB4- and VirD4-like ATPases, components of a putative type 4C secretion system in Clostridioides difficile. J. Bacteriol. 2021;203(21):e00359-21. DOI: https://doi.org/10.1128/jb.00359-21
  32. Backert S. Erratum to: Type IV secretion in Gram-negative and Gram-positive bacteria. Curr. Top. Microbiol. Immunol. 2017; 413:E1. DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-319-75241-9_14
  33. Zhang W., Rong C., Chen C., Gao G.F. Type-IVC secretion system: a novel subclass of type IV secretion system (T4SS) common existing in gram-positive genus Streptococcus. PLoS One. 2012;7(10):e46390. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0046390
  34. Bhatty M., Laverde Gomez J.A., Christie P.J. The expanding bacterial type IV secretion lexicon. Res. Microbiol. 2013;164(6):620–39. DOI: https://doi.org/10.1016/j.resmic.2013.03.012
  35. Wang J., Feng Y., Wang C., et al. Pathogenic Streptococcus strains employ novel escape strategy to inhibit bacteriostatic effect mediated by mammalian peptidoglycan recognition protein. Cell. Microbiol. 2017;19(7). DOI: https://doi.org/10.1111/cmi.12724
  36. Das A. Identification of a carboxy-terminal glutamine-rich domain in Agrobacterium tumefaciens coupling protein VirD4 required for recognition of T-Strand DNA and Not VirE2 as a substrate for transfer to plant cells. Mol. Plant Microbe Interact. 2020;33(2):166–72. DOI: https://doi.org/10.1094/mpmi-04-19-0099-r
  37. Amro J., Black C., Jemouai Z., et al. Cryo-EM structure of the Agrobacterium tumefaciens T-pilus reveals the importance of positive charges in the lumen. Structure. 2023;31(4):375–84.e4. DOI: https://doi.org/10.1016/j.str.2022.11.007
  38. Roushan M.R., de Zeeuw M.A.M., Hooykaas P.J.J., van Heusden G.P.H. Application of phiLOV2.1 as a fluorescent marker for visualization of Agrobacterium effector protein translocation. Plant J. 2018;96(3):685–99. DOI: https://doi.org/10.1111/tpj.14060
  39. Чумаков М.И., Мазилов С.И., Гусев Ю.С., Волохина И.В. Исследование способности агробактериального белка VirE2 к образованию пор в мембранах. Биологические мембраны. 2010;27(5):449–54. Chumakov M.I., Mazilov S.I., Gusev Yu.S., Volokhina I.V. Study of the ability of agrobacterial protein VirE2 to form pores in membranes. Biological Membranes. 2010;27(5):449–54. EDN: https://www.elibrary.ru/mvskun
  40. Дюбо Ю.В., Николайчик Е.А. Модификация вирулентных свойств Pectobacterium atrosepticum конъюгативной плазмидой pPA21A. Молекулярная и прикладная генетика. 2018;24:37–44. Dyubo Yu.V., Nikolaichik E.A. Modification virulent properties of Pectobacterium atrosepticum by conjugative plasmid PPA21A. Molecular and Applied Genetics. 2018;24:37–44. EDN: https://www.elibrary.ru/hgoxko
  41. Pfannkuch L., Hurwitz R., Traulsen J., et al. ADP heptose, a novel pathogen‐associated molecular pattern identified in Helicobacter pylori. FASEB J. 2019;33(8):9087–99. DOI: https://doi.org/10.1096/fj.201802555r
  42. Zhang X., Li C., Chen D., et al. H. pylori CagA activates the NLRP3 inflammasome to promote gastric cancer cell migration and invasion. Inflamm. Res. 2022;71(1):141–55. DOI: https://doi.org/10.1007/s00011-021-01522-6
  43. Allombert J., Jaboulay C., Michard C., et al. Deciphering Legionella effector delivery by Icm/Dot secretion system reveals a new role for c-di-GMP signaling. J. Mol. Biol. 2021;433(13):166985. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jmb.2021.166985
  44. Beare P.A., Gilk S.D., Larson C.L., et al. Dot/Icm type IVB secretion system requirements for Coxiella burnetii growth in human macrophages. mBio. 2011;2(4):e00175-11. DOI: https://doi.org/10.1128/mbio.00175-11
  45. Clemente T.M., Augusto L., Angara R.K., Gilk S.D. Coxiella burnetii actively blocks IL-17-induced oxidative stress in macrophages. bioRxiv. 2023;2023.03.15.532774. Preprint. DOI: https://doi.org/10.1101/2023.03.15.532774
  46. Luo J., Wang L., Song L., Luo Z.Q. Exploitation of the host ubiquitin system: means by Legionella pneumophila. Front. Microbiol. 2021;12:790442. DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2021.790442
  47. Тартаковская Д.И. Эукариотические мишени цитотоксической глюкозилтрансферазы Legionella pneumophila. Инфекция и иммунитет. 2012;2(1-2):325. Tartakovskaya D.I. Eukaryotic targets of cytotoxic glucosyltransferase Legionella pneumophila. Russian Journal of Infection and Immunity. 2012;2(1-2):325.
  48. Levanova N., Steinemann M., Böhmer K.E., Schneider S., et al. Characterization of the glucosyltransferase activity of Legionella pneumophila effector SetA. Naunyn Schmiedebergs Arch. Pharmacol. 2019;392(1):69–79. DOI: https://doi.org/10.1007/s00210-018-1562-9
  49. Liu L., Roy C.R. The Legionella pneumophila effector RavY contributes to a replication-permissive vacuolar environment during infection. Infect. Immun. 2021;89(12):e0026121. DOI: https://doi.org/10.1128/iai.00261-21
  50. Kurenbach B., Bohn C., Prabhu J., et al. Intergeneric transfer of the Enterococcus faecalis plasmid pIP501 to Escherichia coli and Streptomyces lividans and sequence analysis of its tra region. Plasmid. 2003;50(1):86–93. DOI: https://doi.org/10.1016/s0147-619x(03)00044-1
  51. Abajy M.Y., Kopeć J., Schiwon K., et al. A type IV-secretion-like system is required for conjugative DNA transport of broad-host-range plasmid pIP501 in Gram-positive bacteria. J. Bacteriol. 2007;189(6):2487–96. DOI: https://doi.org/10.1128/jb.01491-06
  52. Kohler V., Vaishampayan A., Grohmann E. Broad-host-range Inc18 plasmids: occurrence, spread and transfer mechanisms. Plasmid. 2018;99:11–21. DOI: https://doi.org/10.1016/j.plasmid.2018.06.001
  53. Durie C.L., Sheedlo M.J., Chung J.M., et al. Structural analysis of the Legionella pneumophila Dot/Icm type IV secretion system core complex. eLife. 2020;9:e59530. DOI: https://doi.org/10.7554/elife.59530
  54. Revitt-Mills S.A., Watts T.D., Lyras D., et al. The ever-expanding tcp conjugation locus of pCW3 from Clostridium perfringens. Plasmid. 2021;113:102516. DOI: https://doi.org/10.1016/j.plasmid.2020.102516
  55. Tang J., Wang C., Feng Y., et al. Streptococcal toxic shock syndrome caused by Streptococcus suis serotype 2. PLoS Med. 2006; 3(5):e151. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pmed.0030151
  56. Li M., Wang C., Feng Y., et al. SalK/SalR, a two-component signal transduction system, is essential for full virulence of highly invasive Streptococcus suis serotype 2. PLoS One. 2008;3(5):e2080. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0002080
  57. Li M., Shen X., Yan J., et al. GI-type T4SS-mediated horizontal transfer of the 89K pathogenicity island in epidemic Streptococcus suis serotype 2: T4SS-mediated transfer of 89K PAI in S. suis 2. Mol. Microbiol. 2011;79(6):1670–83. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-2958.2011.07553.x
  58. Li N., Jia H., Yang H., et al. Preliminary screening of type IV secretion system in divergent geographic sources of Clostridium difficile. Exp. Ther. Med. 2017;14(5):4405–10. DOI: https://doi.org/10.3892/etm.2017.5065
  59. Whitaker N., Berry T.M., Rosenthal N., et al. Chimeric coupling proteins mediate transfer of heterologous type IV effectors through the Escherichia coli pKM101-encoded conjugation machine. J. Bacteriol. 2016;198(19):2701–18. DOI: https://doi.org/10.1128/jb.00378-16
  60. Fernández-López R., Garcillán-Barcia M.P., Revilla C., et al. Dynamics of the IncW genetic backbone imply general trends in conjugative plasmid evolution. FEMS Microbiol. Rev. 2006;30(6):942–66. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1574-6976.2006.00042.x
  61. Tulli L., Marchi S., Petracca R., et al. CbpA: a novel surface exposed adhesin of Clostridium difficile targeting human collagen: сollagen binding protein of Clostridium difficile. Cell. Microbiol. 2013;15(10):1674–87. DOI: https://doi.org/10.1111/cmi.12139
  62. Malik A., Shoombuatong W., Kim C.B., Manavalan B. GPApred: The first computational predictor for identifying proteins with LPXTG-like motif using sequence-based optimal features. Int. J. Biol. Macromol. 2023;229:529–38. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijbiomac.2022.12.315

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рис. 1. Организация СС4Т.

Скачать (294KB)
3. Рис. 2. Филогенетические деревья VirD4- (а) и VirB4-подобных (б) белков грамположительных и грамотрицательных бактерий.

Скачать (302KB)
4. Рис. 3. Распределение VirB4 и VirD4 АТФаз СС4Т-С среди штаммов C. difficile с аннотированными геномами в базе данных NCBI.

Скачать (155KB)

© Сорокина Ю.В., Белый Ю.Ф., 2023

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС77-75442 от 01.04.2019 г.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах