СВОЙСТВА НАТИВНЫХ БЕЛОКСОДЕРЖАЩИХ АНТИГЕНОВ STREP TOCOCCUS PNEUMONIAE

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Цель. Исследование иммунохимических и иммунобиологических свойств нативных белок-содержащих антигенов пневмококка (БсАП). Материалы и методы. Штаммы S. pneumoniae, используемые в работе, получены из ЦКП коллекция НИИВС им. И.И. Мечникова. Изучали химический состав, молекулярную массу полученных антигенов в SDS-электрофорезе и титры антител к ним в иммуноферментном анализе (ИФА). Протективную активность БсАП определяли в опытах активной защиты мышей. Результаты. Белоксодержащие антигены пневмококка выделяли из S. pneumoniae серотипов 3, 6В, 10А, 14, 19F, 23F и 36. По химическому составу препараты содержали от 16 до 35 % белка. В SDS-электрофорезе в полиакриламидном геле (ПААГ) установлено, что молекулярная масса БсАП находилась в диапазоне от 14 до 116 кДа. С помощью ИФА показана перекрестная активность нативных антигенов. Практически все препараты реагировали с антимикробной кроличьей сывороткой, полученной к 19F серотипу (р≤0,05). Сыворотка 14 серотипа была менее активной, с ней взаимодействовали БсАП, полученные из 14 и 19F серотипов (р≤0,05). В реакции преципитации по Оухтерлони подтверждено, что препараты серотипов 3, 6В, 14, 19F и 36 реагировали с кроличьей иммунной сывороткой, полученной к серотипу 19F S. pneumoniae. В иммуноблоттинге установлено, что БсАП, выделенные из серотипов 3, 6В, 10А, 14, 19F и 36, связывались с моноклональными антителами к пневмококковому белку — пневмолизину. В серии экспериментов in vivo показано, что БсАП защищали животных от внутрибрюшинного заражения S. pneumoniae в гомологичной и гетерологичной системах (р≤0,05). Заключение. Выявленная иммунохимическая и перекрестная протективная активность БсАП в опытах in vitro и in vivo позволяет отобрать препараты, полученные из серотипов 6В, 10А, 19F и 36, как наиболее перспективные для дальнейшего изучения внутривидовой протективной активности отдельных нативных белков пневмококка.

Полный текст

ВВЕДЕНИЕ Проблема инфекций, вызванных Streptococcus pneumoniae, на протяжении не- скольких десятилетий остается актуальной для России [1, 2, 5]. Пневмококк спо- собен вызывать тяжелые инвазивные формы заболеваний среди детей и у взрослых людей [15]. Для профилактики пневмококковых инфекций используют зарубежные полисахаридные и конъюгированные вакцины, создающие защиту против ограни- ченного количества актуальных серотипов S. pneumoniae [5, 7]. При смене клиничес- ки значимых серотипов возбудителя полисахаридные антигены, входящие в состав пневмококковых вакцин, не позволяют создать защиту от невакцинных штаммов пневмококка [11]. Известно, что белки S. pneumoniae наряду с капсулой являются факторами ви- рулентности микроба и, соответственно, принимают участие в патогенезе инфекции и формировании иммунной защиты [3, 6]. Кроме того, пневмококковые белки обла- дают высокой гомологией между собой и, соответственно, могут формировать пере- крестную внутривидовую защиту [9, 11, 14]. Поэтому перспективным направлением является изучение свойств белков пневмококка с целью выявления наиболее имму- ногенных вариантов для создания отечественной серотипнезависимой вакцины. Вакцины, основанные на конъюгации полисахаридных антигенов и гомологич- ных белков, предположительно должны создавать более выраженную защиту против S. pneumoniae по сравнению с существующими вакцинами. Целью настоящей работы явилось исследование иммунохимических и иммуно- биологических свойств нативных белоксодержащих антигенов пневмококка (БсАП). МАТ Е Р И А Л Ы И М Е Т О Д Ы В работе использованы штаммы S. pneumoniae серотипов 3, 6В, 10А, 14, 19F, 23F и 36, полученные из ЦКП Коллекция ФГБНУ НИИВС им. И.И.Мечникова. Опыты проводили на мышах линии Balb/c массой 16-18 г, полученных из пи- томника НЦ Биомедицинских технологий, филиал «Андреевка». S. pneumoniae выращивали в сердечно-мозговом бульоне в течение 16-18 ч в СО2- инкубаторе при температуре 370С и 5% содержании углекислого газа. Полученную культуру инактивировали с помощью 0,1 N NaOH, затем ее центрифугировали, отде- ляли осадок клеток из культуральной жидкости и из надосадочной жидкости выделяли БсАП методом ацетонового осаждения. Полученные препараты лиофилизировали. Химический анализ БсАП выполняли с помощью традиционных методов. Для определения общего белка в исследуемых препаратах использовали метод [13], уг- леводы определяли по методу [10], количество нуклеиновых кислот — по методу Спирина. Измерения проводили на спектрофотометре Ultrospec II E, Pharmacia LKB (Швеция). Для характеристики электрофоретической подвижности и опреде- ления молекулярной массы БсАП использовали вертикальный SDS-электрофорез в полиакриламидном геле (ПААГ) в денатурирующих условиях [12]. Иммуноблоттинг проводили по общепринятой методике, используя для анализа моноклональ- ные антитела IgG1 к пневмолизину (100 мкг/мл, Santa Cruz Biotechnology, USA). Специфичность белков оценивали визуально по окрашиванию мембраны. Иммуноферментный анализ проводили согласно методу [8]. Для иммунизации животных использовали БсАП, которые растворяли в физио- логическом растворе без добавления или с добавлением гидроксида алюминия (Sigma, США) из расчета 20 мкг Al(OH)3 на 1 мкг белка. Сорбцию проводили в течение 12 ч при температуре 40С. Белоксодержащие антигены пневмококка вводили внутрибрю- шинно двукратно с интервалом в 14 дней в дозах 10, 30, 50 и 100 мкг/мышь. Через две недели после повторного введения препарата мышей заражали внутрибрюшинно суточной культурой S. pneumoniae в дозе 105 микробных клеток в 0,5 мл физиологи- ческого раствора (штамм №3) и в дозе 104 микробных клеток в 0,5 мл физиологичес- кого раствора (штамм №1156). В качестве контроля служили неиммунизированные мыши. Наблюдение за животными проводили в течение 10-14 дней. Статистическая обработка. Результаты оценивали по выживаемости мышей в течение срока наблюдения, рассчитывая достоверность по методу С.А. Гланца [4]. Р Е З У Л ЬТАТ Ы И О Б С У Ж Д Е Н И Е Белоксодержащие антигены пневмококка получали из S. pneumoniae серотипов 3, 6В, 10А, 14, 19F, 23F и 36. По химическому составу препараты содержали от 16 до 35% белка, от 1 до 4% углеводов, от 3 до 6% нуклеиновых кислот. В SDS-электрофорезе в полиакриламидном геле с использованием белкового красителя Кумасси R-250 выявили в составе полученных препаратов (серотипы 3, 6В, 10А, 14, 19F и 36) белки с молекулярной массой в диапазоне от 14 до 116 кДа (рис. А).

 

Рисунок.

SDS-электрофорез БсАП в 12% ПААГ (А) и нитроцеллюлезная мембрана после иммуноблоттинга БсАП (Б). Концентрация БсАП в каждой дорожке составила 5 мг/мл. Дорожки: 1 — БсАП 3 No3; 2 — БсАП 3 No1156; 3 — БсАП 6В; 4 — БсАП 10А; 5 — БсАП 14; 6 — БсАП 19F; 7 — БсАП 36; 8 — маркер молекулярной массы.

В иммуноблоттинге определено, что БсАП, выделенные из S. pneumoniae серо- типов 3, 6В, 10А, 14, 19F и 36, связывались с моноклональными антителами IgG1 к пневмолизину (рис. Б). Это может свидетельствовать о перекрестной активнос- ти пневмолизина, содержащегося в препаратах, полученных из разных серотипов пневмококка. В реакции преципитации по Оухтерлони БсАП серотипов 3, 6В, 14, 19F и 36 в концентрации 1 мг/мл реагировали с кроличьей иммунной сывороткой, получен- ной к серотипу 19F S. pneumoniae, что свидетельствовало о наличии перекрестно- реагирующих антигенов в изучаемых препаратах. С помощью ИФА подтверждена перекрестная антигенная активность БсАП. Практически все препараты выявляли антитела в антимикробной кроличьей сыво- ротке, полученной к 19F серотипу (табл. 1). Отмечено повышение титров антител в 8 раз к БсАП 10А серотипа, в 16 раз к БсАП серотипов 3 (штамм №3), 6В и 36, в 32 раза к БсАП серотипов 14, 19F и 23F (р≤0,05). Исключение составил препарат, выделенный из серотипа 3 (штамм №1156), который выявлял высокий титр антител в контроле. Антимикробная кроличья сыворотка, полученная к 14 серотипу, оказа- лась менее активной, в ней определяли повышение титра антител в 32 раза в гомоло- гичной системе и повышение титра антител в 4 раза к БсАП 19F (р≤0,05). При взаимодействии с моноклональными антителами к пневмолизину БсАП, выделенных из серотипов 19F и 36, наблюдалось повышение титров антител в 4 и 8 раз (табл. 1), соответственно, что свидетельствовало о наличии этого белка в БсАП серотипов 19F и 36. Белоксодержащие антигены пневмококка, полученные из серотипа 3, после двукратной иммунизации мышей с интервалом 14 дней защищали животных от за- ражения 8 LD50 S. pneumoniae серотипа 3 №3 в дозах от 10 до 100 мкг/мышь. Защита составила 80-90 %, а при использовании сорбированного варианта — 100 % выжив- ших (р≤0,05) при 90% гибели мышей в контроле. При большей заражающей дозе (25 LD50 S. pneumoniae) выявлена значимость добавления гидроксида алюминия. SDS-электрофорез БсАП в 12% ПААГ (А) и нитроцеллюлезная мембрана после иммуноблоттинга БсАП (Б). Концентрация БсАП в каждой дорожке составила 5 мг/мл. Дорожки: 1 — БсАП 3 №3; 2 — БсАП 3 №1156; 3 — БсАП 6В; 4 — БсАП 10А; 5 — БсАП 14; 6 — БсАП 19F; 7 — БсАП 36; 8 — маркер молекулярной массы. При иммунизации мышей БсАП в дозах 10 и 50 мкг/мышь защита составила 50% животных. Однако при использовании гидроксида алюминия все испытанные дозы создавали защиту на уровне 80-90% (р≤0,05). Контроль гидроксида алюминия пока- зал, что он не защищал мышей от заражения S. pneumoniae. На следующем этапе изучена протективная активность препаратов БсАП в го- мологичной и гетерологичной системах. Мышей иммунизировали двукратно анти- генами, полученными из S. pneumoniae серотипов 3 №3, 14 и 19F в дозе 30 мкг/мышь с добавлением гидроксида алюминия (табл. 2, опыт I). Полученные результаты сви- детельствовали, что все препараты защищали мышей от заражения S. pneumoniae серотипа 3 штамм №3 на 3 день после заражения, когда отмечалась 100% гибель животных в контроле. Подтвердилась высокая протективная активность БсАП се- ротипа 3 при заражении гомологичным серотипом. Среди БсАП других серотипов более активным оказался препарат серотипа 19F (80% выживших мышей), препарат из серотипа 14 защищал 60 % мышей. При наблюдении в течение 10 дней было вы- явлено, что гомологичный БсАП серотипа 3 защищал 100% мышей, гетерологичный БсАП, выделенный из серотипа 19F, защищал 70% животных (р≤0,05), животные, иммунизированные препаратом из серотипа 14, к этому сроку погибли. При увеличении дозы до 50 мкг/мышь в эксперименте выявлена перекрес- тная протективная активность препаратов БсАП, полученных из серотипов 6В, 10А, 14, 19F и 23F от заражения S. pneumoniae серотипа 3 №1156 (табл. 2, опыт II). Подтверждено, что гомологичный БсАП защищал 100% мышей при 90% гибели в контроле. Протективный эффект гетерологичных БсАП различался: препарат из се- ротипа 6В защищал 100% мышей, из серотипа 19F — 90%, а из серотипов 10А, 14 и 23F — 80% животных соответственно (р≤0,05). Смесь БсАП из серотипов 6В, 10А, 14, 19F и 23F в суммарной дозе 50 мкг также защищала 80% мышей (р≤0,05). Аналогичные данные получены при увеличении иммунизирующей дозы до 100 мкг/мышь (табл. 2, опыт III). Повторно изучена перекрестная протективная актив- ность препаратов БсАП, выделенных из серотипов 6В, 10А, 14, 19F, 23F и 36 от зара- жения S. pneumoniae серотипа 3 №1156. Белоксодержащие антигены пневмококка, выделенные из серотипа 3, защищали 90% мышей (р≤0,05), как и гетерологичные БсАП из серотипов 6В и 36 (р≤0,05). В группе животных, получавших препараты из серотипов 10А, 14, 19F и 23F, наблюдалась выживаемость от 60 до 70%, однако статистически значимой разницы между опытом и контролем в этих группах не вы- явлено. В контроле выжило 30 % мышей. В предварительных опытах по изучению активной защиты мышей исследова- на протективная активность БсАП в гомологичной системе. В качестве модельного штамма S. pneumoniae использовали штамм серотипа 3 №3, из которого выделя- ли БсАП и против которого проверяли способность препарата создавать защиту. Установлено, что препарат в иммунизирующих дозах 10, 50 и 100 мкг/мышь при различных заражающих дозах защищал животных от развития пневмококковой ин- фекции. В серии экспериментов на животных получены результаты, подтверждающие гетерологичную защиту. Белоксодержащий антиген пневмококка, полученный из серотипа 19F, защищал 70% мышей при заражении S. pneumoniae серотипа 3 штамм №3, в то время как БсАП, выделенный из серотипа 14, в этом же опы- те не защищал животных. Препараты БсАП, полученные из серотипов 6В, 10А, 14, 19F, 23F, защищали мышей от заражения гетерологичным штаммом №1156 S. pneumoniae серотипа 3. Защита составила 80-100%. Препараты, полученные из серотипов 6В и 36, защищали 90% животных при заражении S. pneumoniae сероти- па 3 штамм №1156, а БсАП, выделенные из серотипов 14 и 19F, обеспечивали вы- живаемость 70% мышей, что оказалось статистически не достоверным, поскольку в контроле выжило 30% животных. Очевидно, разница в результатах зависела от иммунизирующих и заражающих доз. Сорбция БсАП на гидрооксиде алюминия усиливала протективную активность в опытах по изучению гомологичной и гете- рологичной защиты. Эксперименты по определению перекрестной иммуногенной активности БсАП в реакции Оухтерлони и ИФА показали, что большинство препаратов (за исключе- нием БсАП серотипа 10А в реакции преципитации) реагировали с антимикробной кроличьей сывороткой, полученной к 19F серотипу S. pneumoniae. В ИФА с кро- личьей сывороткой, полученной к 14 серотипу S. pneumoniae, взаимодействовали только БсАП 14 и 19F серотипов. В целом, можно сказать, что полученные данные опытов in vitro подтверждаются результатами опытов in vivo. Таким образом, БсАП, выделенные из S. pneumoniae серотипов 6В, 10А, 19F и 36, можно рассматривать как наиболее перспективные для дальнейшего изучения протективной активности отдельных нативных белков, входящих в их состав. В мировой литературе описаны исследования по разработке эксперименталь- ных вакцин на основе рекомбинантных белков пневмококка [11], в частности, пнев- мококкового поверхностного белка А (PspA); пневмолизина (Ply); пневмококкового поверхностного антигена А (PsaA) и других. Поэтому представляет, несомненно, интерес факт обнаружения пневмолизина с помощью моноклональных антител в большинстве выделенных БсАП. Учитывая трудоемкость выделения очищенных нативных белков S. pneumoniae, в дальнейшем планируются работы по получению ключевых рекомбинантных белков для создания отечественной серотипнезависи- мой пневмококковой вакцины.

×

Об авторах

Д. С. Воробьев

НИИ вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова

Автор, ответственный за переписку.
Email: fake@neicon.ru
Москва Россия

И. Б. Семенова

НИИ вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова

Email: fake@neicon.ru
Москва Россия

Ю. В. Волох

НИИ вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова

Email: fake@neicon.ru
Москва Россия

Э. Р. Романенко

НИИ вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова

Email: fake@neicon.ru
Москва Россия

А. П. Батуро

НИИ вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова

Email: fake@neicon.ru
Москва Россия

Н. А. Михайлова

НИИ вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова

Email: fake@neicon.ru
Москва Россия

Список литературы

  1. Белошицкий Г.В., Королева И.С. Серотиповая характеристика штаммов S. pneumoniae в Москве. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2014, 1 (74): 90-97.
  2. Вишнякова Л.А., Резцова Ю.В., Сологуб Т.С. и др. Этиология острой пневмонии на фоне гриппа и других острых респираторных вирусных инфекций. Журн. микробиол. 1986, 8: 5-10.
  3. Воробьев Д.С., Семенова И.Б., Курбатова Е.А. Белки Streptococcus pneumoniae: перспективы создания вакцины против пневмококковой инфекции. Журн. микробиол. 2010, 6: 98-104.
  4. Гланц С.А. Медико-биологическая статистика. М., Практика 1999.
  5. Костинов М.П., Андреева Н.П., Петрова Т.И. Клиническая и эпидемиологическая эффективность вакцинопрофилактики пневмококковой инфекции у детей. Эпидемиология и инфекционные болезни. 2013, 3: 45-52.
  6. Костюкова Н.Н., Бехало В.А. Факторы патогенности пневмококка и их протективные свойства. Журн. микробиол. 2014, 3:67-77.
  7. Харит С.М. Пневмококковые вакцины. Вакцины и вакцинация. Под ред. В.В. Зверева, Б.Ф. Семенова, Р.М. Хаитова. М., ГЭОТАР-Медиа, 2011.
  8. Ястребова Н.Е., Ванеева Н.П., Демин А.А. и др. Иммуноферментный анализ антител к нативной и денатурированной ДНК. Иммунология. 1987, 5: 73-75.
  9. Chen A., Mann B., Gao G. et al. Multivalent pneumococcal protein vaccines comprising pneumolysoid with epitopes/fragments of CbpA and/or PspA elicit strong and broad protection. Clin. Vaccine Immunol. 2015, 22 (10): 1079-89.
  10. Dubois K.,Gillers K., Hamilton J. et al. Colorimetric method for the determination of sugars and related substances. Anal. Chem. 1956, 28 (3): 350-356.
  11. Feldman C., Anderson R. Review: Current and new generation pneumococcal vaccines. J. Infect. 2014, 69 (4): 309-325.
  12. Laemmli U.K. Cleavage of structural proteins during the assembly of head of bacteriophage T4. Nature. 1970, 227: 680-685.
  13. Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L., Randall R.J. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J. Biol. Chem. 1951, 193: 265-275.
  14. Tarahomjoo S. Recent approaches in vaccine development against Streptococcus pneumoniae. J. Mol. Microbiol. Biotechnol. 2014, 24 (4): 215-27.
  15. Weiser J.N., Ferreira D.M., Paton J.C. Streptococcus pneumoniae: transmission, colonization and invasion. Nat. Rev. Microbiol. 2018, 16 (6): 355-367.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
2. Рисунок


© Воробьев Д.С., Семенова И.Б., Волох Ю.В., Романенко Э.Р., Батуро А.П., Михайлова Н.А., 2019

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС77-75442 от 01.04.2019 г.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах