ВЛИЯНИЕ МИКРОФЛОРЫ ЖКТ НА ОЖИРЕНИЕ. ПРИМЕНЕНИЕ ПРОБИОТИКОВ КАК ЛЕКАРСТВЕННЫХ СРЕДСТВ

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

В настоящее время проблема излишнего веса и ожирения, согласно данным ВОЗ, получает распространение не только в странах с большим уровнем дохода, но и во всех остальных. Такая ситуация вызывает беспокойство и заставляет ученый мир рассматривать ожирение со всех сторон, вовлекая в изучение этой проблемы специалистов всех областей. Микробном человека является его неотъемлемой частью. Однако его энергетической функции до недавнего времени придавалось небольшое значение. Его участие в обмене короткоцепочечных жирных кислот (КЖК) играет ключевую роль в энергетическом обмене энтероцитов, обеспечивая 70% энергии, в общем же метаболизме около 10% энергии синтезируется из КЖК. Короткоцепочечные жирные кислоты также влияют на активность аденозинмонофосфат-зависимой протеинкиназы, стимулируют выработку лептина, участвуют в синтезе холестерола. Микробном регулирует синтез глюкагон-подобного пептида, обладающего контринсулярным эффектом, правильный состав микробиома позволяет снизить уровень неспецифического воспаления; бифидо- и лактобациллы синтезируют изомеры линолевой кислоты, которые обладают противовоспалительным действием. В данной работе рассматривается целесообразность применения про-, пре- и эубиотических препаратов для лечения ожирения, а также состояний, которые могут осложнять его течение (атеросклероз, гипертония, депрессия).

Об авторах

А. М. Карамзин

Первый московский государственный медицинский университет им. И.М.Сеченова

Автор, ответственный за переписку.
Email: noemail@neicon.ru
Россия

Н. М. Терешин

Первый московский государственный медицинский университет им. И.М.Сеченова

Email: noemail@neicon.ru
Россия

Список литературы

  1. Ерофеев Н.П., Радченко В.Г., Селиверстов П.В. Клиническая физиология толстой кишки. Механизмы действия коротко-цепочечных жирных кислот в норме и при патологии. Монография. СПб, Форте Принт, 2012.
  2. Bergman Е. N. Energy contributions of volatile fatty acids from the gastrointestinal tract in various species. Physiological Reviews. 2009, 70: 567-590.
  3. den Besten G., Bleeker A., Gerding A. et al. Short-chain fatty acids protect against high-fat diet-induced obesity via a PPARy-dependent switch from lipogenesis to fat oxidation. American Diabetes Association. Diabetes. 2015, 64 (7): 2398-2408.
  4. Bindels L.B., Neyrinck A.M., Salazar N. et al. Non digestible oligosaccharides modulate the gut microbiota to control the development of leukemia and associated cachexia in mice. PLoS One. 2015,10(6): 1-16.
  5. Bloemen J.G., Venema K., van de Poll M.C. et al. Short chain fatty acids exchange across the gut and liver in humans measured at surgery. Clinical Nutrition. 2009, 28 (6): 657-661.
  6. Cani P.D., Amar J., Iglesias M.A. et al. Metabolic endotoxemia initiates obesity and insulin resistance. Diabetes. 2007, 56 (7): 1761-1772.
  7. Cani P.D., Bibiloni R., Knauf C. et al. Changes in gut microbiota control metabolic endotoxemia-induced inflammation in high-fat diet-induced obesity and diabetes in mice. Diabetes. 2008, 57 (6): 1470-1481.
  8. Cani P.D., Possemiers S. et al. Changes in gut microbiota control inflammation in obese mice through a mechanism involving GLP-2-driven improvement of gut permeability. Gut. 2009, 58:1091-1103.
  9. Chang P.V., Hao L., Offermanns S. et al. The microbial metabolite butyrate regulates intestinal macrophage function via histone deacetylase inhibition. PNAS. 2014, 6: 2247-2252.
  10. Dahlqvist G., Piessevaux H. Irritable bowel syndrome: the role of the intestinal microbiota, pathogenesis and therapeutic targets. Acta Gastroenterologica Belgica. 2011, 74 (3): 75-80.
  11. Federico A., Dallio M., Tolone S. et al. Gastrointestinal hormones, intestinal microbiota and metabolic homeostasis in obese patients: Effect of bariatric surgery. In Vivo. 2016, 30(3):321-330.
  12. Gomes A.C., Bueno A.A., de Souza R.G. et al. Gut microbiota, probiotics and diabetes. Nutrition Journal. 2014, 13: 60:1-14.
  13. HangS., KokoevaM.V., Inouye K. etal. TLR4 links innate immunity and fatty acid-induced insulin resistance. Journal Clinical Investigation. 2006, 116 (11): 3015-3025.
  14. Hooper L.V., Midtvedt T., Gordon J.I. How host-microbial interactions shape the nutrient environment of the mammalian intestine. Annual Review Nutrition. 2002, 22: 283-307.
  15. Jordan K.W., Nordenstam J., Lauwers G.Y. et al. Metabolomic characterization of human rectal adenocarcinoma with intact tissue magnetic resonance spectroscopy. Diseases Colon Rectum. 2009, 52 (3): 520-525.
  16. Karlsson F.H., Fak E., Nookaew I. et al. Symptomatic atherosclerosis is associated with an altered gut metagenome. Nature Communications. 2012, 1245:1-8.
  17. Knowles S.E., Jarrett I.G., Filsell O.H. et al. Production and utilization of acetate in mammals. Biochemical Journal. 1974,142 (2): 401-411.
  18. Kuvaeva I.B., Orlova N.G., Veselova O.L. et al. Microecology of the gastrointestinal tract and the immunological status under food allergy. Die Nahrung. 1984, 28 (6-7): 689-693.
  19. Louis P., Young P., Holtrop G. et al. Diversity of human colonic butyrate-producing bacteria revealed by analysis of the butyryl-CoA:Acetate CoA-transferase gene. Environmental Microbiology. 2010,12 (2): 304-314.
  20. Louis P., Hold G.L., Flint H.J. The gut microbiota, bacterial metabolites and colorectal cancer. Nature Reviews Microbiology. 2014,12:661-672.
  21. Maqsood R., Stone T.W. The gut-brain axis, BDNF, NMDA and CN S disorders. Neurochemical Research. 2016,41: 2819-2835.
  22. Mondot S., Kang S., Furet J.P. et al. Highlighting new phylogenetic specificities of Crohn's disease microbiota. Inflammatory Bowel Diseases. 2011, 17:185-192.
  23. Morris G., Berk M., Carvalho A.F. et al. The role of microbiota and intestinal permeability in the pathophysiology of autoimmune and neuroimmune processes with an emphasis on inflammatory bowel disease type 1 diabetes and chronic fatigue syndrome. Current Pharmaceutical Design. 2016, 22 (22): 3303-3304.
  24. Natarajan N., Hori D., Flavahan S. et al. Microbial short chain fatty acid metabolites lower blood pressure via endothelial G-protein coupled receptor 41. Physiological Genomics Published. 2016,11: 826-834.
  25. Newgard C.B., An J., Bain J.R. et al. Abranched-chain amino acid-related metabolic signature that differentiates obese and lean humans and contributes to insulin resistance. Cell Metabolism. 2009,9 (4): 311-326.
  26. Nishikawa J., Kudo T, Sakata S. et al. Diversity of mucosa-associated microbiota in active and inactive ulcerative colitis. Scandinavian Journal Gastroenterology. 2009, 44 (2): 180-186.
  27. Reichardt N., Duncan S.H., Young P. et al. Phylogenetic distribution of three pathways for propionate production within the human gut microbiota. ISME Journal. 2014, 8: 13231335.
  28. Ridaura V.K., Faith J.J., Rey F.E. et al. Gut microbiota from twins discordant for obesity modulate metabolism in mice. Science. 2013, 341 (6150).
  29. Roediger W.E. Utilization of nutrients by isolated epithelial cells of the rat colon. Gastroenterology. 1982, 83 (2): 424-429.
  30. Terpstra A.H.M. Effect of conjugated linoleic acid on body composition and plasma lipids in humans: an overview of the literature. American Society for Clinical Nutrition. 2004, 3: 352361.
  31. Tian P., LiB., He CZ.et al. Antidiabetic (type 2)effects of Lactobacilius G15 and Q14 in rats through regulation of intestinal permeability and microbiota. Food Function. 2016, 7:37893797.
  32. Wen L., Ley R.E.,Vokhkov P.Y. etal. Innate immunity and intestinal microbiota in the development of type 1 diabetes. Nature. 2008,455 (7216): 1109-1113.
  33. Wichmann A., Allahyar A., Greiner T.U. et al. Microbial modulation of energy availability in the colon regulates intestinal transit. Cell Host Microbe. 2013, 14: 582-590.
  34. Yamashita H., Fujisawa K., Ito E. et al. Improvement of obesity and glucose tolerance by acetate in type 2 diabetic otsuka long-evans tokushima fatty (OLETF) rats. Bioscience Biotechnology Biochemistry 2007,71 (5): 1236-1243.
  35. Zaibi M.S., Stooker C.J., O’Dowd J. et al. Roles oo GPR44 annGPR43 inn epeinrec(etofy responses of murine adipocytes to short chain fatty acids. FEBS Letters. 2010,584(11): 23812386.
  36. Ze X., Duncan S.H., Louis P. et al. Ruminocfccus bromii is a keystone species for the degradation of resistant starch in the human colon. ISME Journal. 2012, 6:1535-1543.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Карамзин А.М., Терешин Н.М., 2018

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС77-75442 от 01.04.2019 г.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах