ПРОТОЧНО-ЦИТОФЛУОРИМЕТРИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ ЦИТОТОКСИЧНОСТИ ШТАММОВ YERSINIA PESTIS

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Цель. Изучение дитотоксического воздействия штаммов Yersinia pestis с различной степенью вирулентности на лейкоциты цельной дефибринированной крови человека. Материалы и методы. В работе использовано 15 штаммов Y. pestis. ДНК-гистограммы регистрировали с помощью проточного цитофлуориметра. Результаты. Экспериментально обоснована возможность использования показателя цитотоксичности для дифференциации штаммов Y. pestis на вирулентные и авирулентные. Полученные данные сопоставимы с показателем LD5o для мышей и не противоречат молекулярно-генетическим характеристикам штаммов. Заключение. Предлагаемый подход позволяет получать достоверные результаты и является перспективным для оценки вирулентности штаммов Y. pestis.

Об авторах

Е. В. Сазанова

Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб»

Автор, ответственный за переписку.
Email: noemail@neicon.ru
Россия

Т. П. Шмелькова

Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб»

Email: noemail@neicon.ru
Россия

А. Л. Кравцов

Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб»

Email: noemail@neicon.ru
Россия

Т. А. Малюкова

Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб»

Email: noemail@neicon.ru
Россия

Ю. А. Попов

Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб»

Email: noemail@neicon.ru
Россия

Список литературы

  1. Козинец Г.И., Высоцкий В.В., Погорелов В.М., Еровиченков А.А., Малов В.А. Кровь и инфекция. М., Триада-Фарм, 2001.
  2. Кравцов А.Л., Пилипенко Т.Ю., Коровкин С.А., Наумов А.В. Способ оценки фагоцитоза. А.с. 1522923 СССР, МКИ G 01 № 33/53. № 4014143. Изобретения. 1994, 4: 187.
  3. Лабораторная диагностика опасных инфекционных болезней. Практическое руководство. Г.Г.Онишенко, В.В. Кутырев (ред.). М., Шико, 2013.
  4. Порядок организации и проведения лабораторной диагностики чумы для лабораторий территориального, регионального и федерального уровней. Методические указания. МУК 4.2.2940-11.
  5. Пустовалов В.Л., Васильева Г.И., Киселева A.K. Устойчивость к фагоцитозу штаммов чумного микроба в зависимости от температуры культивирования. Вопросы профилактики природноочаговых инфекций. Саратов, 1983, с. 16-21.
  6. Хайдуков С.В., Зурочка А.В. Вопросы современной проточной цитометрии. Клиническое применение. Изд-во Челябинская государственная медицинская академия, Челябинск. 2008. /
  7. ШмельковаТ.П., Кравцов А.Л, ЩуковскаяТ.Н., ЛяпинМ.Н., Костюкова Т.А., Малюкова Т.А., Головко Е.М., Видяева Н.А., Коннов Н.П. Влияние биологических свойств чумного микроба на развитие апоптоза лейкоцитов крови человека в системе in vitro. Проблемы особо опасных инфекций. 2007, 1: 85-89.
  8. Шмелькова Т.П., Сазанова Е.В., Кравцов А.Л., Малюкова Т.А., Попов Ю.А., Бойко А.В. Девдариани З.Л., Щуковская Т.Н. Определение вирулентных свойств патогенных микроорганизмов in vitro: состояние вопроса. Жури, микробиол. 2016, 6: 100-110.
  9. Bashaw J., Norris S., Weeks S. et al. Development of in vitro correlate assay of immunity to infection with Yersinia pestis. Clin, And. Vaccine Immunology. 2007, 14 (5): 605-616.
  10. Bubeck S.S., Cantwell A.M., Dube P.H. Delayed inflammatory response to primary pneumonic plague occurs in both outbred and inbred mice. Infection and Immunity. 2007, 75 (2): 697-705.
  11. Kravtsov A.L., Grebenyukova T.P., Bobyleva E.V. et al. Flow cytofluorometric assay of whole blood leukocyte DNA degradation in response to Yersinia pestis and Staphylococcus aureus. Proceedings ofSPIE. 2001, 4241: 260-267.
  12. Parrino J., Hotchkiss R.S., BrayM. Preventation of immunecell apoptosis as potential therapeutic strategy for severe infections. Emerg. Infect. Dis. 2007, 13 (2): 191-198.
  13. Silva T.M. et al. Secondary necrosis in multicellular animals: an outcome of apoptosis with pathogenic implications. Apoptosis. 2008, 13: 463-482.
  14. Silva T.M. Bacteria-induced phagocyte secondary necrosis as a pathogenicity mechanism. J. Leuk. Biology. 2010, 88 (5): 885-896.
  15. Spinner J.L., Seo K.S., O’Loughlin J.L. et al. Neutrophils are resistant to Yersinia YopJ/P-induced apoptosis and are protected from ROS-mediated cell death by the type III secretion system. PLoS ONE. 2010. 5(2): e9279. doi: 10.1371/journal.pone. 0009279.
  16. Spinner J.L., Cundiff J.A., Kobayashi S.D. Yersinia pestis type III secrenion system-dependent inhibition of human polymorphonuclear leukocyte function. Infect. Immunity. 2008, 76 (8): 3754-3760.
  17. Zhang Y, Bliska B. Role of macrophage apoptosis in the pathogenesis of Yersinia. Curr. Top. Microb. Immunol. 2005, 289: 151-174.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Сазанова Е.В., Шмелькова Т.П., Кравцов А.Л., Малюкова Т.А., Попов Ю.А., 2017

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС77-75442 от 01.04.2019 г.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах