ИНДУКЦИЯ И ЗАЩИТНЫЕ СВОЙСТВА АНТИТЕЛ К МУРАМИЛПЕПТИДАМ ГРАМОТРИЦАТЕЛЬНЫХ БАКТЕРИЙ
- Авторы: Пащенков М.В1, Пак В.Г1, Алхазова Б.И1, Львов В.Л1, Пинегин Б.В1
-
Учреждения:
- ГНЦ - Институт иммунологии, Москва
- Выпуск: Том 90, № 2 (2013)
- Страницы: 64-73
- Раздел: Статьи
- Дата подачи: 09.06.2023
- Дата публикации: 15.04.2013
- URL: https://microbiol.crie.ru/jour/article/view/13817
- ID: 13817
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Цель. Охарактеризовать роль гуморального иммунного ответа в механизмах действия мурамилпептидных иммуностимуляторов. Материалы и методы. Мышей иммунизировали комплексом мурамилпептидов (КМП), полученным из пептидогликана Salmonella typhi и состоящим из трех компонентов: 1) ацетил-глюкозаминил-(β1→4)-ацетил-мурамоил-L-аланил-D-изоглютаминил-мезо-диаминопимелиновой кислоты (ГМтри); 2) ацетил-глюкозаминил-(β1→4)-ацетил-мурамоил-аланил-D-изоглютаминил-мезо-диаминопимелоил-D-аланина (ГМтетра) и 3) димера ГМтетра (диГМтетра), в котором мономерные остатки ГМтетра соединены путем амидной связи между карбоксильной группой терминального D -аланина одного остатка ГМтетра и ω-аминогруппой мезо-диаминопимелиновой кислоты другого остатка ГМтетра. Результаты. Иммунизация приводила к многократному повышению титров IgM, IgG1 и IgG2a к КМП. Антитела (АТ) были направлены против цельной молекулы диГМтетра и не распознавали ее фрагменты. Сыворотки мышей, иммунизированных КМП, защищали мышей от летальной инфекции грамо-трицательным (S. typhimurium), но не грамположительным (Staphylococcus aureus) микроорганизмами. Заключение. Индукция защитных АТ может представлять собой новый механизм действия мурамилпептидных иммуностимуляторов.
Ключевые слова
Об авторах
М. В Пащенков
ГНЦ - Институт иммунологии, Москва
В. Г Пак
ГНЦ - Институт иммунологии, Москва
Б. И Алхазова
ГНЦ - Институт иммунологии, Москва
В. Л Львов
ГНЦ - Институт иммунологии, Москва
Б. В Пинегин
ГНЦ - Институт иммунологии, Москва
Список литературы
- Пащенков М.В., Попилюк С.Ф., Алхазова Б.И. и др. Иммунобиологические свойства мурамилпептидных фрагментов пептидогликана грамотрицательных бактерий. Иммунология. 2010, 31: 119-125.
- Пащенков М.В., Будихина А.С., Голубева Н.М. и др. Результаты I фазы клинических испытаний иммуномодулятора «Полимурамил». Иммунология. 2011, 32: 239-243.
- Пащенков М.В., Будихина А.С., Голубева Н.М. и др. Клиническая и иммунологическая эффективность иммуномодулятора Полимурамил при гнойной хирургической инфекции. Физиология и патология иммунной системы. Иммунофармакогеномика. 2011, 15: 12-18.
- Azuma I. Development of the cytokine inducer romurtide: experimental studies and clinical application. Trends Pharmacol Sci. 1992, 13: 425-428.
- Capparelli R., Nocerino N., Medaglia C. et al. The Staphylococcus aureus peptidoglycan protects mice against the pathogen and eradicates experimentally induced infection. PLoS One. 2011, 6: e28377.
- Chamaillard M., Hashimoto M., Horie Y. et al. An essential role for NOD1 in host recognition ofbacterial peptidoglycan containing diaminopimelic acid. Nat. Immunol. 2003,4:702-707.
- Dziarski R., Gupta D. Staphylococcus aureus peptidoglycan is a toll-like receptor 2 activator: a reevaluation. Infect. Immun. 2005, 73: 5212-5216.
- Ellouz F., Adam A., Ciorbaru R. et al. Minimal structural requirements for adjuvant activity ofbacterial peptidoglycan derivatives. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1974, 59:1317-1325.
- Franken N., Seidl P.H., Kuchenbauer T. et al. Specific immunoglobulin A antibodies to a peptide subunit sequence ofbacterial cell wall peptidoglycan. Infect. Immun. 1984, 44: 182-187.
- Franken N., Seidl P.H., Zauner E. et al. Quantitative determination of human IgG antibodies to the peptide subunit determinant of peptidoglycan by an enzyme-linked immunosorbent assay. Mol. Immunol. 1985, 22: 573-579.
- Fritz J.H., Le Bourhis L., Sellge G. et al. Nod1-mediated innate immune recognition of peptidoglycan contributes to the onset of adaptive immunity. Immunity. 2007, 26: 445-459.
- Girardin S.E., Boneca I.G., Viala J. et al. Nod2 is a general sensor of peptidoglycan through muramyl dipeptide (MDP) detection. J. Biol. Chem. 2003, 278: 88698872.
- Hardy R.R. B-1 B cells: development, selection, natural autoantibody and leukemia. Curr Opin. Immunol. 2006, 18: 547-555.
- Magalhaes J.G., Fritz J.H., Le Bourhis L. et al. Nod2-dependent Th2 polarization of antigen-specific immunity. J. Immunol. 2008, 181: 7925-7935.
- Martin F., Kearney J.F. B1 cells: similarities and differences with other B cell subsets. Curr. Opin. Immunol. 2001, 13: 195-201.
- Meshcheryakova E., Makarov E., Philpott D. et al. Evidence for correlation between the intensities of adjuvant effects and NOD2 activation by monomeric, dimeric and lipophylic derivatives of N-acetylglucosaminyl-N-acetylmuramyl peptides. Vaccine. 2007, 25:4515-4520.
- Nardin A., Lefebvre M.L., Labroquere K. et al. Liposomal muramyl tripeptide phos-phatidylethanolamine: Targeting and activating macrophages for adjuvant treatment of osteosarcoma. Curr. Cancer Drug Targets. 2006, 6: 123-133.
- Pashenkov M.V., Popilyuk S.F., Alkhazova B.I. et al. Muropeptides trigger distinct activation profiles in macrophages and dendritic cells. Int. Immunopharmacol. 2010, 10: 875-882.
- Pinegin B.V., Kulakov A.V., Makarov E.A. et al. The occurrence of natural antibodies to minimal component of bacterial cell wall (N-acetylglucosaminyl-N-acetylmuramyl dipeptide) in sera from healthy humans. Immunol. Lett. 1995, 47: 33-37.
- Schleifer K.H., Kandler O. Peptidoglycan types of bacterial cell walls and their taxonomic implications. Bacteriol. Rev. 1972, 36: 407-477.
- Wergeland H.I., Endresen C. Antibodies to various bacterial cell wall peptidoglycans in human and rabbit sera. J. Clin. Microbiol. 1987, 25: 540-545.
- Zeiger A.R., Tuazon C.U., Sheagren J.N. Antibody levels to bacterial peptidoglycan in human sera during the time course ofendocarditis and bacteremic infections caused by Staphylococcus aureus. Infect. Immun. 1981, 33: 795-800.