Отправить статью по E-mail ВЛИЯНИЕ ЭКЗОМЕТАБОЛИТОВ PSEUDOMONAS AERUGINOSA НА ПЛАНКТОННЫЕ ИПЛЕНОЧНЫЕ КУЛЬТУРЫ ESCHERICHIA COLI
- Авторы: Кузнецова МВ1, Карпунина ТИ2, Масленникова ИЛ3, Нестерова ЛЮ3, Демаков ВА3, Kuznetsova MV4, Karpunina TI4, Maslennikova IL4, Nesterova LY.4, Demakov VA4
-
Учреждения:
- Институт экологии и генетики микроорганизмов, ПермьПермская государственная медицинская академия
- Пермская государственная медицинская академия
- Институт экологии и генетики микроорганизмов, Пермь
- Выпуск: Том 89, № 6 (2012)
- Страницы: 17-22
- Раздел: Статьи
- URL: https://microbiol.crie.ru/jour/article/view/13698
- ID: 13698
Цитировать
Полный текст
Аннотация
биолюминесцентного штамма E. coli. Материалы и методы. Использовали рекомбинантный биолюминесцентный штамм E. coli K12 TG1 (pF1 lux+ Apr), референс-штамм P. aeruginosa АТСС 27853
и 2 нозокомиальных изолята. Содержание пиоцианина и пиовердина в супернатантах ночных культур P. aeruginosa оценивали согласно E. Deziel et al. (2001). Планктонные и пленочные культуры E.
coli получали в 96-луночных планшетах (LB, статически, 37С), оптическую плотность планктона,
биомассу пленки (ОП600, ОП580) и биолюминесценцию в планктоне и пленке оценивали на микропланшетном ридере Infiniti M200 (Tecan, Австрия). Результаты. Экзометаболиты P. aeruginosa
увеличивали длительность лаг-фазы E. coli, а в короткие сроки экспозиции ингибировали свечение
планктонных клеток. Данные эффекты обеспечиваются бактерицидным действием пиоцианина и
пиовердина. Супернатанты ночных культур P. aeruginosa ингибируют формирование биопленки и
разрушают сформированную биопленку E. coli. Влияние пиоцианина и пиовердина на эти процессы не доказано, по-видимому, в них большую значимость имеют другие факторы. Заключение.
Биолюминесцен ция E. coli K12 TG1, отражающая энергетический статус клетки, дает возможность
оценить и прог нозировать характер совместного существования P. aeruginosa в составе смешанной
с E. coli планктонной и пленочной культуры.
Ключевые слова
Об авторах
М В Кузнецова
Институт экологии и генетики микроорганизмов, ПермьПермская государственная медицинская академияИнститут экологии и генетики микроорганизмов, ПермьПермская государственная медицинская академия
Т И Карпунина
Пермская государственная медицинская академияПермская государственная медицинская академия
И Л Масленникова
Институт экологии и генетики микроорганизмов, ПермьИнститут экологии и генетики микроорганизмов, Пермь
Л Ю Нестерова
Институт экологии и генетики микроорганизмов, ПермьИнститут экологии и генетики микроорганизмов, Пермь
В А Демаков
Институт экологии и генетики микроорганизмов, ПермьИнститут экологии и генетики микроорганизмов, Пермь
M V Kuznetsova
T I Karpunina
I L Maslennikova
L Yu Nesterova
V A Demakov
Список литературы
- Бухарин О.В., Лобакова Е.С., Немцева Н.В., Черкасов С.В. Ассоциативный симбиоз. Екатеринбург, УрО РАН, 2007.
- Данилов В.С., Зарубина А.П., Ерошникова Г.Е. и др. Сенсорные биолюминесцентные системы на основе lux-оперонов разных видов люминесцентных бактерий. Вестник МГУ. Серия 16. Биология. 2002, 3: 20-24.
- Николаев Ю.А., Проссер Дж.И. Свойства адгезина и антиадгезина Pseudomonas fluorescens. Микробиология. 2000, 69 (2): 237-242.
- Davies D.G., Marques C.N. A fatty acid messenger is responsible for inducing dispersion in microbial biofilms. J. Bacteriol. 2009, 191: 1393-1403.
- Deziel E., Comeau Y., Villemur R. Initiation of biofilm formation by Pseudomonas aeruginosa 57RP correlates with emergence of hyperpiliated and highly adherent phenotypic variants deficient in swimming, swarming, and twitching motilities. J. Bacteriol. 2001, 183 (4): 1195-1204.
- Irie Y., O'Toole G.A., Yuk M.H. Pseudomonas aeruginosa rhamnolipids disperse Bordetella bronchiseptica biofilms. FEMS Microbiol. Lett. 2005, 250: 237-243.
- Li Z., Wang X., Guo Y., Zhao J. Inhibitory action of metabolites of Pseudomonas aeruginosa against gram-negative bacteria. J. Jap. Ass. Infect. Dis.1995, 69 (8): 924-927.
- Lopes S.P., Machado I.M., Pereira M.O. Role of planktonic and sessile extracellular metabolic byproducts on Pseudomonas aeruginosa and Escherichia coli intra and interspecies relationships. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 2011, 38 (1): 133-140.
- Naves P., del Prado G., Huelves L. et al. Correlation between virulence factors and in vitro biofilm formation by Escherichia coli. Microb. Pathog. 2008, 45: 86-91.
- O`Toole G.A., Kaplan H.B., Kolter R. Biofilm formation as microbial development. Ann. Rev. Microbiol. 2000, 54: 49-79.
- Parveen A., Smith G., Salisbury V., Nelson S.M. Biofilm culture of Pseudomonas aeruginosa expressing lux genes as a model to study susceptibility to antimicrobials. FEMS Microbiol. Lett. 2001, 199 (1): 115-118.
- Simon L., Fremaux C., Cenatiempo Y. et al. Luminescent method for the detection of antibacterial activities. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2001, 57 (5-6): 757-763.
- Smith V.H. Effects of resource supplies on the structure and function of microbial communities. Antonie Van Leeuwenhoek. 2002, 81: 99-106.
- Valle J., Da Re S., Henry N. et al. Broad-spectrum biofilm inhibition by a secreted bacterial polysaccharide. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2006, 103: 12558-12563.
- Watanabe B.K., Sakai Y., Takezaki T., Ogawa A. Bacterial interference in mixed infection in the rat. Urologia Internationalis. 1988, 43(1): 2-6.
- Williams J.S. Characterization of bioactive secondary metabolites from Pseudomonas aeruginosa and Porocentrum species. Submitted to the University of North Carolina Wilmington in Partial Fulfillment of the Requirements for the Degree of Master of Science. 2003.
Дополнительные файлы
