Взаимосвязь чувствительности Candida albicans к антимикотическим препаратам с архитектурой их сообщества в ротоглотке ВИЧ-инфицированных пациентов

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Актуальность. Кандидозная инфекция сохраняет свою актуальность в связи с широким распространением резистентных к антимикотическим препаратам штаммов грибов рода Candida, особенно среди иммунокомпрометированных лиц. Ранее было обнаружено, что сообщество грибов Candida spp. в биотопе ротоглотки ВИЧ-инфицированных пациентов отличает определённая архитектура: они могут присутствовать в данном биотопе в виде монокультуры или ассоциации коизолятов. Предположили, что архитектура сообщества кандид может влиять на их устойчивость к антимикотическим препаратам.

Цель работы — сравнительное исследование взаимосвязи архитектуры сообщества C. albicans в ротоглотке ВИЧ-инфицированных пациентов с орофарингеальным кандидозом и их чувствительности к антимикотическим препаратам.

Материалы и методы. Проведено микробиологическое исследование 52 изолятов грибов рода Candida (C. albicans, C. glabrata, C. tropicalis и C. krusei) из ротоглотки 31 ВИЧ-инфицированного пациента (возраст 20–69 лет, практически равное гендерное распределение) с клиническими проявлениями орофарингеального кандидоза. В форме монокультур были выделены 18 изолятов, а также 34 коизолята, которые образовали 16 гомогенных ассоциаций, включающих штаммы только одного вида, и 18 — гетерогенных, состоящих из грибов различных видов.

Результаты. Установили, что C. albicans, формирующие гетерогенные ассоциации, заметно выделялись по чувствительности к антимикотическим препаратам, в частности, низкой чувствительностью к имидазолам. Штаммы, компоненты гомогенных ассоциаций практически не отличались от монокультурных. Общие свойства популяции C. non-albicans были во многом сходны с таковыми C. albicans, но она характеризовалась более низкой гетерогенностью по чувствительности к антимикотическим препаратам.

Заключение. Архитектура сообщества грибов рода Candida, выделенных из ротоглотки ВИЧ-инфицированных пациентов с клиническими проявлениями орофарингеального кандидоза, влияет на их чувствительность к антимикотическим препаратам. При подборе эффективной антимикотической терапии для таких пациентов необходимо учитывать структуру сообщества Candida spp. в ротоглотке.

Полный текст

Введение

Кандидоз — распространённое патологическое состояние, вызываемое дрожжеподобными грибами рода Candida. Несмотря на достижения современной медицины, проблемы, связанные с этой инфекцией, сохраняют свою актуальность [1]. Чаще всего кандидозы выступают как проявление дисбиозов различной этиологии [2, 3]. Однако в настоящее время наибольшее беспокойство представляет кандидозное осложнение основного заболевания, особенно среди иммунокомпрометированных лиц, число которых неуклонно растёт [4–11]. Этиологический фактор кандидоза — прокариотический условно-патогенный микроорганизм рода Candida, представленный почти 200 видами. Среди них наиболее распространённым в популяции людей является C. albicans [12].

Достаточно часто Candida spp. высеваются от пациентов в виде монокультуры одного вида, однако при ряде состояний было отмечено параллельное присутствие в биотопе нескольких видов или штаммов данных грибов [6, 8, 13, 14]. В ходе целенаправленного микробиологического исследования слизистых ВИЧ-инфицированных пациентов с клиническими признаками орофарингеального кандидоза мы подтвердили данный факт [15]. Вместе с тем было обнаружено, что сообщество грибов Candida spp. в биотопе ротоглотки отличает упорядоченность структуры, т.е. определённая архитектура: они могут присутствовать в данном биотопе в виде монокультуры или ассоциации коизолятов. Последние могут быть не только гетерогенными, состоящими из грибов различных видов, но и гомогенными, включающими различные штаммы одного вида.

В недавних научных публикациях делается особый акцент на структуру микробных сообществ внутренних биотопов тела человека, архитектура которых связана с патогенезом патологических процессов [16, 17]. Учитывая неуклонно расширяющееся распространение резистентности к антимикотическим препаратам среди грибов рода Candida [18–24], мы предположили, что устойчивость кандид к этим лекарственным средствам может быть ассоциирована с архитектурой их сообщества.

Цель работы — сравнительное исследование взаимосвязи архитектуры сообщества C. albicans и их чувствительности к антимикотическим препаратам в ротоглотке ВИЧ-инфицированных пациентов с клиническими проявлениями орофарингеального кандидоза.

Материалы и методы

Проведено микробиологическое исследование грибов рода Candida, выделенных из ротоглотки 31 ВИЧ-инфицированного пациента (51,6% — мужчины, 48,4% — женщины) в возрасте 20–69 лет с клиническими проявлениями орофарингеального кандидоза, находившихся на стационарном лечении в Клинической инфекционной больнице № 2 г. Москвы.

ВИЧ-инфекция у всех пациентов была диагностирована на основании клинико-эпидемиологических данных и подтверждена обнаружением специфических антител/антигенов методом иммуноферментного анализа и лизатного иммуноблоттинга к белкам вируса иммунодефицита человека («Profiblot 48 TECAN», «АвтоБлот 3000») в соответствии с клинической классификацией ВИЧ-инфекции по В.И. Покровскому (2001) в модификации 2006 г.1 У всех обследованных лиц было получено добровольное информированное согласие на использование данных лабораторных анализов в научных целях. Протокол исследование одобрен Комитетом по этике при ГБОУ ВПО ЮУГМУ Минздрава России (протокол № 4 от 25.04.2014).

Выделение и идентификацию изолятов Candida spp. по морфологическим, тинкториальным, биохимическим и молекулярно-генетическим свойствам осуществляли в соответствии с общепринятыми методами микробиологической диагностики. Ферментативную активность оценивали с помощью коммерческих тест-систем («Remel», «Erba Lachema»). Генетические маркеры изолятов определяли в мультиплексной ПЦР с видоспецифическими праймерами («АмплиСенс®»). ПЦР проводили согласно методическим рекомендациям ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора2. Для выделения ДНК использовали наборы реагентов, рекомендованные ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора. Экстракцию ДНК из каждого клинического образца проводили в присутствии внутреннего контрольного образца (ВКО-FL). Амплификацию с флюоресцентной детекцией проводили в режиме реального времени с помощью комплекта реагентов «ПЦР-комплект» вариант FRT-100 F. Выделенные чистые культуры Candida spp. хранили на скошенном агаре Сабуро в пробирках при 4–6ºС.

Всего было получено 52 изолята грибов рода Candida, в том числе C. albicans, C. glabrata, C. tropicalis и C. krusei (табл. 1). В форме монокультур было выделено 18 изолятов, а также 34 коизолята, которые образовали 16 гомогенных ассоциаций, включающих штаммы только одного вида, и 18 — гетерогенных, состоящих из грибов различных видов. Для удобства анализа C. glabrata, C. tropicalis и C. krusei были объединены в группу C. non-albicans.

 

Таблица 1. Характеристика изолятов грибов рода Candida, выделенных из ротоглотки ВИЧ-инфицированных пациентов

Table 1. Characteristics of isolates of Candida spp. isolated from the oropharynx of HIV-infected patients

Виды грибов

Fungi species

Всего

Total

Монокультуры

Monocultures

Ассоциации | Communities

всего

total

гомогенные

homogeneous

гетерогенные

heterogeneous

абс. | abs.

%

абс. | abs.

%

абс. | abs.

%

абс. | abs.

%

C. albicans

30

8

26,7

22

73,3

16

53,3

6

20,0

C. non-albicans

22

10

45,5

12

54,5

0

0,0

12

54,5

в том числе | including

C. glabrata

11

7

63,6

4

36,4

0

0,0

4

36,4

C. tropicalis

6

3

50,0

3

50,0

0

0,0

3

50,0

C. krusei

5

0

0,0

5

100,0

0

0,0

5

100,0

Итого | Total

52

18

34,6

34

65,4

16

30,8

18

34,6

 

Чувствительность выделенных изолятов грибов рода Candida к антимикотическим препаратам определяли стандартным диско-диффузионным методом. Использовали бумажные диски («Oxoid») диаметром 6 мм, пропитанные антимикотическими препаратами, и плотную питательную среду Мюллера–Хинтона, содержащую 2% глюкозы и 0,5 мкг/мл красителя метиленового синего. В качестве инокулюма использовали суточные культуры исследуемых Candida spp. в концентрации 0,5 ЕД по McFarland. Посевы инкубировали при 35ºС 18–24 ч. Измеряли диаметр зоны задержки роста и оценивали культуры как чувствительные/резистентные к препаратам имидазолового (клотримазол, кетоконазол), триазолового (итраконазол, флуконазол) и полиенового (нистатин, амфотерицин В) рядов.

Результаты исследования подвергали стандартной статистической обработке с помощью программы «Statistica v. 6.0» («StatSoft»). Для сравнительного анализа применяли непараметрические методы Манна–Уитни и χ2. Критерием статистической достоверности различия получаемых данных считали общепринятую в биологии и медицине величину ошибки р < 0,05 [25].

Результаты

Среди изолятов C. albicans, выделенных в форме монокультуры, резистентность к триазолам экспрессировалась в 3,02 раза чаще (p < 0,01), чем к полиенам, и в 2,21 раза чаще (p < 0,05), чем к имидазолам (табл. 2). При этом имидазолы и полиены отличались по этой характеристике в 1,36 раза (p > 0,05). Монокультурные изоляты C. albicans были чувствительны к обоим полиеновым препаратам и клотримазолу (87,5–100,0%) и относительно устойчивы к триазолам, особенно к флуконазолу (25,0%).

 

Таблица 2. Доля чувствительных к антимикотическим препаратам штаммов в различных группах изолятов грибов рода Candida, %

Table 2. The percentage of sensitive to antimycotic drugs strains in different groups of Candida spp. isolates, %

Виды грибов

Fungi species

Форма

Form

Количество изолятов

Number of isolates

Имидазолы | Imidazoles

Триазолы | Triazoles

Полиены | Polyenes

клотримазол

clotrimazole

кетоконазол

ketoconazole

сумма по 2 препаратам

sum for 2 drugs

итраконазол

itraconazole

флуконазол

fluconazole

сумма по 2 препаратам

sum for 2 drugs

нистатин

nystatin

амфотерицин В

аmphotericin B

сумма по 2 препаратам

sum for 2 drugs

C. albicans

Монокультуры

Monocultures

8

87,5

50,0

68,8

37,5

25,0

31,1

100,0

87,5

93,8

Гомогенные ассоциации

Homogeneous communities

16

62,5

62,5

62,5

37,5

25,0

31,3

100,0

81,3

90,6

Гетерогенные ассоциации

Heterogeneous communities

6

16,7

33,3

25,0

16,7

16,7

16,7

83,3

50,0

66,7

C. non-albicans

Монокультуры

Monocultures

10

60,0

50,0

55,0

30,0

30,0

30,0

90,0

40,0

65,0

Гетерогенные ассоциации

Heterogeneous communities

12

50,0

41,7

45,8

66,7

16,7

41,7

75,0

66,7

70,8

 

Изоляты C. albicans, выделенные в форме гомогенных ассоциаций, чаще всего были чувствительны к препаратам полиенового ряда и реже — к триазолам, особенно флуконазолу. При этом чувствительность к полиенам в данной группе микробов встречалась в 1,45 раза чаще (p < 0,05), чем к имидазолам, а к триазолам — в 2,89 раза (p < 0,001). Количество штаммов, чувствительных к действию имидазолов, двукратно превосходило число чувствительных к триазолам (p < 0,05). Изоляты C. albicans этой формы микробного сообщества значимо не отличались по чувствительности к отдельным представителям тестированных фармакологических групп.

В группе C. albicans, выделенных в форме гетерогенных ассоциаций, отмечалась низкая экспрессия чувствительности к препаратам азолового ряда. Частота обнаружения штаммов, чувствительных к триазолам, была ниже, чем к полиенам, в 3,99 раза (p < 0,05), а к имидазолам — в 2,67 раза (p < 0,05). При этом имидазолы и триазолы практически не различались по эффективности.

Сравнительный анализ показал, что изоляты C. albicans, выделенные в форме гомогенных ассоциаций, не отличались от монокультурных по распространению чувствительности как к отдельным антимикотическим препаратам, так и к фармацевтическим группам. C. albicans, представители гетерогенных ассоциаций, отличались от монокультурных изолятов и компонентов гомогенных ассоциаций резким снижением чувствительности к имидазолам в целом (в 2,75 и 2,50 раза соответственно; p < 0,05), и в частности к клотримазолу (в 5,24 и 3,74 раза соответственно; p < 0,05).

Монокультурные штаммы C. non-albicans были высокочувствительны к полиенам, и в первую очередь к нистатину, а резистентны — к обоим триазоловым препаратам. Группа C. non-albicans, выделенная в форме гетерогенных ассоциаций, оказалась высокочувствительной к полиенам, и особенно к нистатину. Чувствительные к полиенам изоляты встречались в 1,55 раза чаще (p > 0,05), чем к имидазолам, и 1,70 (p < 0,05) — к триазолам. Эффекты имидазолов не отличались по данной характеристике от триазолов. Число изолятов, чувствительных к итраконазолу, было в 3,99 раза выше (p < 0,05), чем к флуконазолу.

Монокультурные штаммы C.non-albicans статистически значимо не отличались от компонентов гетерогенных ассоциаций по экспрессии резистентности к антимикотикам. Однако среди последних в 2,22 раза чаще встречались штаммы, чувствительные к итраконазолу, и 1,67 раза — к амфотерицину В, а также в 1,80 раза реже — чувствительные к флуконазолу (во всех случаях p > 0,05).

Монокультурные штаммы C. non-albicans в основном сохраняли тенденции, характерные для C. albicans. Однако штаммы C. non-albicans оказались в 2,19 раза реже чувствительны к амфотерицину В (p < 0,05). Для популяции C. non-albicans, компонентов гетерогенных ассоциаций, по сравнению с C. albicans аналогичной формы персистенции, было характерно почти трёхкратное повышение экспрессии чувствительности к клотримазолу (p < 0,05) и четырёхкратное — к итраконазолу (p < 0,05).

Обсуждение

Таким образом, в ходе исследования коллекции изолятов грибов рода Candida, выделенных из ротоглотки ВИЧ-инфицированных пациентов с клиническими проявлениями орофарингеального кандидоза, мы установили, что чувствительность C. albicans к антимикотическим препаратам зависит от архитектуры микробного сообщества. Так, среди грибов данного вида заметно выделялись компоненты гетерогенных ассоциаций. Их отличала низкая чувствительность к имидазолам, итраконозолу и амфотерицину В. В то же время в группе монокультурных изолятов доля резистентных к имидазолу штаммов была сопоставима с таковой к полиенам, а компоненты гомогенных ассоциаций практически не отличались от монокультурных.

Исследование, выполненное на группе C. non-albicans, взятой для сравнения, подтвердило зависимость чувствительности к антимикротическим препаратам от структуры микробного сообщества. Однако сопоставление популяций C. albicans и C. non-albicans по данной характеристике выявило их определённые различия. В частности, монокультурные изоляты C. non-albicans заметно чаще экспрессировали резистентность к амфотерицину В, а компоненты гетерогенных ассоциаций — чувствительность к клотримазолу и итраконазолу. Данные факты указывают на значимость архитектуры микробного сообщества грибов рода Candida в их межвидовой дифференциации. Между тем, общим для всех форм микробного сообщества как C. albicans, так и C. non-albicans, была высокая доля штаммов, резистентных к флуконазолу. В целом популяция C. albicans характеризовалась более высокой гетерогенностью в отношении чувствительности к антимикотикам, чем C. non-albicans. Отмеченный факт может быть следствием более высокой адаптивности вида C. albicans к факторам среды обитания по сравнению с последними [26].

Обнаруженные факты подтверждают отмеченную ранее значимость структуры микробных сообществ внутренних биотопов тела человека в патогенезе патологических процессов [16, 17]. Это подчёркивает важность изучения архитектуры микробных сообществ. Детальный анализ полученного материала показал, что архитектура сообщества грибов рода Candida — не случайное событие, а закономерность, с которой проявляются биологические свойства микроба.

Совершенно очевидно, что структура микробного сообщества может лишь частично объяснить различия микробов по чувствительности к антимикотическим средствам. Вполне вероятно, что наблюдаемые эффекты могут быть напрямую связаны с характерной способностью Candida spp. образовывать биоплёнки [11, 13, 14]. Данный вопрос может быть решён в ходе направленных экспериментальных исследований. Кроме того, представляется целесообразным определить роль самого макроорганизма ВИЧ-инфицированных пациентов в формировании архитектуры рассматриваемого сообщества, а также вклад межмикробных взаимодействий в распространение лекарственной устойчивости среди грибов Candida spp.

Помимо чисто научного интереса, проведённое исследование имеет важное практическое значение, особенно для клиники ВИЧ-инфицированных пациентов, осложнённой орофарингеальным кандидозом. В частности, мы подтвердили, высокую эффективность полиенов, в том числе нистатина, в лечении кандидозной инфекции у этих больных. В то же время, по нашим данным, к флюконазолу наиболее часто наблюдалась резистентность, на что неоднократно указывалось ранее [15, 22, 24]. Кроме того, при подборе эффективной антимикотической терапии для таких пациентов необходимо учитывать структуру сообщества Candida spp. в ротоглотке, особенно в случае обнаружения гетерогенных ассоциаций.

Выводы

  1. Архитектура сообщества грибов рода Candida, выделенных из ротоглотки ВИЧ-инфицированных пациентов с клиническими проявлениями орофарингеального кандидоза, влияет на их чувствительность к антимикотическим препаратам.
  2. При подборе эффективной антимикотической терапии для таких пациентов необходимо учитывать структуру сообщества Candida spp. в ротоглотке.

Этическое утверждение. Протокол исследования одобрен Комитетом по этике при Южно-Уральском государственном медицинском университете (протокол № 4 от 25.04.2014). У всех пациентов, включённых в исследование, было получено добровольное информированное согласие на использование данных лабораторных анализов в научных целях.

 

1 Приказ Минздравсоцразвития России от 17.03.2006 № 166 «Российская клиническая классификация ВИЧ-инфекции».

2 Методические рекомендации «Исследование клинического материала на наличие ДНК возбудителей ИППП и других инфекций органов репродукции методом ПЦР с гибридизационно-флуоресцентной детекцией». URL: https://www.amplisens.ru/upload/iblock/db2/MR%20IPPP-FL.pdf

×

Об авторах

Юрий Владимирович Несвижский

Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет); Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора

Email: nesviz@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-0386-3883

д.м.н., профессор, профессор каф. микробиологии, вирусологии и иммунологии, г.н.с. 

Россия, Москва; Москва

Александр Дмитриевич Воропаев

Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)

Email: nesviz@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6431-811X

аспирант каф. микробиологии, вирусологии и иммунологии

Россия, Москва

Станислав Степанович Афанасьев

Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора

Email: afanasievss409.4@bk.ru
ORCID iD: 0000-0001-6497-1795

д.м.н., профессор, г.н.с., зам. дирктора по биотехнологии

Россия, Москва

Елена Васильевна Волчкова

Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)

Email: nesviz@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4581-4510

д.м.н., профессор, зав. каф. инфекционных болезней

Россия, Москва

Максим Станиславович Афанасьев

Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)

Email: nesviz@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5860-4152

д.м.н., профессор каф. клинической аллергологии и иммунологии

Россия, Москва

Елена Александровна Воропаева

Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора

Email: nesviz@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-0463-0136

д.б.н., профессор, г.н.с.

Россия, Москва

Марьям Эмильевна Сулейманова

Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского

Email: nesviz@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-9255-6481

ординатор

Россия, Москва

Елена Вячеславовна Буданова

Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова (Сеченовский Университет)

Email: nesviz@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1864-5635

к.м.н., доцент, доцент каф. микробиологии, вирусологии и иммунологии

Россия, Москва

Юлия Николаевна Урбан

Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора

Автор, ответственный за переписку.
Email: nesviz@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-0189-3608

к.б.н., с.н.с. лаб. клинической микробиологии и биотехнологии

Россия, Москва

Список литературы

  1. Enoch D.A., Yang H., Aliyu S.H., Micallef C. The changing epidemiology of invasive fungal infections. Methods Mol. Biol. 2017; 1508: 17–65. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-6515-1_2
  2. Шаповалова М.М., Будневский А.В., Кравченко А.Я., Дробышева Е.С., Овсянников Е.С. Патогенез, современные аспекты профилактики и терапии антибиотик-ассоциированной диареи. Архивъ внутренней медицины. 2018; 8(6): 424–9. https://doi.org/10.20514/2226-6704-2018-8-6-424-429
  3. Ардатская М.Д., Бельмер С.В., Добрица В.П., Захаренко С.М., Лазебник Л.Б., Минушкин О.Н. и др. Дисбиоз (дисбактериоз) кишечника: современное состояние проблемы, комплексная диагностика и лечебная коррекция. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2015; (5): 13–50.
  4. Ambe N.F., Longdoh N.A., Tebid P., Bobga T.P., Nkfusai C.N., Ngwa S.B., et al. The prevalence, risk factors and antifungal sensitivity pattern of oral candidiasis in HIV/AIDS patients in Kumba District Hospital, South West Region, Cameroon. Pan. Afr. Med. J. 2020; 36: 23. https://doi.org/10.11604/pamj.2020.36.23.18202
  5. Awoyeni A., Olaniran O., Odetoyin B., Hassan-Olajokun R., Olopade B., Afolayan D., et al. Isolation and evaluation of Candida species and their association with CD4+ T cells counts in HIV patients with diarrhoea. Afr. Health Sci. 2017; 17(2): 322–9. https://doi.org/10.4314/ahs.v17i2.5
  6. Clark-Ordóñez I., Callejas-Negrete O.A., Aréchiga-Carvajal E.T., Mouriño-Pérez R.R. Candida species diversity and antifungal susceptibility patterns in oral samples of HIV/AIDS patients in Baja California, Mexico. Med. Mycol. 2017; 55(3): 285–94. https://doi.org/10.1093/mmy/myw069
  7. Goulart L.S., Souza W.W.R., Vieira C.A., Lima J.S., Olinda R.A., Araújo C. Oral colonization by Candida species in HIV-positive patients: association and antifungal susceptibility study. Einstein (Sao Paulo). 2018; 16(3): eAO4224. https://doi.org/10.1590/S1679-45082018AO4224
  8. Hager C.L., Ghannoum M.A. The mycobiome in HIV. Curr. Opin. HIV AIDS. 2018; 13(1): 69–72. https://doi.org/10.1097/COH.0000000000000432
  9. Spalanzani R.N., Mattos K., Marques L.I., Barros P.F.D., Pereira P.I.P., Paniago A.M.M., et al. Clinical and laboratorial features of oral candidiasis in HIV-positive patients. Rev. Soc. Bras. Med. Trop. 2018; 51(3): 352–6. https://doi.org/10.1590/0037-8682-0241-2017
  10. Suleyman G., Alangaden G.J. Nosocomial fungal infections: epidemiology, infection control, and prevention. Infect. Dis. Clin. North Am. 2021; 35(4): 1027–53. https://doi.org/10.1016/j.idc.2021.08.002
  11. Ponde N.O., Lortal L., Ramage G., Naglik J.R., Richardson J.P. Candida albicans biofilms and polymicrobial interactions. Crit. Rev. Microbiol. 2021; 47(1): 91–111. https://doi.org/10.1080/1040841X.2020.1843400
  12. Dadar M., Tiwari R., Karthik K., Chakraborty S., Shahali Y., Dhama K. Candida albicans — biology, molecular characterization, pathogenicity, and advances in diagnosis and control — an update. Microb. Pathog. 2018; 117: 128–38.https://doi.org/10.1016/j.micpath.2018.02.028
  13. Lamichhane K., Adhikari N., Bastola A., Devkota L., Bhandari P., Dhungel B., et al. Biofilm-producing Candida species causing oropharyngeal candidiasis in HIV patients attending Sukraraj Tropical and Infectious Diseases Hospital in Kathmandu, Nepal. HIV AIDS (Auckl). 2020; 12: 211–20. https://doi.org/10.2147/HIV.S255698
  14. Olson M.L., Jayaraman A., Kao K.C. Relative abundances of Candida albicans and Candida glabrata in in vitro coculture biofilms impact biofilm structure and formation. Appl. Environ. Microbiol. 2018; 84(8): e02769-17. https://doi.org/10.1128/AEM.02769-17
  15. Воропаев А.Д., Екатеринчев Д.А., Несвижский Ю.В., Зверев В.В., Афанасьев С.С., Волчкова Е.В. и др. Структура сообщества грибов рода Сandida в ротоглотке ВИЧ-инфицированных пациентов. Инфекция и иммунитет. 2021; 11(4): 737–45. https://doi.org/10.15789/2220-7619-TSO-1450
  16. Wlodarska M., Kostic A.D., Xavier R.J. An integrative view of microbiome-host interactions in inflammatory bowel diseases. Cell Host Microbe. 2015; 17(5): 577–91. https://doi.org/10.1016/j.chom.2015.04.008
  17. Barrio C., Arias-Sánchez S., Martín-Monzón I. The gut microbiota-brain axis, psychobiotics and its influence on brain and behaviour: a systematic review. Psychoneuroendocrinology. 2022; 137: 105640. https://doi.org/10.1016/j.psyneuen.2021.105640
  18. Berkow E.L., Lockhart S.R. Fluconazole resistance in Candida species: A current perspective. Infect. Drug Resist. 2017; 10: 237–45. https://doi.org/10.2147/IDR.S118892
  19. Bhattacharya S., Sae-Tia S., Fries B.C. Candidiasis and mechanisms of antifungal resistance. Antibiotics (Basel). 2020; 9(6): 312. https://doi.org/10.3390/antibiotics9060312
  20. Jung I.Y., Jeong S.J., Kim Y.K., Kim H.Y., Song Y.G., Kim J.M., et al. A multicenter retrospective analysis of the antifungal susceptibility patterns of Candida species and the predictive factors of mortality in South Korean patients with candidemia. Medicine (Baltimore). 2020; 99(11): e19494. https://doi.org/10.1097/MD.0000000000019494
  21. Osaigbovo I.I., Lofor P.V., Oladele R.O. Fluconazole resistance among oral Candida isolates from people living with HIV/AIDS in a Nigerian Tertiary Hospital. J. Fungi (Basel). 2017; 3(4): 69. https://doi.org/10.3390/jof3040069
  22. Pfaller M.A., Rhomberg P.R., Messer S.A., Jones R.N., Castanheira M. Isavuconazole, micafungin, and 8 comparator antifungal agents’ susceptibility profiles for common and uncommon opportunistic fungi collected in 2013: temporal analysis of antifungal drug resistance using CLSI species-specific clinical breakpoints and proposed epidemiological cutoff values. Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 2015; 82(4): 303–13. https://doi.org/10.1016/j.diagmicrobio.2015.04.008
  23. Pristov K.E., Ghannoum M.A. Resistance of Candida to azoles and echinocandins worldwide. Clin. Microbiol. Infect. 2019; 25(7): 792–8. https://doi.org/10.1016/j.cmi.2019.03.028
  24. Colombo A.L., Júnior J.N.A., Guinea J. Emerging multidrug-resistant Candida species. Curr. Opin. Infect. Dis. 2017; 30(6): 528–38. https://doi.org/10.1097/QCO.0000000000000411
  25. Урбах В.Ю. Статистический анализ в биологических и медицинских исследованиях. М.; 1975.
  26. Pereira R., Dos Santos Fontenelle R.O., de Brito E.H.S., de Morais S.M. Biofilm of Candida albicans: formation, regulation and resistance. J. Appl. Microbiol. 2021; 131(1): 11–22. https://doi.org/10.1111/jam.14949

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Несвижский Ю.В., Воропаев А.Д., Афанасьев С.С., Волчкова Е.В., Афанасьев М.С., Воропаева Е.А., Сулейманова М.Э., Буданова Е.В., Урбан Ю.Н., 2023

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС77-75442 от 01.04.2019 г.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах