Отправить статью по E-mail МЕТАБОЛИЧЕСКИЙ ПРОФИЛЬ БИФИДОФЛОРЫ ПРИ РАЗЛИЧНЫХ МИКРОЭКОЛОГИЧЕСКИХ СОСТОЯНИЯХ БИОТОПА ТОЛСТОГО КИШЕЧНИКА ЧЕЛОВЕКА
- Авторы: Бухарин О.В.1, Иванова Е.В.1, Перунова Н.Б.1, Чайникова И.Н.1, Андрющенко С.В.1
-
Учреждения:
- Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза
- Выпуск: Том 94, № 1 (2017)
- Страницы: 3-11
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- Дата подачи: 10.04.2019
- Дата публикации: 28.02.2017
- URL: https://microbiol.crie.ru/jour/article/view/116
- DOI: https://doi.org/10.36233/0372-9311-2017-1-3-11
- ID: 116
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Цель. Изучить спектр и уровень короткоцепочечных жирных кислот (КЦЖК) в супернатанте бифидобактерий при различных микроэкологических состояниях биотопа толстого кишечника человека. Материалы и методы. Исследовали метаболиты 88 штаммов бифидобактерий, изолированных от пациентов при обследовании на дисбиоз кишечника. Определение концентраций КЦЖК проводили методом разделения подкисленного супернатанта пробы на хроматографе GC-2010 Plus, Shimadzu (Япония). Результаты. Одноосновные карбоновые кислоты обнаружены в метаболитах 50 - 100% исследуемых культур бифидобактерий, где спектр и уровень карбоновых кислот в супернатантах варьировали в зависимости от микроэкологического состояния источника выделения. При глубоких нарушениях микросимбиоценоза в метаболитах Bifidobacterium spp. была снижена суммарная концентрация КЦЖК, структурный индекс, уровень уксусной и пропионовой кислот. Выявлены штаммоспецифические отличия в метаболическом профиле бифидофлоры в составе индивидуальных консорциумов. Полученные данные свидетельствуют о варьировании функциональной (метаболической) активности доминантных штаммов при различных микроэкологических состояниях кишечника человека. Заключение. Уникальность метаболома каждого отдельного штамма бифидобактерий за счет их штаммоспецифичности определяет их функциональную активность, а метаболический профиль бифидофлоры может служить важнейшим критерием отбора эффективных пробиотических препаратов для лечения и профилактики дисбиозов кишечника.
Об авторах
О. В. Бухарин
Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза
Автор, ответственный за переписку.
Email: noemail@neicon.ru
Россия
Е. В. Иванова
Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза
Email: noemail@neicon.ru
Россия
Н. Б. Перунова
Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза
Email: noemail@neicon.ru
Россия
И. Н. Чайникова
Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза
Email: noemail@neicon.ru
Россия
С. В. Андрющенко
Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза
Email: noemail@neicon.ru
Россия
Список литературы
- Алешкин В.А., Ардатская М.Д., Бабин В.Н. и др. Способ разделения смеси жирных кислот, фракций С2 - С7 методом газожидкостной хроматографии. Патент РФ № 2145511. Бюл.№ 11,2000.
- Бухарин О.В., Перунова Н.Б., Иванова Е.В. Бифидофлора при ассоциативном симбиозе человека. Екатеринбург, УрО РАН, 2014.
- Затевалов А. М. Интегральная оценка состояния микробиоценозов биотопов желудочно-кишечного тракта и методы коррекции их нарушений. Автореф. дис. д-ра биол. наук. М., 2016.
- Методические указания по контролю химических факторов. Определение массовых концентраций летучих жирных кислот (уксусная, пропионовая, изомасляная, масляная, валериановая, изокапроновая, капроновая) в биосредах (кровь) газохроматографическим методом. МУ № 4.1.2773-10. М., Роспотребнадзор, 2010.
- Belenguer A., Duncan S.H., Calder A.G. et al. Two routes of metabolic cross-feeding between Bifidobacterium adolescentis and butyrate-producing anaerobes from the human gut. Appl. Environ. Microbiol. 2006, 72 (5): 3593-3599.
- Besten G., van Eunen K., Groen A. et al. The role of short-chain fatty acids in the interplay between diet, gut microbiota, and host energy metabolism. J. Lipid Res. 2013, 54 (9): 2325-2340.
- Chen Y., Gozzi K., Yan F. et al. Acetic acid acts as a volatile signal to stimulate bacterial biofilm formation. MBio. 2015, 6 (3): e00392-15.
- Fetissov S.O. Role of the gut microbiota in host appetite control: bacterial growth to animal feeding behaviour. Nat. Rev. Endocrinol. 2016, 12. doi:.1038/nrendo.
- FurusawaY., ObataY., FukudaS. etal. Commensal microbe-derived butyrate induces the differentiation of colonic regulatory T cells. Nature. 2013, 504 (7480): 446-450.
- Kau A.L., Ahem P.P., Griffin N. W. Human nutrition, the gut microbiome, and immune system. Nature. 2011, 474 (7351): 327-336.
- Murzyn A., Krasowska A., Stefanowicz P. et al. Capric acid secreted by S. boulardii inhibits C. albicans filamentous growth, adhesion and biofilm formation. PLoS One. 2010, 5 (8): el2050.
- Russell D.A., Ross R.P., Fitzgerald G.F. et al. Metabolic activities and probiotic potential of bifidobacteria. Int. J. Food Microbiol. 2011, 149 (1): 88-105.
- Sun Y., O’Riordan M.X.D. Regulation of bacterial pathogenesis by intestinal short-chain fatty acids. Adv. Appl. Microbiol. 2013, 85: 93-118.
- Verbeke K.A., Boobis A.R., Chiodini A. et al. Towards microbial fermentation metabolites as markers for health benefits of prebiotics. Nutr. Res. Rev. 2015, 28 (1): 42-66.
- Jousimies-Somer H., Summanen R, Citron D. et al. Wadsworth-KTL anaerobic bacteriology manual. Washington., 2002.
Дополнительные файлы
