Бесклеточная коклюшная вакцина из антигенов свежевыделенного штамма B. pertussis серовара 1.2.3

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Цель работы - разработка технологии изготовления бесклеточной коклюшной вакцины (БКВ) из свежевыделенного штамма B. pertussis серовара 1.2.3 и изучение ее протективной активности и безопасности в сравнении с препаратом из вакцинных штаммов. Материалы и методы. Использовали штаммы B. pertussis: свежевыделенный штамм № 211, серовариант 1.2.3; вакцинные штаммы № 305, серовариант 1.2.0 и № 475а, серовариант 1.2.3. По оригинальной методике из супернатанта жидкой среды культивирования B. pertussis штамма № 211 получена БКВ и изучены ее протективные и токсические свойства. Результаты. Исследования показали, что для получения БКВ, состоящей из антигенов свежевыделенного штамма, требуется использование обогащенных питательных сред при культивировании штамма и увеличение срока детоксикации комплекса протективных антигенов, выделенного из среды культивирования штамма. БКВ, полученная из свежевыделенного штамма, обладала протективными свойствами, в 1,7 раза превышающими протективные свойства БКВ, полученной из вакцинных штаммов, при отсутствии токсических свойств и низких сенсибилизирующих свойствах. Полученные результаты свидетельствуют о перспективности использования свежевыделенного штамма № 211 для получения коклюшных вакцин.

Полный текст

Введение

Коклюш — заболевание, вызываемое бактериями Bordetella pertussis, наиболее опасен для неиммунизированных младенцев [1, 2]. По данным ВОЗ, в 2016 г. заболеваемость на 100 тыс. детей в возрасте до 14 лет составляла 30,392. Вакцинация против коклюша, начавшаяся с 1940 г., резко снизила уровень заболеваемости, однако в последующие годы снова началось постепенное увеличение числа вспышек коклюша во всем мире, особенно в последнее десятилетие, несмотря на высокий уровень вакцинации населения [3-6].

Во многих странах мира проведено изучение генома B. pertussis, показавшее, что одной из причин продолжающегося эпидемического процесса коклюша является несоответствие генотипов вакцинных штаммов B. pertussis генотипам циркулирующих в настоящее время штаммов. Молекулярно-генетический анализ штаммов B. pertussis выявил аллельные варианты генов, кодирующих продукцию S1 субъединицы коклюшного токсина (ptxA), пертактина (prn), фимбриальных белков (fim2 и fim3) и некоторых других факторов вирулентности.

Популяция циркулирующих штаммов B. pertussis в большинстве случаев имеет аллельный вариант ptxP3 гена промотора коклюшного токсина и ptxAl аллель гена коклюшного токсина; доминируют штаммы, имеющие prn2 и prn3 аллели гена пертактина; отмечается тенденция к увеличению доли штаммов с fim2-2 и fim3B аллелями фимбриальных генов. У вакцинных штаммов преобладают ptxA2 и ptxA4 аллели гена коклюшного токсина, аллель ptxPl промотора коклюшного токсина, prnl аллель гена пертактина, fim2-1 и fim3A аллели генов фимбрий. Выделенные в 2006-2012 гг. в России изоляты содержали 14 генотипов, из которых 98,6% соответствовали новым невакцинным генотипам ptxP3, fim3B, fim3A, prn2/pm4/pm3/pm9 — штаммы № 322 и № 329 и смешанным генотипам невакцинных prn9 и вакцинныхptxP2/fim3A аллелей — штамм № 219; невакцинного ptxP3/prn2 и вакцинного fim3A аллелей — штамм № 312. В 2013-2015 гг. штаммы B. pertussis № 329 и № 322 доминировали в России, вызывая тяжелые клинические формы коклюша [1].

Свежевыделенный штамм № 211, использованный в настоящей работе для изготовления коклюшной вакцины, был выделен от больного коклюшем ребенка в 2003 г. и характеризуется аллельным вариантом ptxAl гена коклюшного токсина, аллельным вариантом ptxP3 гена промотора коклюшного токсина, аллельным вариантом prn2 гена пертактина, аллельным вариантом fim2-1 гена fim2, аллельным вариантом fim3B гена fim3. В вакцинном штамме № 305 ген ptxA характеризуется аллельным вариантом ptxA2, а в штамме № 475а — аллельным вариантомptxA4; ген промотора коклюшного токсина — аллелем ptxPl; ген пертактина — аллельным вариантом prn1, гены фимбрий — аллельными вариантамиfim2-1 иfim3A для обоих штаммов [8].

Таким образом, циркулирующие в настоящее время штаммы содержат измененные последовательности генов коклюшного токсина, фимбрий и пертактина, отличающиеся от последовательностей в штаммах довакцинального периода. Изменения генома возбудителя коклюша ставят вопрос о необходимости создания вакцин нового поколения и замены старых вакцинных штаммов на новые [7]. В связи с этим актуальными являются отбор и характеристика свежевыделенных штаммов в качестве кандидатов для производства современных коклюшных вакцин. При этом важное значение имеет отбор штаммов, имеющих полный набор агглютиногенов: 1.2.3.

Цель исследования — разработка технологии изготовления бесклеточной коклюшной вакцины (БКВ) из свежевыделенного штамма B. pertussis № 211 серовара 1.2.3 и изучение ее протективной активности и безопасности в сравнении с препаратом из вакцинных штаммов.

Материалы и методы

В опытах использованы мыши-гибриды F1 массой 10-12 и 14-16 г.

Штамм B. pertussis № 211, серовариант 1.2.3 выделен у больного ребенка. Изучены вакцинные штаммы № 305, серовариант 1.2.0 и № 475а, серовариант 1.2.3 (селекционированный из штамма № 475).

Питательные среды:

  • казеиново-угольный агар (КУА);
  • агар Борде-Жангу с 20-30% крови человека;
  • жидкая синтетическая питательная среда (ЖСС), содержащая аминокислоты, соли и витамины;
  • жидкая полусинтетическая питательная среда (ЖПС) — модификация среды КоэнаВиллера с добавлением протеинового ингредиента (казеиновый гидролизат).

Проверку морфологических, серологических и культуральных свойств штамма проводили в соответствии с Методическими указаниями1. Для оценки серовара штаммов использовали сыворотки диагностические коклюшные к агглютиногенам 1.2.3 и паракоклюшные к агглютиногену 14 адсорбированные, для реакции агглютинации — «Медгамал», серия 92, серия 78, сухие.

Для получения необходимого количества биомассы свежевыделенного штамма № 211 были апробированы 3 схемы культивирования. При схеме I микробные клетки культивировали в условиях, используемых для выращивания вакцинных штаммов. Штамм восстанавливали из сухого состояния на плотных средах Борде-Жангу с 20-25% крови человека (1-й пассаж). Культуры после бактериологического контроля на чистоту пересевали на пробирки со средой КУА и выращивали в течение 16-18 ч (2-й пассаж), затем культуры выращивали в ЖСС с использованием шуттель-аппарата в течение 16-18 ч (динамическое культивирование, 3-й пассаж). На конечном этапе микробные клетки выращивали в ЖСС в стационарных условиях в течение 5 сут (4-й пассаж).

По схеме II 2-й пассаж культур проводили на среде КУА с 5% крови человека.

В соответствии со схемой III 2-й пассаж также проводили на среде КУА с 5% крови человека, а 3-й пассаж осуществляли в динамических условиях с использованием ЖПС. Четвертый пассаж заключался в культивировании в ЖСС в стационарных условиях.

Вирулентность свежевыделенных и вакцинных штаммов определяли на модели экспериментального менингоэнцефалита у мышей. Мышам вводили интрацеребрально три дозы культуры В. pertussis в объеме 0,03 мл с последующим учетом количества павших животных в течение 2 нед и расчетом LD50.

БКВ была получена по оригинальной методике из супернатанта жидкой среды культивирования В. pertussis штаммов № 211, 305 и 475а [9, 10].

Протективную активность БКВ исследовали на модели экспериментального менингоэнцефалита у мышей при интрацеребральном заражении иммунизированных мышей вирулентной культурой штамма В. pertussis № 18323. Результаты учитывали в течение 2 нед после заражения2. Контрольных мышей заражали интрацеребрально двукратными дозами микробных взвесей культуры штамма В. pertussis № 18323 в объеме 0,03 мл с последующим наблюдением в течение 14 сут, учетом количества павших животных и расчетом LD50.

Лейкоцитозстимулирующую активность (ЛСА), токсичность и гистаминсенсибилизирующие свойства препаратов проверяли в соответствии с правилами проведения доклинических исследований лекарственных средств [11].

LD50 и МЗЕ/мл (международная защитная единица в 1 мл вакцины) рассчитывали по методу Вильсона и Вустера с использованием таблиц Национального института здоровья США.

Результаты

Изучение морфологических, серологических и культуральных свойств штамма № 211 показало, что он отвечает требованиям, предъявляемым к гладкой форме (фаза 1) бактерий и может быть использован для производства коклюшных вакцин. Коклюшные бактерии штамма № 211 — неподвижные, грамотрицательные, овоидной формы мелкие палочки — располагались в мазках отдельно или парами. На среде Борде-Жангу колонии круглые, сероватого цвета, мелкие, блестящие, выпуклые. При постановке развернутой реакции агглютинации культура штамма № 211 с диагностическими коклюшными сыворотками к видовым агглютиногенам 1.2.3 проявляла активность в разведениях 1:1280, 1:160 и 1:640 соответственно, культура агглютинировалась коклюшной антибактериальной сывороткой.

Свежевыделенный штамм № 211 B. pertussis отличался высокими вирулентными свойствами (LD50 < 4,8 млн микробных клеток) и в 3,7 раза превышал вирулентность вакцинных штаммов (LD50 = 18,2 ± 2,6 млн микробных клеток).

Важным этапом технологии изготовления БКВ является культивирование штаммов для получения биомассы, достаточной для выделения комплекса протективных антигенов. При выращивании на плотной среде КУА (схема I) свежевыделенный штамм давал скудный рост, а при дальнейшем культивировании в ЖСС накопление биомассы было недостаточным для выделения комплекса протективных антигенов (15,6 ± 0,5 МОЕ/мл). Использование схемы II позволило улучшить рост культур на плотной среде, однако выход биомассы оставался недостаточным (37,1 ± 3,8 МОЕ/мл). Для выделения комплекса протективных антигенов из надосадочной жидкости среды культивирования B. pertussis выход биомассы, в соответствии с ранее полученными данными по изготовлению БКВ из вакцинных штаммов, должен быть не ниже 50 МОЕ/мл.

Наиболее высокий выход биомассы был отмечен при использовании схемы III — накопление биомассы было достаточным для выделения комплекса антигенов из надосадочной жидкости культуры и составляло 68,7 ± 4,6 МОЕ/мл.

Одним из этапов технологии изготовления БКВ является детоксикация комплекса антигенов, выделенного из надосадочной жидкости среды культивирования штаммов. Результаты детоксикации оценивали на мышах в тесте по определению ЛСА, которая по требованиям ВОЗ не должна превышать 1 ЕД. На 1-м этапе исследований была использована методика, ранее отработанная при изготовлении БКВ из вакцинных штаммов, согласно которой детоксикацию антигенного комплекса B. pertussis проводили в течение 17 сут. ЛСА антигенного комплекса из штамма № 211 до детоксикации составляла 10,2 ± 2,4 ЕД, а после детоксикации — 1,2 ЕД. В связи с этим был увеличен срок детоксикации комплекса до 19-21 сут. При детоксикации в течение 19 сут индекс ЛСА составлял 0,49 ЕД и практически не изменялся при дальнейшем увеличении срока детоксикации.

С использованием детоксицированных комплексов антигенов, выделенных из среды культивирования свежевыделенного и вакцинных штаммов, были приготовлены два варианта БКВ:

  • БКВ1 содержала в 1 иммунизирующей дозе для человека 25 мкг белка антигенного комплекса свежевыделенного штамма pertussis № 211;
  • БКВ2 содержала в 1 иммунизирующей дозе для человека 25 мкг (в соотношении 1:1) белка антигенных комплексов вакцинных штаммов pertussis № 305 и 475а.

Все исследованные варианты вакцин обладали выраженной защитной активностью (не менее 8 МЗЕ/мл) и соответствовали требованиям ВОЗ (таблица). Следует отметить, что протективная активность БКВ1 (17,1 МЗЕ/мл) в 1,7 раза превышала таковую у БКВ2 (10,2 МЗЕ/мл). Токсичность препаратов была исследована в тесте изменения массы тела мышей в дозе 25 мкг (рекомендуемой для человека). Все препараты были безвредны в испытуемой дозе (прибавка массы тела мышей по отношению к контролю составляла более 60%), что свидетельствует об отсутствии токсичности у испытуемых вакцин.

 

Генотипическая характеристика штаммов B. pertussis и биологические свойства бесклеточных коклюшных вакцин, изготовленных на их основе

Genetic characteristics of B. pertussis strains and biological properties of cell-free pertussis vaccines manufactured on their basis

Препарат БКВ (штаммы)

CPV (strains)

Генетическая характеристика штаммов

Genetic characteristics of the strains

Биологические свойства вакцин

Biological properties of the vaccines

протективная активность

рrotective activity

безопасность в тесте изменения массы тела мышей

safety in the test of changes in the mice body weight

fim 2, 3

ptxA/ptxР

рт

в ЕД50, мл

in ED50, ml

в МЗЕ/мл

in IPU/ml

прирост массы, г

weight gain, g

прирост, % по отношению к контролю (физиологический раствор >60%)

weight gain, % relative to control (PBS >60%)

БКВ1 (свежевыделенный штамм № 211)

CPV1 (211 strain freshly isolated)

fim2-1

fim3В

ptxA1/ptxР3

prn2

0,021

(0,014-0,032)

17,1

3,0 ± 0,1

93,7

БКВ2 (вакцинные штаммы № 305, 475а)

CPV2 (305, 475а vaccine strains)

If

CO

ptxA2/ptxР1

ptxA4/ptxР1

prn1

0,035

(0,021-0,041)

10,2

2,6 ± 0,1

81,2

Отраслевой стандартный образец иммуногенности (ОСО-3) Industry standard of immunogenicity

 

 

 

0,012

(0,009-0,019)

 

 

 

Физиологический раствор PBS

 

 

 

 

 

3,2 ± 0,09

 

Получение мышами БКВ в дозах 25, 50 и 100 мкг не вызывало гибели животных после введения дигидрохлорида гистамина. Гистаминсенсибилизирующая доза (ГСД50) была более 100 мкг. ГСД50 отраслевого стандартного образца токсичности (ОСО-5) коклюшных вакцин составляла 4,8 МОЕ/мл. Таким образом, в одной иммунизирующей дозе (25 мкг) БКВ содержится 0,25 ГСД50, что в 8,4 раза ниже, чем в ОСО-5, содержащем в одной иммунизирующей дозе (10 МОЕ) 2,1 ГСД50. Полученные результаты свидетельствуют о низких сенсибилизирующих свойствах БКВ из свежевыделенного и вакцинных штаммов, соответствующих требованиям ВОЗ.

Обсуждение

Для изготовления БКВ был использован штамм № 211, выделенный в 2003 г. от больного коклюшем ребенка, соответствующий по генотипическим характеристикам современной циркулирующей популяции возбудителя коклюша и, как большинство циркулирующих штаммов, отличающийся по генотипическим характеристикам от штаммов, используемых в производстве коклюшных вакцин. Одним из критериев отбора данного штамма как источника протективных антигенов для изготовления БКВ является его принадлежность по генотипу к штаммам B. pertussis, доминирующим в настоящее время в России и несущим промотор коклюшного токсина ptxP3 и серовариант 1.2.3. Однако вирулентность штаммов определяется увеличением не только продукции коклюшного токсина, но и адгезивных свойств штаммов, о чем свидетельствует преимущество штамма № 211, серовар 1.2.3. Для решения поставленной задачи были разработаны оптимальные условия культивирования свежевыделенного штамма и режим детоксикации комплекса протективных антигенов, оценена протективная активность и безопасность БКВ из антигенов этого штамма. Использование обогащенных питательных сред позволило получить достаточно высокий уровень выхода биомассы. При детоксикации комплекса антигенов из свежевыделенного штамма в условиях, отработанных для вакцинных штаммов, ЛСА составляла 1,2 ЕД. Увеличение срока детоксикации до 19 дней позволило снизить ЛСА до 0,49 ЕД.

С использованием детоксицированных комплексов протективных антигенов, выделенных из среды культивирования свежевыделенного и вакцинных штаммов, были приготовлены два варианта БКВ. Изучение протективных свойств полученных препаратов показало, что все исследованные варианты БКВ обладали выраженной защитной активностью (не менее 8 МЗЕ/мл), а также отсутствием токсических и сенсибилизирующих свойств. При этом по содержанию МЗЕ/мл БКВ, изготовленная из комплекса антигенов свежевыделенного штамма, в 1,7 раза превосходила БКВ, полученную из вакцинных штаммов, что свидетельствует о высокой протективной активности данной БКВ. Одной из возможных причин увеличения протективной активности является повышенная вирулентность штамма № 211, несущего новый аллельный вариант промотора гена ptxP3, связанного с повышенной продукцией коклюшного токсина и увеличением адгезивных свойств, связанных с продукцией фимбрий 2 и 3 [3, 12].

Преимуществами штамма № 211 являются высокая вирулентность, в 3,7 раза превышающая вирулентность вакцинных штаммов, соответствие его генотипа циркулирующим в настоящее время в России штаммам B. pertussis, экспрессия полного набора агглютиногенов 1, 2 и 3, высокий выход биомассы при культивировании в жидкой питательной среде и повышенные протективные свойства полученной из него БКВ. Штамм № 211 депонирован в «Научном центре экспертизы средств медицинского применения» под № 317 от 15.09.2017. Получен патент № 2689903 «Свежевыделенный штамм бактерий Bordetella pertussis — продуцент комплекса протективных антигенов для производства бесклеточной коклюшной вакцины». В целом полученные результаты свидетельствуют о перспективности использования свежевыделенного штамма № 211 для производства БКВ.

×

Об авторах

Евгений Михайлович Зайцев

д.м.н., зав. лаб. иммуномодуляторов ФГБНУ НИИВС им. И.И. Мечникова, 105064, Москва, Россия

Автор, ответственный за переписку.
Email: pertussis@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-4813-9074

Ирина Глебовна Бажанова

к.б.н., в.н.с. лаб. иммуномодуляторов ФГБНУ НИИВС им. И.И. Мечникова, 105064, Москва, Россия

Email: ibajanowa@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-1404-1498

Марина Васильевна Брицина

к.б.н., в.н.с. лаб. иммуномодуляторов ФГБНУ НИИВС им. И.И. Мечникова, 105064, Москва, Россия

Email: britsinamarina@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-3044-0790

Наталия Устиновна Мерцалова

к.б.н., в.н.с. лаб. иммуномодуляторов ФГБНУ НИИВС им. И.И. Мечникова, 105064, Москва, Россия

Email: n.mertzalova@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-9072-2538

Мария Николаевна Озерецковская

к.м.н., в.н.с. лаб. иммуномодуляторов ФГБНУ НИИВС им. И.И. Мечникова, 105064, Москва, Россия

Email: manja33@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-9809-4217

Список литературы

  1. Борисова О.Ю., Гадуа Н.Т., Пименова А.С., Петрова М.С., Попова О.П., Алешкин В.А. и др. Структура популяции штаммов возбудителя коклюша на территории России. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2016; 15(4): 22-8. DOI: http://doi.org/10.31631/2073-3046-2016-15-4-22-28
  2. Еженедельный эпидемиологический бюллетень. Вакцины против коклюша: документ по позиции ВОЗ — август 2015; 35. Available at: https://www.who.int/immunization/policy/position_papers/pp_pertussis_august2015_ru.pdf
  3. Anselmo A., Buttinelli G., Ciammaruconi A., Midulla F., Nicolai A., Fortunato A., et al. Draft genome sequence of a Bordetella pertussis strain with the virulence-associated allelic variant ptxP3, isolated in Italy. Genome Announc. 2015; 3(5): e00944-15. DOI: http://doi.org/10.1128/genomeA.00944-15
  4. Bailon H., León-Janampa N., Padilla C., Hozbor D. Increase in pertussis cases along with high prevalence of two emerging genotypes of Bordetella pertussis in Perú, 2012. BMC Infect. Dis. 2016; 16: 422. DOI: http://doi.org/10.1186/s12879-016-1700-2
  5. Carbonetti N.H., Wirsing von König C.H., Lan R., JacobDubuisson F., Cotter P.A., Deora R., et al. Highlights of the 11th International Bordetella Symposium: from basic biology to vaccine development. Clin. Vaccine Immunol. 2016; 23(11): 842-50. DOI: http://doi.org/10.1128/CVI.00388-16
  6. van Gent M., Heuvelman C.J., van der Heide H.G., Hallander H.O., Advani A., Guiso N., et al. Analysis of Bordetella pertussis clinical isolates circulating in European countries during the period 1998–2012. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2015; 34(4): 821-30. DOI: http://doi.org/10.1007/s10096-014-2297-2
  7. Семин Е.Г., Синяшина М.Н., Медкова А.Ю., Каратаев Г.И. Конструирование рекомбинантных аттенуированных бактерий Bordetella pertussis генотипа РТхР3. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2018; (4): 33-41. DOI: http://doi.org/10.36233/0372-9311-2018-4-33-41
  8. Мазурова И.К., Борисова О.Ю., Комбарова С.Ю., Гадуа Н.Т., Агешкин В.А. Динамика изменчивости основных генов патогенности штаммов B. pertussis, выделенных от больных коклюшем в Москве (1948–2005 гг.). Молекулярная медицина. 2008; (1): 40-5.
  9. Зайцев Е.М., Бажанова И.Г., Брицина М.В. Протективная активность и безопасность бесклеточной коклюшной вакцины из вакцинных и свежевыделенного штамма Bordetella pertussis. Эпидемиология и вакцинопрофилактика. 2017; 16(2): 31-4. DOI: http://doi.org/10.31631/2073-3046-2017-16-2-31-34
  10. Захарова Н.С., Брицина М.В., Мерцалова Н.У., Бажанова И.Г., Озeрецковская М.Н., Зайцев Е.М. и др. Отечественная бесклеточная коклюшная вакцина. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2008; (1): 35-41.
  11. Миронов А.Н. Руководство по проведению доклинических исследований лекарственных средств (иммунобиологические лекарственные препараты). Часть 2. М.: Гриф и К; 2012.
  12. Bart M.L., van Gent M., van der Heide H.G., Boekhorst J., Hermans P., Parkhill J., et al. Comparative genomics of prevaccination and modern Bordetella pertussis strains. BMC Genomics. 2010; 11: 627. DOI: http://doi.org/10.1186/1471-2164-11-627

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Зайцев Е.М., Бажанова И.Г., Брицина М.В., Мерцалова Н.У., Озерецковская М.Н., 2020

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС77-75442 от 01.04.2019 г.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах