ПРИМЕНЕНИЕ РЕАКЦИИ ЛАТЕКС-АГГЛЮТИНАЦИИ НА ОСНОВЕ МОНОКЛОНАЛЬНЫХ АНТИТЕЛ ДЛЯ ОБНАРУЖЕНИЯ И ИДЕНТИФИКАЦИИ ВОЗБУДИТЕЛЯ МЕЛИОИДОЗА В ПРОБАХ С ОБЪЕКТОВ ВНЕШНЕЙ СРЕДЫ И БИОЛОГИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

В обзоре обобщены основные сведения о разработке и диагностических возможностях реакции латекс-агглютинации (РЛА), применяемой для целей обнаружения и последующей идентификации возбудителя мелиоидоза. Как свидетельствуют опубликованные данные, применение мелиоидозных моноклональных антител различной эпитопной направленности для изготовления суспензионного носителя - основного детектирующего ингредиента этой реакции, способствует повышению диагностических возможностей данного метода (его чувствительности и специфичности), что неоднократно было подтверждено специалистами, работавшими как в зонах эндемичного распространения Burkhold^ra pseudom^^i, так и вне этих территорий. Как отметило большинство авторов публикаций, после внедрения этой реакции в практическую работу профильных лабораторий, низкозатратная коммерческая продукция (тестовый набор реагентов для реакции латекс-агглютинации) может найти широкое применение как в стационарных, так и мобильных лабораториях. Несомненными достоинствами метода являются его простота, наглядность, пригодность для работы с различными образцами с объектов внешней среды и биологического материала, а также полученные доказательства возможности использования РЛА для обеспечения эффективной дифференциации В. pseudomallei от авирулентных родственных бактерий и выявления возбудителя на ранних стадиях заболевания за относительно короткие промежутки времени, что делает ее перспективным методом диагностики мелиоидоза, потенциально смертельной инфекции, требующей раннего начала соответствующей антибиотикотерапии.

Об авторах

Н. П. Храпова

Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт

Автор, ответственный за переписку.
Email: noemail@neicon.ru
Россия

Л. К. Меринова

Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт

Email: noemail@neicon.ru
Россия

Т. В. Замарина

Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт

Email: noemail@neicon.ru
Россия

Д. М. Фролов

Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт

Email: noemail@neicon.ru
Россия

Т. В. Сенина

Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт

Email: noemail@neicon.ru
Россия

И. И. Корсакова

Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт

Email: noemail@neicon.ru
Россия

Список литературы

  1. Илюхин В.И., СенинаТ.В., Плеханова Н.Г., Антонов В.А., Меринова Л.К., Сеимова И.К. Burkholderia thailandensis: биологические свойства, идентификация и таксономическая позиция. Мол. генет., микробиол. и вирусол. 2002, 1:7-11.
  2. Лабораторная диагностика опасных инфекционных болезней. Практическое руководство. Г.Г.Онищенко, В.В.Кутырев (ред.). М., ЗАО «Шико», 2013.
  3. Специфическая индикация патогенных биологических агентов: Практическое руководство. Г.Г.Онищенко, В.В.Кутырев (ред.). Саратов, ООО «Буква», 2014.
  4. Amomchai Р., Chierakul W., Wuthiekanun V. et al. Accuracy of Burkholderia pseudomallei identification using the API 20NE system and a latex agglutination test. J. Clin. Microbiol. 2007,45 (11): 3774-3776.
  5. Anuntagool N., Naigowit P, Petkanchanapong V. et al. Monoclonal antibody-based rapid identification of Burkholderia pseudomallei in blood culture fluid from patients with community-acquired septicaemia. J. Med. Microbiol. 2000,49 (12): 1075-1078.
  6. Anuntagool N., IntachoteP,WuthiekanumV.etal. Lipopolysaccharide from nvirulent Ara+ Burkholderia pseudomallei isolates in immunologically indistinguishable from lipopolysaccharide from virulent Ara' clinical isolates. Clin. Diagn. Lab. Immunol. 1998, 5 (2): 225-229.
  7. Anuntagool N., Intachote P., Naigowit P et al. Rapid antigen detection assay for identification of Burkholderia (Pseudomonas) pseudomallei infection. J. Clin. Microbiol. 1996, 34 (4): 975976. ,.
  8. Anuntagool N., Panichakul T, Aramsri P. et al. Shedding of lipopolysaccharide and 200-kDa surface antigen during the in vivo growth of virulent Ara- and avirulent Ara+ Burkholderia pseudomallei. Acta. Trop. 2000, 74 (2-3): 221-228.
  9. Bossi P, Guihot A., Bricare F. Emerging or re-emerging infections that can be used for bioterrorism. Presse Med. 2005, 34 (2 Pt 2): 149-155.
  10. Chaowagul W., White N.J., Dance D.A. et al. Melioidosis: a major cause ofcommunity acquired septicemia in northeastern Tailand. J. Infect. Dis. 1989,159 (5): 890-899.
  11. Currie B.J., Dance D.A., Cheng A.C. The global distribution of Burkholderia pseudomallei and melioidosis: an update. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 2008, 102 (1): 1-4.
  12. Currie B.J., Fisher D.A., Howard D.M. etal. Endemic melioidosis in tropical northern Australia: a 10-year prospective study and review of the literature. Clin. Infect. Dis. 2000, 31 (4): 981986.
  13. Dance D.A. Melioidosis as an emerging global problem. Acta. Trop. 2000, 74 (2-3): 115119.
  14. DharakulT., Songsivilai S., SmithikarnS. et at Rapid identification of Burkholderia pseudomallei it blood aulfuans by latex agglutinating using lipnpnlysacaOpaide-spnaifia mngnalngrl anfibody. Am. J. Taop. Med. Hyg. 1999,61 (4): 658-662.
  15. Duval U.D., Elaod M.G., Gee J.E. ef al. Evaluating of a lafex agglutination assay for the identification Burkholderia pseudomallei and Burkholderia mallei. Am. J. Taop. Med. Hyg. 2014, 90 (6): 1043-1046.
  16. Ekpo a, Rungpania O U., Pongsunh 0. ef al. Use of protein-specific monoclonal antibody-based lafex agglutination for rapid diagnosis of Burkholderia pseudomallei infeation in patienfs with community-acquired septiaemia. Clin. Vaccine Immunol. 2007,14 (6): 811-812.
  17. Gilad J., Schwartz D., Amsalem Y. Сlinical feptuaes and laboratory diagnosis of infeation with the potential bioterrorism agents Burkholderia mallei and Burkholderia pseueompllei. Inf. J. Uiomed. Oai. 2007, 3 (3): 144-152.
  18. Inglis T.J., Mearritt A., Chidlow G. ef al. Comparison of diagnostic laboratory methods for identification of Burkholderia pseudomallei. J. Clin. Miaanbiol. 2005,43 (5): 2201-2206.
  19. Jedudason M.V., Balaji V, Sirisinha S. ef al. Rapid idenfification of Burkholderia pseudomallei in blood culture supernatants by a coagglutination assay. Clin. Miaaobiol. Infeaf. 2005,11: 925-936.
  20. Khan A.O., Levitt A.M., Oage M.J. Biological and chemical terrorism: strategic plan for pae-paredness and response. MMWR Reaomm. Rep. 2000,49 (RR-4): 1-14.
  21. Lau S.K., Sridhar So Ho C.C. et al. Laboratory diagnosis of melioidosiss:past, present and future. Exp. Uiol. Med. 2015, 240: 742-751.
  22. Pongsunk S., EkpoP., Dharakul T. Production of specific monoclonal antibodies fo Burkholderia pseudomallei and their diagnostic application. Asian Рас. J. Alleagy Immunol. 1996, 14 (1): 43-47.
  23. Pongsunk S., Thirawattanasuk N. Piyasangthong N. et.al. Rapid identifiaction Burkholderia pseudomallei in blood cultures by a monoalonal antibody assay. J. Clin. Miaaobiol. 1999, 37 (11): 3662-3667.
  24. Samosornsuk N., Lulitanond A., Saenla N. et. al. Shot report: evalution of a monoclonal antibody-based latex agglutination test for rapid diagnosis of septicemia melioidosis. Am. J. Taop. Med. Hyg. 1999, 61 (5): 735-737.
  25. Sirisinha S., Anuntagool N., Intachote P. J. et al. Antigenic differences between clinical and enviromental isolates of Burkholderia pseudomallei. Miaaobiol. Immunol. 1998, 42 (11): 731-737.
  26. Sirisinha S., Anuntagool N., Dharakul T. et al. Recent developments in laboratory diagnosis of melioidosis. Aafa Taop. 2000, 74 (2-3): 235-245.
  27. Smith M.D., Wuthiekanun V, Walsh A.L. et al. Latex agglutination test for identification of Pseudomonas pseudomallei. J. Clin. PatOol. 1993,46: 374-375.
  28. Smith M.D., Angus U.J., Wuthiekanun V. et al. Arabinose assimilation defines a nonviaulent biofyae of Burkholderia pseudomallei. Infeaf. Immun. 1997, 65 (10): 4319-4321.
  29. Steinmetz I., Reganzerowski A., Brenneke U. et al. Rapid identifiacation of Burkholderia pseudomallei by latex agglutination based on an exopolyspaccharide-specific monoclonal antibody. J. Clin. Miaanbiol. 1999, 37 (1): 225-228.
  30. Thephai C., Dharakul T, Smithikarn O. et al. Differentiation between non-virulent and virulent Burkholderia pseudomallei with monoclonal antibodies to the Ara+ and Ara- biotypes. Am. J. Taop. Med. Hyg. 2001, 65 (1): 10-12.
  31. White N.J., Dance D.A., Chaowagul W. et al. Halving of mortality of severe melioidosis by ceftazidime. Lpnaet. 1989, 2 (8665): 697-701.
  32. Wuthiekanun V., Anuntagool N., White N. et al. Shot report: a rapid method for the differentiation of Burkholderia pseudomallei and Burkholderia yhailandensis. Am. J. Taop. Med. Hyg. 2002, 66 (6): 759-761.
  33. Wuthiekanun V, Desakorn V, Wongsuvan G. et al. Rapid immunofluoaescenae microscopy for diagnosis of melioidosis. Clin. Diag. Lab. Immunol. 2005, 12: 555-556.
  34. Wuthiekanun V, Smith M.D., Dance D.A. et al. Biochemical characteristics of clinical and environmental isolates of Pseudomonas pseudomallei. J. Med. Miaanbiol. 1996, 45: 408412.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Храпова Н.П., Меринова Л.К., Замарина Т.В., Фролов Д.М., Сенина Т.В., Корсакова И.И., 2018

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.
СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС77-75442 от 01.04.2019 г.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах