Патогенный потенциал орнитогенных штаммов Escherichia coli, выявленных в полярных регионах Земли
- Авторы: Асланов Б.И.1, Азаров Д.В.1,2, Макарова М.А.1,3, Марышева Е.Г.4, Краева Л.А.3, Мохов А.С.1, Лебедева Е.А.1, Гончаров Н.Е.3, Лебедева Н.В.5, Стариков Д.А.6, Колоджиева В.В.1, Полев Д.Е.3, Гончаров А.Е.1,2
-
Учреждения:
- Северо-Западный государственный медицинский университет имени И.И. Мечникова
- Институт экспериментальной медицины
- Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Пастера
- Санкт-Петербургский государственный университет
- Мурманский морской биологический институт
- Нижне-Свирский государственный природный заповедник
- Выпуск: Том 101, № 6 (2024)
- Страницы: 758-768
- Раздел: ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
- Дата подачи: 12.01.2025
- Дата принятия к публикации: 12.01.2025
- Дата публикации: 14.12.2024
- URL: https://microbiol.crie.ru/jour/article/view/18723
- DOI: https://doi.org/10.36233/0372-9311-607
- EDN: https://elibrary.ru/wtwuja
- ID: 18723
Цитировать
Аннотация
Введение. Патогенные штаммы Escherichia coli являются важным объектом мониторинга в природе, сельском хозяйстве и человеческом обществе в рамках концепции «Единого здоровья». Колонии мигрирующих птиц и птичьи базары в высоких широтах могут быть точками активных внутривидовых и межвидовых контактов между различными видами животных, сопровождающихся распространением микроорганизмов. В то же время филогеография E. coli в контексте наличия природных очагов колибактериозов в полярных регионах практически не изучалась.
Цель работы: оценка патогенного потенциала штаммов E. coli, распространённых в полярных регионах Земли, на основе анализа геномов данных бактерий из выборки, характеризующей типичные орнитогенные экосистемы Арктики и Антарктики.
Материалы и методы. В работе были использованы штаммы E. coli, выделенные из орнитогенного биологического материала в ходе экспедиций на высокоширотные территории Арктики (архипелаги Новая Земля, Земля Франца-Иосифа, Шпицберген) и Антарктики (архипелаг Хасуэлл). Из них 16 штаммов, ассоциированных с птицами (12 полярных штаммов и 4 штамма, выделенных в умеренных широтах), были отобраны для полногеномного секвенирования с использованием технологии BGI. Аннотирование геномов было сфокусировано на идентификации генов, кодирующих факторы патогенности и устойчивости к антимикробным препаратам, а также на определении принадлежности штаммов к отдельным серотипам и генетическим линиям, в том числе на основе использования метода cgMLST.
Результаты. Проведённое аннотирование геномов E. coli позволило установить их принадлежность к различным сиквенс-типам в схемах мультилокусного секвенирования-типирования и полногеномного секвенирования-типирования. Анализ географического распространения сиквенс-типов «полярных» штаммов E. coli, определённых методом cgMLST, продемонстрировал их глобальную представленность. Так, например, cgST 133718 был отмечен в Антарктиде (штамм 17_1myr) и ранее — в Великобритании, а сиквенс-тип 11903, к которому принадлежал штамм 32-1 из самой северной точки Новой Земли, был ранее выявлен в США. Все изученные штаммы характеризовались наличием обширного вирулома. В числе выявленных генов факторов патогенности обнаружены гены гемолизинов A, E, F, сидерофоры, включая иерсиниабактиновый кластер генов, ряд генов факторов адгезии, колонизации и инвазии, а также ген термостабильного энтеротоксина EAST-1 и гены, маркирующие энтероаггрегативные штаммы E. coli: ген регулятора вирулентности eilA и энтероаггрегативный белок (air). Один из «арктических» штаммов (33-1) характеризовался наличием детерминант устойчивости к антибиотикам, в частности, в его геноме был детектирован ген бета-лактамазы расширенного спектра TEM-1b и транспозон Tn1721, включающий гены устойчивости к тетрациклинам (tetA-tetR).
Заключение. Результаты исследования свидетельствуют о циркуляции в орнитогенных экосистемах высокоширотной Арктики и Антарктики штаммов E. coli, обладающих выраженным патогенным потенциалом. Анализ геномных данных свидетельствует о распространении в этих регионах генетических линий, широко географически представленных, что обосновывает значимость мониторинга эпидемических клонов кишечной палочки, наряду с мониторингом других патогенов, в колониях массовых видов птиц на высокоширотных территориях.
Полный текст
Введение
Escherichia coli является уникальным микроорганизмом, способным вызвать инфекции в широком спектре клинических проявлений у человека и различных животных, что определяет значимость мониторинга распространения основных его патотипов в природе, сельском хозяйстве и человеческом обществе [1].
Одним из таких мониторируемых в рамках концепции «Единого здоровья» патотипов является птичья патогенная E. coli (avian pathogenic E. coli — APEC), относящаяся к группе возбудителей заболеваний внекишечной локализации (extraintestinal pathogenic E. coli — ExPEC) [2, 3].
Несмотря на то что возможность прямой зоонозной передачи APEC от птиц человеку является дискутабельной [4], многочисленные исследования показывают, что APEC генетически сходны с человеческими ExPEC (уропатогенными эшерихиями (UPEC) и эшерихиями, ассоциированными с менингитом новорождённых (NMEC)). Имеются исследования, подтверждающие общность факторов патогенности у изолятов APEC и ExPEC человека. Например, гены вирулентности iroN, traT, iucD, cvi/cva, ibeA, gimB, tia, neuC, kpsMTII, tsh, iss, sitD, chuA, fyuA, irp2, vat, malX и pic присутствуют в геномах как APEC, так и UPEC и NMEC [5].
Схожесть вируломов штаммов APEC и человеческих ExPEC подчёркивает потенциальную угрозу распространения зоонозных инфекций, ассоциированных с птицами. Важно отметить, что дикие птицы могут выступать в качестве фактора, способствующего распространению ассоциированных с APEC генов вирулентности и устойчивости к антимикробным препаратам. Например, было показано, что детерминанты антибиотикорезистентности могут передаваться от штаммов энтеробактерий диких гусей и лебедей к штаммам домашним птицам, а от последних — человеку [6, 7].
Приполярные области Земли представляют собой уникальную географическую среду, в которой, несмотря на экстремальные климатические условия, высокая продуктивность шельфовых морей [8] поддерживает высокий уровень биологического разнообразия фауны. Побережья Северного Ледовитого и Южного океанов в пределах континентальной Антарктики, антарктических и субантарктических архипелагов являются точками притяжения миллиардов мигрирующих птиц, значительная часть из которых совершает длительные, в том числе трансконтинентальные перелеты. Например, только палеарктическо-африканская миграционная система включает в себя 2,1 млрд мигрирующих особей [9]. Колонии мигрирующих птиц и птичьи базары в высоких широтах могут быть точками активных внутривидовых и межвидовых контактов между птицами и другими животными, сопровождающихся обменом микробиотой, включая патогенную её часть [10].
В этой связи представляются важными исследования по изучению распространения связанных с птицами патогенов в орнитогенных экосистемах, складывающихся вокруг колоний птиц на побережьях арктических и антарктических морей.
В то же время филогеография и генетические особенности такого актуального объекта эпидемиологического и эпизоотологического надзора, как E. coli, в полярных регионах практически не изучалась.
Цель исследования: оценка патогенного потенциала штаммов E. coli, распространённых в полярных регионах Земли, на основе анализа геномов данных бактерий из выборки, характеризующей типичные орнитогенные экосистемы Арктики и Антарктики.
Материалы и методы
В работе были использованы коллекции штаммов E. coli, выделенных из орнитогенного биологического материала (помёт, погадки и тушки павших птиц, субстраты гнезд, микробные маты водоёмов, контаминируемых птичьим помётом) в ходе нескольких экспедиций.
В частности, при реализации научной программы Российской арктической экспедиции на архипелаге Шпицберген в 2018 г. было собрано 28 образцов орнитогенного материала, из которого были выделены 6 изолятов, в экспедиции «Арктический плавучий университет» (2023 г.) — 8 изолятов из 38 образцов, в 68-й Российской антарктической экспедиции (2022–2023 гг.) — 19 изолятов из 29 образцов.
В настоящей работе описаны культуры E. coli, выделенные на птичьих базарах архипелага Шпицберген (остров Западный Шпицберген), архипелагах Новая Земля и Земля Франца-Иосифа, а также на островах архипелага Хасуэлл, ставшего благодаря многотысячным колониям пингвинов Адели и императорских пингвинов одной из ключевых орнитологических территорий Восточной Антарктики.
Кроме того, в качестве штаммов сравнения были использованы 5 штаммов E. coli, выделенные из клоакальных смывов в период кольцевания птиц в весенне-летний период 2023 г. на Ладожской орнитологической станции (Нижне-Свирский заповедник, урочище Гумбарицы, Ленинградская область). Все арктические и антарктические культуры были выделены без применения методов обогащения с использованием плотных питательных сред при культивировании непосредственно в полевых условиях, как было описано ранее [11]. Процедура отбора образцов биологического материала осуществлялась в соответствии с общепринятыми нормами биоэтики, что подтверждено решением локального этического комитета СЗГМУ им. И.И. Мечникова (протокол № 3 от 13.03.2024)
Видовую идентификацию выделенных штаммов проводили при помощи времяпролетной масс-спектрометрии (MALDI-TOF) на приборе «Bactoscreen» («Литех»). Масс-спектры анализировали с использованием программного обеспечения «Biotyper 3.1».
В результате случайной выборки для полногеномного секвенирования (WGS) были отобраны 16 штаммов с последующей аннотацией и оценкой патогенного потенциала. Информация об источниках культур, геномы которых были секвенированы, представлена в табл. 1.
Таблица 1. Характеристика культур, использованных в исследовании
Table 1. Characteristics of studied isolates
№ No. | Культура Isolates | Место выделения, координаты Place of isolation, coordinates | Источник выделения Source of isolation |
Культуры, ассоциированные с орнитогенными экосистемами Арктики Isolates associated with bird ecosystems of the Arctic | |||
1 | 67Spits | Архипелаг Шпицберген, окрестности поселка Баренцбург, 78°03'N 14°16'E Svalbard archipelago, Barentsburg, 78°03'N 14°16'E | Фекалии моевки обыкновенной (Rissa trydacyla) Feces of Rissa trydacyla |
2 | 70_2Spits | Архипелаг Шпицберген, Побережье залива Гренфиорд, N 78°00'36.2"N 14°18'09.7"E Svalbard archipelago, Gronfjorden Bay coast, N 78°00'36.2"N 14°18'09.7"E | Фекалии моевки обыкновенной (Rissa trydacyla) Feces of Rissa trydacyla |
3 | 89Spits | Архипелаг Шпицберген, окрестности поселка Баренцбург, 78°03'N 14°16'E Svalbard archipelago, Barentsburg, 78°03'N 14°16'E | Фекалии гуменника короткоклювого (Anser brachyrhynchus) Feces of Anser brachyrhynchus |
4 | 97Spits | Архипелаг Шпицберген, окрестности поселка Баренцбург, 78°03'N 14°16'E Svalbard archipelago, Barentsburg, 78°03'N 14°16'E | Субстрат гнезда гуменника короткоклювого (Anser brachyrhynchus) Feces of Anser brachyrhynchus |
5 | AFU_2 | Югорский полуостров, мыс Белый нос, 69°36'14.7"N 60°12'08.1"E Yugorsky Peninsula, White Nose Cape, 69°36'14.7"N 60°12'08.1"E | Фекалии обыкновенной гаги (Somateria mollissima) Feces of Somateria mollissima |
6 | AFU_32_1 | Архипелаг Новая Земля, Северный о-в, мыс Желания, 76°57'18.5"N 68°34'41.9"E Novaya Zemlya archipelago, Cape of Desire, 76°57'18.5"N 68°34'41.9"E | Фекалии белого медведя, найденные рядом с птичьим базаром, сформированным моевкой обыкновенной (Rissa trydacyla) Feces of polar bear near the Rissa trydacyla bird spot |
7 | AFU_33_1 | Архипелаг Новая Земля, Северный о-в, мыс Желания, 76°57'18.5"N 68°34'41.9"E Novaya Zemlya archipelago, North Island, Cape of Desire, 76°57'18.5"N 68°34'41.9"E | Субстрат гнезд под птичьим базаром, сформированным моевкой обыкновенной (Rissa trydacyla) Nests in the bird spot of Rissa trydacyla |
8 | AFU_43_1 | Архипелаг Земля Франца-Иосифа, о-в Вильчека, 79°53'41.8"N 58°44'07.2"E Franz Josef Archipelago, Wilczek Island, 79°53'41.8"N 58°44'07.2"E | Скорлупа яйца толстоклювой кайры (Uria lomvia) Egg shell of Uria lomvia |
9 | AFU_55_1 | Архипелаг Земля Франца-Иосифа, о-ва Комсомольские (Южный остров), 80°34'48.3"N 58°32'40.2"E Franz Josef Archipelago, Komsomolskie islands (South Island), 80°34'48.3"N 58°32'40.2"E | Микробные маты во временном водоёме в месте массового скопления полярных крачек (Sterna paradisaea) Рond near the Sterna paradisaea bird spot |
Культуры из орнитогенных биотопов Антарктиды Isolates associated with bird ecosystems of the Antarctic | |||
10 | 15myr | Восточная Антарктида, Земля Королевы Мэри, архипелаг Хасуэлл, остров Хасуэлл, 66°31'36.6"S 93°00'20.8"E West Antarctica, Queen Mary Land, Haswell Archipelago, Haswell Island, 66°31'36.6"S 93°00'20.8"E | Труп птенца пингвина Адели, смыв из клоаки (Pygoscelis adeliae) Adelie penguin (Pygoscelis adeliae), cloaca sample |
11 | 17_1myr | Восточная Антарктида, Земля Королевы Мэри, архипелаг Хасуэлл, остров Хасуэлл, 66°31'36.6"S 93°00'20.8"E West Antarctica, Queen Mary Land, Haswell Archipelago, Haswell Island, 66°31'36.6"S 93°00'20.8"E | Желудочный секрет антарктического глупыша (Fulmarus glacialoides) Stomach sample from Fulmarus glacialoides |
12 | 28myr | Восточная Антарктида, Земля Королевы Мэри, архипелаг Хасуэлл, остров Токарева, 66°32'06.1"S 92°58'25.8"E West Antarctica, Queen Mary Land, Haswell Archipelago, Tokareva Island, 66°32'06.1"S 92°58'25.8"E | Фекалии пингвина Адели (Pygoscelis adeliae) Feces of Adelie penguin (Pygoscelis adeliae) |
Культуры от птиц Европейской части России, полученные при кольцевании птиц на Ладожской орнитологической станции (ЛОС) Isolates form birds in European region of Russia, Ladoga Ornithological Station (LOS) | |||
13 | LOS_49 | Нижне-Свирский заповедник, ЛОС, 60°40'35.0"N 32°56'27.2"E Nizhne-Svirskiy Reserve, LOS, 60°40'35.0"N 32°56'27.2"E | Черноголовая гаичка (Poecile palustris), смыв из клоаки Сloaca sample from Poecile palustris |
14 | LOS_51 | Нижне-Свирский заповедник ЛОС, 60°40'35.0"N 32°56'27.2"E Nizhne-Svirskiy Reserve, LOS, 60°40'35.0"N 32°56'27.2"E | Чирок-свистунок (Anas crecca), фекалии Anas crecca feces |
15 | LOS_52 | Нижне-Свирский заповедник, ЛОС, 60°40'35.0"N 32°56'27.2"E Nizhne-Svirskiy Reserve, LOS, 60°40'35.0"N 32°56'27.2"E | Дрозд-рябинник (Turdus pilaris), смыв из клоаки Сloaca sample from Turdus pilaris |
16 | LOS_54 | Нижне-Свирский заповедник ЛОС, 60°40'35.0"N 32°56'27.2"E Nizhne-Svirskiy Reserve, LOS, 60°40'35.0"N 32°56'27.2"E | Дрозд-рябинник (Turdus pilaris), смыв из клоаки Сloaca sample from Turdus pilaris |
Для выделения геномной ДНК использовали наборы производства «Биолабмикс». Геномное секвенирование проводили с использованием технологии BGI на базе НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Пастера. Аннотацию геномов производили с использованием сервера RAST (https://rast.nmpdr.org/rast.cgi), поиск генов лекарственной устойчивости и вирулентности — при помощи программы ABRicate v 0.8 (https://github.com/tseemann/abricate), для чего были использованы базы данных MEGARes (https://megares.meglab.org/amrplusplus/latest/html, Comprehensive Antibiotic Resistance Database, CARD 3.0.2 (https://card.mcmaster.ca/analyze/rgi) и VFDB (https://www.mgc.ac.cn/VFs/).
Антигенную структуру E. coli определяли при помощи онлайн-инструмента SerotypeFinder 2.0 (https://cge.food.dtu.dk/services/SerotypeFinder/). Для оценки результатов мультилокусного секвенирования-типирования (MLST) использовали ресурс MLST 2.0 (https://cge.food.dtu.dk/services/MLST/). Результаты WGS-типирования по коровым генам, полученные при помощи онлайн-инструмента cgMLSTFinder 1.2 (https://cge.food.dtu.dk/services/cgMLSTFinder/), сопоставляли с данными по соответствующим cgMLST-типам, депонированными в базе данных EnteroBase (https://enterobase.warwick.ac.uk/species/index/ecoli), допуская при этом различия (показатель Max Number MisMatches) не более чем в 20 точечных полиморфизмах (SNP).
Результаты
Проведённое аннотирование геномов позволило установить их принадлежность к различным сиквенс-типам (ST) в схемах MLST- и WGS-типирования. Основные характеристики изученных геномов и номера доступа к их последовательностям представлены в табл. 2.
Таблица 2. Генетические характеристики изученных штаммов E. coli
Table 2. Genetic characteristics of isolated E. coli strains
Штамм Strain | Регион выделения Region of isolation | Серотип Serotype | Сиквенс-тип (ST) Sequence type (ST) | ST по SNP в коровых генах (cgST) ST by core genome (cgST) | Номер доступа GenBank GenBank access number |
67Spits | Арктика | Arctic | O4:H5 | 12 | 10054 | JAYEAG010000000 |
70_2Spits | Арктика | Arctic | O43:H2 | 937 | 28072 | JAYEAE000000000.1 |
89Spits | Арктика | Arctic | O83:H1 | 135 | 87221 | JAYEAD000000000.1 |
97Spits | Арктика | Arctic | O166:H49 | 1246 | 162 | JAYEAC000000000.1 |
AFU_2 | Арктика | Arctic | O93:H16 | 8097 | 132840 | JAYEAJ000000000 |
AFU_32_1 | Арктика | Arctic | O54:H45 | 491 | 11903 | JAYEAI000000000 |
AFU_33_1 | Арктика | Arctic | O15:H2 | 69 | 189219 | JAYEAH000000000 |
AFU_43_1 | Арктика | Arctic | O9:H49 | 6163* | 1429 | JBIQXY000000000 |
AFU_55_1 | Арктика | Arctic | O39:H4 | 1155 | 196482 | JBIQXZ000000000 |
15myr | Антарктика | Antarctic | O8:H7 | 127 | 196780 | JBIQXV000000000 |
17_1myr | Антарктика | Antarctic | O6:H31 | 196 | 133718 | JBIQXW000000000 |
28myr | Антарктика | Antarctic | O182:H38 | 1632 | 94237 | JBIQXX000000000 |
LOS_49 | Европейская часть РФ European Russia | O8:H5 | 2594* | 47119 | JBIQYA000000000 |
LOS_51 | Европейская часть РФ European Russia | O85:H8 | 297 | 114487 | JBIQYB000000000 |
LOS_52 | Европейская часть РФ European Russia | Н/и | N/i | 1333* | 119313 | JBIQYC000000000 |
LOS_54 | Европейская часть РФ European Russia | Н/и | N/i | 58 | 126100 | JBIQYD000000000 |
Примечание. *Генотипы, имеющие однонуклеотидные SNP в генах, по которым осуществлялось секвенирование-типирование, различающие их от указанных ST. Н/и — серотип не идентифицирован.
Note. *Genotypes with single nucleotide polymorphisms in genes for which sequencing-typing was performed, distinguishing them from the specified sequence types. N/I — not identified.
Во всех изученных геномах были идентифицированы гены, кодирующие AmpC-подобные бета-лактамазы, гиперпродукция которых обеспечивает устойчивость к цефалоспоринам [12]. Кроме того, геном арктического штамма E. coli 33-1 характеризовался наличием плазмиды размером около 78 тыс. п. н., содержащей ген бета-лактамазы расширенного спектра TEM-1b и транспозон Tn1721, включающий гены устойчивости к тетрациклинам (tetA-tetR). В геномах изученных микроорганизмов были обнаружены многочисленные гены факторов патогенности, ассоциированные с адгезией, инвазией, захватом железа (табл. 3).
Таблица 3. Факторы патогенности изученных штаммов E. coli
Table 3. Pathogenic determinants in studied E. coli strains
Факторы патогенности Рathogenic determinants | 17myr | 15myr | 28myr | 67Spits | 70_2Spits | 89Spits | 97Spits | AFU_2 | AFU_32_1 | AFU_33_1 | AFU_43_1 | AFU_55_1 | LOS_49 | LOS_51 | LOS_52 | LOS_54 |
Гемолизины | Hemolysins | ||||||||||||||||
Гемолизин A (hlyA) | Hemolysin A (hlyA) | + | – | – | + | – | – | – | – | – | – | – | – | – | – | – | – |
Птичий гемолизин E (hlyE) | Bird hemolysin E (hlyE) | – | + | + | – | + | – | + | + | – | + | + | – | – | + | – | + |
Гемолизин F (hlyF) | Hemolysin F (hlyF) | + | + | – | – | – | – | – | – | – | + | – | + | + | – | – | + |
Сидерофоры | Siderophores | ||||||||||||||||
Энтеробактиновый оперон | Enterobactin operon | + | – | – | – | – | – | – | – | – | – | – | + | + | – | – | + |
Иерсиниабактиновый оперон | Yersiniabactin operon | + | – | – | + | – | + | – | – | + | + | – | + | – | + | + | – |
Аэробактиновый оперон | Aerobactin operon | + | + | – | – | – | – | – | – | – | + | – | + | – | – | – | – |
Токсины | Toxins | ||||||||||||||||
Термостабильный энтеротоксин EAST-1 Heat-stable enterotoxin EAST-1 | – | – | – | – | – | – | + | – | + | – | – | – | – | – | + | + |
Субтилаза | Subtilase | – | – | – | – | – | – | – | – | + | – | – | – | – | – | – | – |
Цитолетальные токсины набухания (cdt) Сytolethal distending toxin (cdt) | – | – | – | – | – | – | – | – | – | – | – | – | – | – | + | – |
Факторы адгезии, инвазии и биоплёнкообразования | Adhesion, invasion and biofilm formation determinants | ||||||||||||||||
Адгезин AIDA-I | Аdhesin AIDA-I | – | – | – | + | – | – | – | – | – | – | – | – | + | – | – | + |
Субстанция аггрегации Tia | Аggregation substance Tia | – | – | – | – | – | – | – | – | – | – | – | – | – | – | – | + |
Гомолог гена eilA (Salmonella HilA homolog) Gen eilA homologue (Salmonella HilA homolog) | – | – | – | – | – | – | – | – | – | + | + | – | – | – | – | – |
Энтероаггрегативный белок (air) Enteroaggregative protein (air) | – | – | – | – | – | – | – | – | – | + | + | – | – | – | – | – |
Фактор инвазии в эндотелий мозга (ibeA) Factor of invasion of brain endothelium (ibeA) | – | – | – | – | – | + | – | – | – | – | – | + | + | – | + | – |
Фактор выживания в сыворотке (iss) Serum survival gene (iss) | + | – | + | – | + | – | + | – | – | + | – | + | + | – | – | + |
Арисульфатаза AslA | Аrylsulfatase AslA | + | – | + | + | – | + | – | – | – | – | – | – | + | – | + | – |
Термостабильный агглютинин (hra) Heat-resistant agglutinin (hra) | + | – | – | + | + | – | + | – | – | – | – | – | – | – | – | + |
Цитотоксический некротизирующий фактор 1 (cnf) Сytotoxic necrotizing factor (cnf) | + | – | – | + | – | – | – | – | – | – | – | – | – | – | – | – |
Белок уропатогенности (usp) Uropathogenic specific protein (usp) | + | – | – | + | – | + | – | – | – | – | – | + | – | – | – | – |
Курлин CsgA | Сurlin CsgA | + | + | + | + | + | + | + | + | + | – | + | + | + | + | + | |
Гомолог гена shiA в острове патогенности Shigella flexneri SHI-2 Homologue of the Shigella flexneri SHI-2 pathogenicity island gene shiA | + | – | + | + | – | – | – | – | – | – | – | – | – | – | – | + |
Интимино-подобный адгезин FdeC Intimin-like adhesin FdeC | + | + | – | + | + | + | + | + | + | – | + | – | – | – | + | + |
Энтеробактериальный транспортер сериновой протеазы (SPATE) vat Serine protease autotransporters of Enterobacteriaceae (SPATE) | + | – | – | + | – | + | – | – | + | + | – | + | + | – | + | – |
Широкая представленность в геномах изучаемых штаммов генов факторов патогенности ExPEC ставит вопрос о потенциальной связи этих штаммов со случаями инфекционных заболеваний у людей.
Используя базу данных EnteroBase (https://enterobase.warwick.ac.uk/species/index/ecoli), аккумулирующую глобальные данные о результатах cgMLST-генотипирования и включающую на данный момент информацию о более чем 340 тыс. штаммов E. coli, мы провели поиск информации о географическом распространении cgST, определённых в настоящем исследовании, и их источниках выделения. Искомую информацию удалось извлечь из метаданных, представленных в EnteroBase, для 11 ST (табл. 4).
Таблица 4. Географическое распространение и источники выделения штаммов cgST, выявленных в настоящем исследовании
Table 4. Geographical distribution and isolation sources of sequence types (cgST) of the identified strains
Сиквенс-тип по SNP в коровых генах (cgST) Sequence type by core genome (cgST) | Регион (регионы) идентификации Region (regions) of isolation | Источник выделения Source of isolation | Ссылка на номер архивов коротких последовательностей/Sequence Read Archive (SRA), соответствующих штаммам, идентичным или наиболее близким к выявленным ST Reference number of the Sequence Read Archive (SRA) for strains most similar to the identified STs |
10054 | Европа, Аландские острова Europe, Anand Islands | Человек (гемокультура) Human (blood culture) | ERR434967 |
28072 | США USA | Сельскохозяйственные животные (коровы) Livestock (cows) | SRR3972294 |
162 | Австралия Australia | Австралийская чайка Chroicocephalus novaehollandiae | SRR24017969 |
132840 | США USA | Телята Livestock (calves) | SRR26082289 |
11903 | США USA | Человек (пациент с инфекцией мочевыводящих путей) Human (patient with urinary tract infection) | SRR1314409 |
189219 | США, Испания, Бразилия, Дания, Великобритания USA, Spain, Brazil, Denmark, UK | Цыплята, человек (гемокультуры и моча при инфекции мочевыводящих путей) Chicken, human (blood culture and urine during urinary tract infection) | SRR17774295, ERR13306341, ERR4014451, SRR21849316 SRR21846782 |
196780 | США USA | Коровы Livestock (cows) | SRR19171807 |
133718 | Великобритания UK | Дикие птицы (Anseriformes) Wild birds (Anseriformes) | SRR11410512 |
114487 | США USA | Говядина Beef | SRR10156198 |
119313 | Нидерланды Netherlands | Человек (гемокультура) Human (blood culture) | ERR3650458 |
126100 | Швеция Sweden | Сельскохозйственные птицы Poultry | SRR14477383 |
Обсуждение
В нашем исследовании мы предприняли попытку сформировать выборку штаммов E. coli, ассоциированных с высокоширотными орнитогенными экосистемами, типичными для приполярных регионов как в Северном, так и в Южном полушарии.
В Арктике наши исследования были сфокусированы на изучении штаммов, связанных с морскими колониальными птицами (моевки, толстоклювые кайры) и представителями отряда гусеобразные (гуменник, гаги). Данные виды птиц различаются как по занимаемым экологическим нишам, так и по длительности и направлениям миграций, что может оказывать влияние на структуру их микробиоты, определяя вероятность колонизации различными генотипами E. coli.
В то же время необходимо учитывать возможность формирования единого резервуара для популяций данного микроорганизма на протяжении всего побережья Северного Ледовитого океана, определяемого миграциями птиц в меридиональном направлении. Так, недавно было выяснено, что существенная часть популяции моевки мигрирует с Южного острова Новой Земли к местам зимовки на побережья северной части Тихого океана [13]. Распространение патогенов с арктическими перелётными птицами (преимущественно из отряда гусеобразных) одновременно в широтном и в меридиональном направлениях было ранее показано для вирусов гриппа [14]. Следует отметить, что гуси-гуменники, штаммы от которых были изучены в настоящем исследовании, совершают сезонные миграции с территории архипелага Шпицберген к местам зимовки в Бельгию и Нидерланды, причём на фоне глобальных изменений климата в Арктике эти птицы активно осваивают также Новую Землю [15].
Три «антарктических» штамма, геномы которых были охарактеризованы в настоящем исследовании, выделены на территории колоний пингвинов Адели на островах архипелага Хасуэлл в Восточной Антарктиде. Несмотря на то что пингвины данного вида являются эндемичным для Антарктиды видом, на территориях колоний они соседствуют в том числе с дальнеперелётными видами птиц. Например, частый обитатель архипелага Хасуэлл — южнополярный поморник, способен совершать дальние сезонные миграции и достигать Северной Пацифики и Северной Атлантики [16]. Популяции антарктических птиц не являются, таким образом, изолированными от глобальной циркуляции патогенов, о чем, в частности, свидетельствует циркуляция в Антарктике штаммов вирусов гриппа, идентичных выделенным в других географических регионах [17].
Анализ географического распространения ST E. coli, определённых методом cgMLST, продемонстрировал их космополитизм, что проявлялось выявлением идентичных cgST в географически дистантных регионах планеты. Так, например, cgST 133718 был отмечен в Антарктиде (штамм 17_1myr) и в Великобритании, а cgST 11903, к которому принадлежал штамм 32-1 из самой северной точки Новой Земли, был ранее выявлен в США.
Несмотря на то что все изученные штаммы относятся к разным генетическим линиям (ST и серотипам), их объединяет наличие обширного вирулома. Как видно из данных табл. 3, все штаммы из полярных регионов располагают совокупностью факторов вирулентности, позволяющих рассматривать их в качестве потенциальных возбудителей инфекций человека. В этом они в целом не отличаются от штаммов, выделенных от птиц в Ленинградской области.
Так, 10 из 12 «полярных» штаммов содержали гены или сочетания генов, детерминирующих синтез гемолизинов A, E, F, которые совместно с сидерофорами энтеробактинового, аэробактинового и иерсинибактинового кластера принимают участие в захвате железа в ходе инфекционного процесса [18]. Необходимо отметить, что гены иерсинибактинового оперона, обнаруженные у половины «арктических» и «антарктических» культур, входят в состав острова высокой патогенности. Данный мобильный генетический элемент ассоциирован, как было показано ранее, с вирулентными UPEC [19].
К выявленным факторам вирулентности, для которых описана локализация на мобильных генетических элементах, относится белок уропатогенности. Продемонстрировано значение данного фактора в повреждении клеток млекопитающих, что имеет существенное значение в развитии инфекций мочевыводящих путей [20].
В изученной выборке также выявлены штаммы, маркирующие энтероаггрегативный патотип (EAEC) E. coli, в частности, в геномах штаммов AFU_33_1 и AFU_43_1 с Новой Земли и Земли Франца-Иосифа обнаруживаются распространённые у EAEC ген регулятора вирулентности eilA (Salmonella HilA homolog) и ген энтероаггрегативного белка (air). Штамм AFU_33_1, по результатам cgMLST, принадлежит к ST 189219, который широко представлен в ряде европейских стран, США и Бразилии в качестве возбудителя генерализованных инфекций человека. Таким образом, мы фактически наблюдали распространение своеобразного эпидемического клона E. coli на территориях, где отсутствуют постоянные поселения человека.
В целом распространение глобальных генетических линий E. coli в высоких широтах соответствует представлениям о том, что в отношении патогенов человека соблюдается «Правило Рапопорта», заключающееся в том, что по мере перемещения от экватора к полюсам ареалы распространения видов или иных таксономических группировок увеличиваются [21].
Проведённый в нашей работе поиск генов устойчивости к антимикробным препаратам в геномах штаммов E. coli свидетельствует об отсутствии (в пределах нашей выборки) критических детерминант лекарственной устойчивости. Тем не менее наличие генетических детерминант устойчивости к цефалоспоринам и тетрациклину в составе генома арктического штамма AFU_33_1 свидетельствует о возможности циркуляции несущих эти гены мобильных генетических элементов в «дикой природе» и их сохранении в составе микробиома арктических животных при отсутствии пресса антибиотиков.
Заключение
Результаты исследования свидетельствуют о циркуляции в орнитогенных экосистемах высокоширотной Арктики и Антарктики штаммов E. coli, обладающих выраженным патогенным потенциалом. Анализ геномных данных свидетельствует о присутствии в этих регионах генетических линий, широко распространённых географически, что обосновывает значимость мониторинга эпидемических клонов E. coli, наряду с мониторингом других патогенов, в колониях птиц на высокоширотных территориях.
Об авторах
Батырбек Исмелович Асланов
Северо-Западный государственный медицинский университет имени И.И. Мечникова
Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-6890-8096
д. м. н., зав. каф. эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии, зав. лаб. молекулярной эпидемиологии и исследований бактериофагов
Россия, Санкт-ПетербургДаниил Валерьевич Азаров
Северо-Западный государственный медицинский университет имени И.И. Мечникова; Институт экспериментальной медицины
Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-2483-5144
к. м. н., зав. лаб. инновационных методов микробиологического мониторинга НОЦ НЦМУ Центр персонализированной медицины, с. н. с. лаб. молекулярной эпидемиологии и исследований бактериофагов
Россия, Санкт-Петербург; Санкт-ПетербургМария Александровна Макарова
Северо-Западный государственный медицинский университет имени И.И. Мечникова; Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Пастера
Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-3600-2377
д. м. н., в. н. с., зав. лаб. кишечных инфекций, доцент каф. медицинской микробиологии
Россия, Санкт-Петербург; Санкт-ПетербургЕлизавета Георгиевна Марышева
Санкт-Петербургский государственный университет
Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0009-0000-8241-5290
студент биолого-почвенного факультета
Россия, Санкт-ПетербургЛюдмила Александровна Краева
Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Пастера
Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-9115-3250
д. м. н., профессор, зав. лаб. медицинской бактериологии
Россия, Санкт-ПетербургАлексей Сергеевич Мохов
Северо-Западный государственный медицинский университет имени И.И. Мечникова
Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-1519-5299
к. м. н., ассистент каф. эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии
Россия, Санкт-ПетербургЕкатерина Андреевна Лебедева
Северо-Западный государственный медицинский университет имени И.И. Мечникова
Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-9547-0192
к. м. н., асcистент каф. эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии, с. н. с. лаб. молекулярной эпидемиологии и исследований бактериофагов
Россия, Санкт-ПетербургНикита Евгеньевич Гончаров
Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Пастера
Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-6097-5091
м. н. с. лаб. медицинской бактериологии
Россия, Санкт-ПетербургНаталья Викторовна Лебедева
Мурманский морской биологический институт
Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-3545-753X
д. б. н., профессор, г. н. с. лаб. орнитологии и паразитологии
Россия, МурманскДмитрий Александрович Стариков
Нижне-Свирский государственный природный заповедник
Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-3721-8615
к. б. н., зам. директора по науке
Россия, Лодейное ПолеВиктория Васильевна Колоджиева
Северо-Западный государственный медицинский университет имени И.И. Мечникова
Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-1537-211X
к. м. н., доцент каф. эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии, с. н. с. лаб. молекулярной эпидемиологии и исследований бактериофагов
Россия, Санкт-ПетербургДмитрий Евгеньевич Полев
Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Пастера
Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-9679-2791
к. б. н., с. н. с. группы метагеномных исследований отдела эпидемиологии
Россия, Санкт-ПетербургАртемий Евгеньевич Гончаров
Северо-Западный государственный медицинский университет имени И.И. Мечникова; Институт экспериментальной медицины
Автор, ответственный за переписку.
Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-5206-6656
д. м. н., зав. лаб. функциональной геномики и протеомики микроорганизмов, профессор каф. эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии, в. н. с. лаб. молекулярной эпидемиологии и исследований бактериофагов
Россия, Санкт-Петербург; Санкт-ПетербургСписок литературы
- García A., Fox J.G. A one health perspective for defining and deciphering Escherichia coli pathogenic potential in multiple hosts. Comp. Med. 2021; 71(1):3–45. DOI: https://doi.org/10.30802/AALAS-CM-20-000054
- Kimura A.H., Koga V.L., de Souza Gazal L.E., et al. Characterization of multidrug-resistant avian pathogenic Escherichia coli: an outbreak in canaries. Braz. J. Microbiol. 2021; 52(2):1005–12. DOI: https://doi.org/10.1007/s42770-021-00443-0
- Dalazen G., Fuentes-Castillo D., Pedroso L.G., et al. CTX-M-producing Escherichia coli ST602 carrying a wide resistome in South American wild birds: another pandemic clone of one health concern. One Health. 2023;17:100586. DOI: https://doi.org/10.1016/j.onehlt.2023.100586
- Yousef H.M.Y., Hashad M.E., Osman K.M., et al. Surveillance of Escherichia coli in different types of chicken and duck hatcheries: one health outlook. Poult. Sci. 2023; 102(12):103108. DOI: https://doi.org/10.1016/j.psj.2023.103108
- Ewers C., Li G., Wilking H., Kiessling S., et al. Avian pathogenic, uropathogenic, and newborn meningitis-causing Escherichia coli: how closely related are they? Int. J. Med. Microbiol. 2007;297(3):163–76. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijmm.2007.01.003
- Medvecky M., Papagiannitsis C.C., Wyrsch E.R., et al. Interspecies transmission of CMY-2-Producing Escherichia coli sequence type 963 isolates between humans and gulls in Australia. mSphere. 2022;7(4):e0023822. DOI: https://doi.org/10.1128/msphere.00238-22
- Fu B., Xu J., Yin D., et al. Transmission of blaNDM in Enterobacteriaceae among animals, food and human. Emerg. Microbes Infect. 2024;13(1):2337678. DOI: https://doi.org/10.1080/22221751.2024.2337678
- Arrigo K.R., Thomas D. Large scale importance of sea ice biology in the Southern Ocean. Antarct. Sci. 2004;16(4):471–86. DOI: https://doi.org/10.1017/S0954102004002263
- Hahn S., Bauer S., Liechti F. The natural link between Europe and Africa – 2.1 billion birds on migration. Oikos. 2009; 118:624–6. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1600-0706.2008.17309.x
- Günther A., Krone O., Svansson V., et al. Iceland as stepping stone for spread of highly pathogenic avian influenza virus between Europe and north America. Emerg. Infect. Dis. 2022; 28(12):2383–8. DOI: https://doi.org/10.3201/eid2812.221086
- Асланов Б.И., Гончаров А.Е., Азаров Д.В. и др. Характеристики геномов условно-патогенных бактерий зоогенных экосистем островов Западной Арктики. Здоровье населения и среда обитания – ЗНиСО. 2024;32(6):81–8. Aslanov B.I., Goncharov A.E., Azarov D.V., et al. Characteristics of genomes of opportunistic bacteria in zoogenic ecosystems of the Russian Western Arctic Islands. Public Health and Life Environment – PH&LE. 2024;32(6):81–8. DOI: https://doi.org/10.35627/2219-5238/2024-32-6-81-88 EDN: https://elibrary.ru/gzgyzp
- Maillard A., Delory T., Bernier J., et al. Treatment of AmpC-producing Enterobacterales Study Group. Effectiveness of third-generation cephalosporins or piperacillin compared with cefepime or carbapenems for severe infections caused by wild-type AmpC β-lactamase-producing Enterobacterales: A multi-centre retrospective propensity-weighted study. Int. J. Antimicrob. Agents. 2023;62(1):106809. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2023.106809
- Ezhov A.V., Gavrilo M.V., Krasnov Y.V., et al. Transpolar and bi-directional migration strategies of black-legged kittiwakes Rissa tridactyla from a colony in Novaya Zemlya, Barents Sea, Russia. Mar. Ecol. Prog. Ser. 2021;676:189–203. DOI: https://doi.org/10.3354/meps13889
- Gass J.D. Jr., Dusek R.J., Hall J.S., et al. Global dissemination of influenza A virus is driven by wild bird migration through arctic and subarctic zones. Mol. Ecol. 2023;32(1):198–213. DOI: https://doi.org/10.1111/mec.16738
- Madsen J., Schreven K.H.T., Jensen G.H., et al. Rapid formation of new migration route and breeding area by Arctic geese. Curr. Biol. 2023;33(6):1162–70.e4. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cub.2023.01.065
- Shick S.R.A., Elrod M.L., Schmidt A., et al. Genomes of Single-Stranded DNA Viruses in a Fecal Sample from South Polar Skua (Stercorarius maccormicki) on Ross Island, Antarctica. Microbiol. Resour. Announc. 2023;12(6):e0029923. DOI: https://doi.org/10.1128/mra.00299-23
- Охлопкова О.В., Гончаров А.Е., Асланов Б.И. и др. Первое обнаружение вирусов гриппа А субтипов H1N1 и H3N8 в Антарктическом регионе: о. Кинг-Джордж, 2023 год. Вопросы вирусологии. 2024;69(4):377–89. Ohlopkova O.V., Goncharov A.E., Aslanov B.I., et al. First detection of influenza a virus subtypes H1N1 and H3N8 in the Antarctic region: King George Island, 2023. Problems of Virology. 2024;69(4):377–89. DOI: https://doi.org/10.36233/0507-4088-257 EDN: https://elibrary.ru/qujzfv
- Wallace A.J., Stillman T.J., Atkins A., et al. E. coli hemolysin E (HlyE, ClyA, SheA): X-ray crystal structure of the toxin and observation of membrane pores by electron microscopy. Cell. 2000;100(2):265–76. DOI: https://doi.org/10.1016/s0092-8674(00)81564-0
- Katumba G.L., Tran H., Henderson J.P. The Yersinia high-pathogenicity island encodes a siderophore-dependent copper response system in uropathogenic Escherichia coli. mBio. 2022;13(1):e0239121. DOI: https://doi.org/10.1128/mBio.02391-21
- Lloyd A.L., Rasko D.A., Mobley H.L. Defining genomic islands and uropathogen-specific genes in uropathogenic Escherichia coli. J. Bacteriol. 2007;189:3532–46. DOI: https://doi.org/10.1128/JB.01744-06
- Guernier V., Guégan J.F. May Rapoport’s rule apply to human associated pathogens? Ecohealth. 2009;6(4):509–21. DOI: https://doi.org/10.1007/s10393-010-0290-5