Патогенный потенциал орнитогенных штаммов Escherichia coli, выявленных в полярных регионах Земли

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Введение. Патогенные штаммы Escherichia coli являются важным объектом мониторинга в природе, сельском хозяйстве и человеческом обществе в рамках концепции «Единого здоровья». Колонии мигрирующих птиц и птичьи базары в высоких широтах могут быть точками активных внутривидовых и межвидовых контактов между различными видами животных, сопровождающихся распространением микроорганизмов. В то же время филогеография E. coli в контексте наличия природных очагов колибактериозов в полярных регионах практически не изучалась.

Цель работы: оценка патогенного потенциала штаммов E. coli, распространённых в полярных регионах Земли, на основе анализа геномов данных бактерий из выборки, характеризующей типичные орнитогенные экосистемы Арктики и Антарктики.

Материалы и методы. В работе были использованы штаммы E. coli, выделенные из орнитогенного биологического материала в ходе экспедиций на высокоширотные территории Арктики (архипелаги Новая Земля, Земля Франца-Иосифа, Шпицберген) и Антарктики (архипелаг Хасуэлл). Из них 16 штаммов, ассоциированных с птицами (12 полярных штаммов и 4 штамма, выделенных в умеренных широтах), были отобраны для полногеномного секвенирования с использованием технологии BGI. Аннотирование геномов было сфокусировано на идентификации генов, кодирующих факторы патогенности и устойчивости к антимикробным препаратам, а также на определении принадлежности штаммов к отдельным серотипам и генетическим линиям, в том числе на основе использования метода cgMLST.

Результаты. Проведённое аннотирование геномов E. coli позволило установить их принадлежность к различным сиквенс-типам в схемах мультилокусного секвенирования-типирования и полногеномного секвенирования-типирования. Анализ географического распространения сиквенс-типов «полярных» штаммов E. coli, определённых методом cgMLST, продемонстрировал их глобальную представленность. Так, например, cgST 133718 был отмечен в Антарктиде (штамм 17_1myr) и ранее — в Великобритании, а сиквенс-тип 11903, к которому принадлежал штамм 32-1 из самой северной точки Новой Земли, был ранее выявлен в США. Все изученные штаммы характеризовались наличием обширного вирулома. В числе выявленных генов факторов патогенности обнаружены гены гемолизинов A, E, F, сидерофоры, включая иерсиниабактиновый кластер генов, ряд генов факторов адгезии, колонизации и инвазии, а также ген термостабильного энтеротоксина EAST-1 и гены, маркирующие энтероаггрегативные штаммы E. coli: ген регулятора вирулентности eilA и энтероаггрегативный белок (air). Один из «арктических» штаммов (33-1) характеризовался наличием детерминант устойчивости к антибиотикам, в частности, в его геноме был детектирован ген бета-лактамазы расширенного спектра TEM-1b и транспозон Tn1721, включающий гены устойчивости к тетрациклинам (tetA-tetR).

Заключение. Результаты исследования свидетельствуют о циркуляции в орнитогенных экосистемах высокоширотной Арктики и Антарктики штаммов E. coli, обладающих выраженным патогенным потенциалом. Анализ геномных данных свидетельствует о распространении в этих регионах генетических линий, широко географически представленных, что обосновывает значимость мониторинга эпидемических клонов кишечной палочки, наряду с мониторингом других патогенов, в колониях массовых видов птиц на высокоширотных территориях.

Полный текст

Введение

Escherichia coli является уникальным микроорганизмом, способным вызвать инфекции в широком спектре клинических проявлений у человека и различных животных, что определяет значимость мониторинга распространения основных его патотипов в природе, сельском хозяйстве и человеческом обществе [1].

Одним из таких мониторируемых в рамках концепции «Единого здоровья» патотипов является птичья патогенная E. coli (avian pathogenic E. coli — APEC), относящаяся к группе возбудителей заболеваний внекишечной локализации (extraintestinal pathogenic E. coli — ExPEC) [2, 3].

Несмотря на то что возможность прямой зоонозной передачи APEC от птиц человеку является дискутабельной [4], многочисленные исследования показывают, что APEC генетически сходны с человеческими ExPEC (уропатогенными эшерихиями (UPEC) и эшерихиями, ассоциированными с менингитом новорождённых (NMEC)). Имеются исследования, подтверждающие общность факторов патогенности у изолятов APEC и ExPEC человека. Например, гены вирулентности iroN, traT, iucD, cvi/cva, ibeA, gimB, tia, neuC, kpsMTII, tsh, iss, sitD, chuA, fyuA, irp2, vat, malX и pic присутствуют в геномах как APEC, так и UPEC и NMEC [5].

Схожесть вируломов штаммов APEC и человеческих ExPEC подчёркивает потенциальную угрозу распространения зоонозных инфекций, ассоциированных с птицами. Важно отметить, что дикие птицы могут выступать в качестве фактора, способствующего распространению ассоциированных с APEC генов вирулентности и устойчивости к антимикробным препаратам. Например, было показано, что детерминанты антибиотикорезистентности могут передаваться от штаммов энтеробактерий диких гусей и лебедей к штаммам домашним птицам, а от последних — человеку [6, 7].

Приполярные области Земли представляют собой уникальную географическую среду, в которой, несмотря на экстремальные климатические условия, высокая продуктивность шельфовых морей [8] поддерживает высокий уровень биологического разнообразия фауны. Побережья Северного Ледовитого и Южного океанов в пределах континентальной Антарктики, антарктических и субантарктических архипелагов являются точками притяжения миллиардов мигрирующих птиц, значительная часть из которых совершает длительные, в том числе трансконтинентальные перелеты. Например, только палеарктическо-африканская миграционная система включает в себя 2,1 млрд мигрирующих особей [9]. Колонии мигрирующих птиц и птичьи базары в высоких широтах могут быть точками активных внутривидовых и межвидовых контактов между птицами и другими животными, сопровождающихся обменом микробиотой, включая патогенную её часть [10].

В этой связи представляются важными исследования по изучению распространения связанных с птицами патогенов в орнитогенных экосистемах, складывающихся вокруг колоний птиц на побережьях арктических и антарктических морей.

В то же время филогеография и генетические особенности такого актуального объекта эпидемиологического и эпизоотологического надзора, как E. coli, в полярных регионах практически не изучалась.

Цель исследования: оценка патогенного потенциала штаммов E. coli, распространённых в полярных регионах Земли, на основе анализа геномов данных бактерий из выборки, характеризующей типичные орнитогенные экосистемы Арктики и Антарктики.

Материалы и методы

В работе были использованы коллекции штаммов E. coli, выделенных из орнитогенного биологического материала (помёт, погадки и тушки павших птиц, субстраты гнезд, микробные маты водоёмов, контаминируемых птичьим помётом) в ходе нескольких экспедиций.

В частности, при реализации научной программы Российской арктической экспедиции на архипелаге Шпицберген в 2018 г. было собрано 28 образцов орнитогенного материала, из которого были выделены 6 изолятов, в экспедиции «Арктический плавучий университет» (2023 г.) — 8 изолятов из 38 образцов, в 68-й Российской антарктической экспедиции (2022–2023 гг.) — 19 изолятов из 29 образцов.

В настоящей работе описаны культуры E. coli, выделенные на птичьих базарах архипелага Шпицберген (остров Западный Шпицберген), архипелагах Новая Земля и Земля Франца-Иосифа, а также на островах архипелага Хасуэлл, ставшего благодаря многотысячным колониям пингвинов Адели и императорских пингвинов одной из ключевых орнитологических территорий Восточной Антарктики.

Кроме того, в качестве штаммов сравнения были использованы 5 штаммов E. coli, выделенные из клоакальных смывов в период кольцевания птиц в весенне-летний период 2023 г. на Ладожской орнитологической станции (Нижне-Свирский заповедник, урочище Гумбарицы, Ленинградская область). Все арктические и антарктические культуры были выделены без применения методов обогащения с использованием плотных питательных сред при культивировании непосредственно в полевых условиях, как было описано ранее [11]. Процедура отбора образцов биологического материала осуществлялась в соответствии с общепринятыми нормами биоэтики, что подтверждено решением локального этического комитета СЗГМУ им. И.И. Мечникова (протокол № 3 от 13.03.2024)

Видовую идентификацию выделенных штаммов проводили при помощи времяпролетной масс-спектрометрии (MALDI-TOF) на приборе «Bactoscreen» («Литех»). Масс-спектры анализировали с использованием программного обеспечения «Biotyper 3.1».

В результате случайной выборки для полногеномного секвенирования (WGS) были отобраны 16 штаммов с последующей аннотацией и оценкой патогенного потенциала. Информация об источниках культур, геномы которых были секвенированы, представлена в табл. 1.

 

Таблица 1. Характеристика культур, использованных в исследовании

Table 1. Characteristics of studied isolates

No.

Культура

Isolates

Место выделения, координаты

Place of isolation, coordinates

Источник выделения

Source of isolation

Культуры, ассоциированные с орнитогенными экосистемами Арктики

Isolates associated with bird ecosystems of the Arctic

1

67Spits

Архипелаг Шпицберген, окрестности поселка Баренцбург, 78°03'N 14°16'E

Svalbard archipelago, Barentsburg, 78°03'N 14°16'E

Фекалии моевки обыкновенной (Rissa trydacyla)

Feces of Rissa trydacyla

2

70_2Spits

Архипелаг Шпицберген, Побережье залива Гренфиорд, N 78°00'36.2"N 14°18'09.7"E

Svalbard archipelago, Gronfjorden Bay coast, N 78°00'36.2"N 14°18'09.7"E

Фекалии моевки обыкновенной (Rissa trydacyla)

Feces of Rissa trydacyla

3

89Spits

Архипелаг Шпицберген, окрестности поселка Баренцбург, 78°03'N 14°16'E

Svalbard archipelago, Barentsburg, 78°03'N 14°16'E

Фекалии гуменника короткоклювого (Anser brachyrhynchus)

Feces of Anser brachyrhynchus

4

97Spits

Архипелаг Шпицберген, окрестности поселка Баренцбург, 78°03'N 14°16'E

Svalbard archipelago, Barentsburg, 78°03'N 14°16'E

Субстрат гнезда гуменника короткоклювого (Anser brachyrhynchus)

Feces of Anser brachyrhynchus

5

AFU_2

Югорский полуостров, мыс Белый нос, 69°36'14.7"N 60°12'08.1"E

Yugorsky Peninsula, White Nose Cape, 69°36'14.7"N 60°12'08.1"E

Фекалии обыкновенной гаги (Somateria mollissima)

Feces of Somateria mollissima

6

AFU_32_1

Архипелаг Новая Земля, Северный о-в, мыс Желания, 76°57'18.5"N 68°34'41.9"E

Novaya Zemlya archipelago, Cape of Desire, 76°57'18.5"N 68°34'41.9"E

Фекалии белого медведя, найденные рядом с птичьим базаром, сформированным моевкой обыкновенной (Rissa trydacyla)

Feces of polar bear near the Rissa trydacyla bird spot

7

AFU_33_1

Архипелаг Новая Земля, Северный о-в, мыс Желания, 76°57'18.5"N 68°34'41.9"E

Novaya Zemlya archipelago, North Island, Cape of Desire, 76°57'18.5"N 68°34'41.9"E

Субстрат гнезд под птичьим базаром, сформированным моевкой обыкновенной (Rissa trydacyla)

Nests in the bird spot of Rissa trydacyla

8

AFU_43_1

Архипелаг Земля Франца-Иосифа, о-в Вильчека, 79°53'41.8"N 58°44'07.2"E

Franz Josef Archipelago, Wilczek Island, 79°53'41.8"N 58°44'07.2"E

Скорлупа яйца толстоклювой кайры (Uria lomvia)

Egg shell of Uria lomvia

9

AFU_55_1

Архипелаг Земля Франца-Иосифа, о-ва Комсомольские (Южный остров), 80°34'48.3"N 58°32'40.2"E

Franz Josef Archipelago, Komsomolskie islands (South Island), 80°34'48.3"N 58°32'40.2"E

Микробные маты во временном водоёме в месте массового скопления полярных крачек (Sterna paradisaea)

Рond near the Sterna paradisaea bird spot

Культуры из орнитогенных биотопов Антарктиды

Isolates associated with bird ecosystems of the Antarctic

10

15myr

Восточная Антарктида, Земля Королевы Мэри, архипелаг Хасуэлл, остров Хасуэлл, 66°31'36.6"S 93°00'20.8"E

West Antarctica, Queen Mary Land, Haswell Archipelago, Haswell Island, 66°31'36.6"S 93°00'20.8"E

Труп птенца пингвина Адели, смыв из клоаки (Pygoscelis adeliae)

Adelie penguin (Pygoscelis adeliae), cloaca sample

11

17_1myr

Восточная Антарктида, Земля Королевы Мэри, архипелаг Хасуэлл, остров Хасуэлл, 66°31'36.6"S 93°00'20.8"E

West Antarctica, Queen Mary Land, Haswell Archipelago, Haswell Island, 66°31'36.6"S 93°00'20.8"E

Желудочный секрет антарктического глупыша (Fulmarus glacialoides)

Stomach sample from Fulmarus glacialoides

12

28myr

Восточная Антарктида, Земля Королевы Мэри, архипелаг Хасуэлл, остров Токарева, 66°32'06.1"S 92°58'25.8"E

West Antarctica, Queen Mary Land, Haswell Archipelago, Tokareva Island, 66°32'06.1"S 92°58'25.8"E

Фекалии пингвина Адели (Pygoscelis adeliae)

Feces of Adelie penguin (Pygoscelis adeliae)

Культуры от птиц Европейской части России, полученные при кольцевании птиц на Ладожской орнитологической станции (ЛОС)

Isolates form birds in European region of Russia, Ladoga Ornithological Station (LOS)

13

LOS_49

Нижне-Свирский заповедник, ЛОС, 60°40'35.0"N 32°56'27.2"E

Nizhne-Svirskiy Reserve, LOS, 60°40'35.0"N 32°56'27.2"E

Черноголовая гаичка (Poecile palustris), смыв из клоаки

Сloaca sample from Poecile palustris

14

LOS_51

Нижне-Свирский заповедник ЛОС, 60°40'35.0"N 32°56'27.2"E

Nizhne-Svirskiy Reserve, LOS, 60°40'35.0"N 32°56'27.2"E

Чирок-свистунок (Anas crecca), фекалии

Anas crecca feces

15

LOS_52

Нижне-Свирский заповедник, ЛОС, 60°40'35.0"N 32°56'27.2"E

Nizhne-Svirskiy Reserve, LOS, 60°40'35.0"N 32°56'27.2"E

Дрозд-рябинник (Turdus pilaris), смыв из клоаки

Сloaca sample from Turdus pilaris

16

LOS_54

Нижне-Свирский заповедник ЛОС, 60°40'35.0"N 32°56'27.2"E

Nizhne-Svirskiy Reserve, LOS, 60°40'35.0"N 32°56'27.2"E

Дрозд-рябинник (Turdus pilaris), смыв из клоаки

Сloaca sample from Turdus pilaris

 

Для выделения геномной ДНК использовали наборы производства «Биолабмикс». Геномное секвенирование проводили с использованием технологии BGI на базе НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Пастера. Аннотацию геномов производили с использованием сервера RAST (https://rast.nmpdr.org/rast.cgi), поиск генов лекарственной устойчивости и вирулентности — при помощи программы ABRicate v 0.8 (https://github.com/tseemann/abricate), для чего были использованы базы данных MEGARes (https://megares.meglab.org/amrplusplus/latest/html, Comprehensive Antibiotic Resistance Database, CARD 3.0.2 (https://card.mcmaster.ca/analyze/rgi) и VFDB (https://www.mgc.ac.cn/VFs/).

Антигенную структуру E. coli определяли при помощи онлайн-инструмента SerotypeFinder 2.0 (https://cge.food.dtu.dk/services/SerotypeFinder/). Для оценки результатов мультилокусного секвенирования-типирования (MLST) использовали ресурс MLST 2.0 (https://cge.food.dtu.dk/services/MLST/). Результаты WGS-типирования по коровым генам, полученные при помощи онлайн-инструмента cgMLSTFinder 1.2 (https://cge.food.dtu.dk/services/cgMLSTFinder/), сопоставляли с данными по соответствующим cgMLST-типам, депонированными в базе данных EnteroBase (https://enterobase.warwick.ac.uk/species/index/ecoli), допуская при этом различия (показатель Max Number MisMatches) не более чем в 20 точечных полиморфизмах (SNP).

Результаты

Проведённое аннотирование геномов позволило установить их принадлежность к различным сиквенс-типам (ST) в схемах MLST- и WGS-типирования. Основные характеристики изученных геномов и номера доступа к их последовательностям представлены в табл. 2.

 

Таблица 2. Генетические характеристики изученных штаммов E. coli

Table 2. Genetic characteristics of isolated E. coli strains

Штамм

Strain

Регион выделения

Region of isolation

Серотип

Serotype

Сиквенс-тип (ST)

Sequence type (ST)

ST по SNP в коровых генах (cgST)

ST by core genome (cgST)

Номер доступа GenBank

GenBank access number

67Spits

Арктика | Arctic

O4:H5

12

10054

JAYEAG010000000

70_2Spits

Арктика | Arctic

O43:H2

937

28072

JAYEAE000000000.1

89Spits

Арктика | Arctic

O83:H1

135

87221

JAYEAD000000000.1

97Spits

Арктика | Arctic

O166:H49

1246

162

JAYEAC000000000.1

AFU_2

Арктика | Arctic

O93:H16

8097

132840

JAYEAJ000000000

AFU_32_1

Арктика | Arctic

O54:H45

491

11903

JAYEAI000000000

AFU_33_1

Арктика | Arctic

O15:H2

69

189219

JAYEAH000000000

AFU_43_1

Арктика | Arctic

O9:H49

6163*

1429

JBIQXY000000000

AFU_55_1

Арктика | Arctic

O39:H4

1155

196482

JBIQXZ000000000

15myr

Антарктика | Antarctic

O8:H7

127

196780

JBIQXV000000000

17_1myr

Антарктика | Antarctic

O6:H31

196

133718

JBIQXW000000000

28myr

Антарктика | Antarctic

O182:H38

1632

94237

JBIQXX000000000

LOS_49

Европейская часть РФ

European Russia

O8:H5

2594*

47119

JBIQYA000000000

LOS_51

Европейская часть РФ

European Russia

O85:H8

297

114487

JBIQYB000000000

LOS_52

Европейская часть РФ

European Russia

Н/и | N/i

1333*

119313

JBIQYC000000000

LOS_54

Европейская часть РФ

European Russia

Н/и | N/i

58

126100

JBIQYD000000000

Примечание. *Генотипы, имеющие однонуклеотидные SNP в генах, по которым осуществлялось секвенирование-типирование, различающие их от указанных ST. Н/и — серотип не идентифицирован.

Note. *Genotypes with single nucleotide polymorphisms in genes for which sequencing-typing was performed, distinguishing them from the specified sequence types. N/I — not identified.

 

Во всех изученных геномах были идентифицированы гены, кодирующие AmpC-подобные бета-лактамазы, гиперпродукция которых обеспечивает устойчивость к цефалоспоринам [12]. Кроме того, геном арктического штамма E. coli 33-1 характеризовался наличием плазмиды размером около 78 тыс. п. н., содержащей ген бета-лактамазы расширенного спектра TEM-1b и транспозон Tn1721, включающий гены устойчивости к тетрациклинам (tetA-tetR). В геномах изученных микроорганизмов были обнаружены многочисленные гены факторов патогенности, ассоциированные с адгезией, инвазией, захватом железа (табл. 3).

 

Таблица 3. Факторы патогенности изученных штаммов E. coli

Table 3. Pathogenic determinants in studied E. coli strains

Факторы патогенности

Рathogenic determinants

17myr

15myr

28myr

67Spits

70_2Spits

89Spits

97Spits

AFU_2

AFU_32_1

AFU_33_1

AFU_43_1

AFU_55_1

LOS_49

LOS_51

LOS_52

LOS_54

Гемолизины | Hemolysins

Гемолизин A (hlyA) | Hemolysin A (hlyA)

+

+

Птичий гемолизин E (hlyE) | Bird hemolysin E (hlyE)

+

+

+

+

+

+

+

+

+

Гемолизин F (hlyF) | Hemolysin F (hlyF)

+

+

+

+

+

+

Сидерофоры | Siderophores

Энтеробактиновый оперон | Enterobactin operon

+

+

+

+

Иерсиниабактиновый оперон | Yersiniabactin operon

+

+

+

+

+

+

+

+

Аэробактиновый оперон | Aerobactin operon

+

+

+

+

Токсины | Toxins

Термостабильный энтеротоксин EAST-1

Heat-stable enterotoxin EAST-1

+

+

+

+

Субтилаза | Subtilase

+

Цитолетальные токсины набухания (cdt)

Сytolethal distending toxin (cdt)

+

Факторы адгезии, инвазии и биоплёнкообразования | Adhesion, invasion and biofilm formation determinants

Адгезин AIDA-I | Аdhesin AIDA-I

+

+

+

Субстанция аггрегации Tia | Аggregation substance Tia

+

Гомолог гена eilA (Salmonella HilA homolog)

Gen eilA homologue (Salmonella HilA homolog)

+

+

Энтероаггрегативный белок (air)

Enteroaggregative protein (air)

+

+

Фактор инвазии в эндотелий мозга (ibeA)

Factor of invasion of brain endothelium (ibeA)

+

+

+

+

Фактор выживания в сыворотке (iss)

Serum survival gene (iss)

+

+

+

+

+

+

+

+

Арисульфатаза AslA | Аrylsulfatase AslA

+

+

+

+

+

+

Термостабильный агглютинин (hra)

Heat-resistant agglutinin (hra)

+

+

+

+

+

Цитотоксический некротизирующий фактор 1 (cnf)

Сytotoxic necrotizing factor (cnf)

+

+

Белок уропатогенности (usp)

Uropathogenic specific protein (usp)

+

+

+

+

Курлин CsgA | Сurlin CsgA

+

+

+

+

+

+

+

+

+

+

+

 

+

+

+

Гомолог гена shiA в острове патогенности Shigella flexneri SHI-2

Homologue of the Shigella flexneri SHI-2 pathogenicity island gene shiA

+

+

+

+

Интимино-подобный адгезин FdeC

Intimin-like adhesin FdeC

+

+

+

+

+

+

+

+

+

+

+

Энтеробактериальный транспортер сериновой протеазы (SPATE) vat

Serine protease autotransporters of Enterobacteriaceae (SPATE)

+

+

+

+

+

+

+

+

 

Широкая представленность в геномах изучаемых штаммов генов факторов патогенности ExPEC ставит вопрос о потенциальной связи этих штаммов со случаями инфекционных заболеваний у людей.

Используя базу данных EnteroBase (https://enterobase.warwick.ac.uk/species/index/ecoli), аккумулирующую глобальные данные о результатах cgMLST-генотипирования и включающую на данный момент информацию о более чем 340 тыс. штаммов E. coli, мы провели поиск информации о географическом распространении cgST, определённых в настоящем исследовании, и их источниках выделения. Искомую информацию удалось извлечь из метаданных, представленных в EnteroBase, для 11 ST (табл. 4).

 

Таблица 4. Географическое распространение и источники выделения штаммов cgST, выявленных в настоящем исследовании

Table 4. Geographical distribution and isolation sources of sequence types (cgST) of the identified strains

Сиквенс-тип

по SNP в коровых генах (cgST)

Sequence type by core genome (cgST)

Регион (регионы) идентификации

Region (regions) of isolation

Источник выделения

Source of isolation

Ссылка на номер архивов коротких последовательностей/Sequence Read Archive (SRA), соответствующих штаммам, идентичным или наиболее близким к выявленным ST

Reference number of the Sequence Read Archive (SRA) for strains most similar to the identified STs

10054

Европа, Аландские острова

Europe, Anand Islands

Человек (гемокультура)

Human (blood culture)

ERR434967

28072

США

USA

Сельскохозяйственные животные (коровы)

Livestock (cows)

SRR3972294

162

Австралия

Australia

Австралийская чайка

Chroicocephalus novaehollandiae

SRR24017969

132840

США

USA

Телята

Livestock (calves)

SRR26082289

11903

США

USA

Человек (пациент с инфекцией мочевыводящих путей)

Human (patient with urinary tract infection)

SRR1314409

189219

США, Испания, Бразилия, Дания, Великобритания

USA, Spain, Brazil, Denmark, UK

Цыплята, человек (гемокультуры и моча при инфекции мочевыводящих путей)

Chicken, human (blood culture and urine during urinary tract infection)

SRR17774295, ERR13306341,

ERR4014451,

SRR21849316

SRR21846782

196780

США

USA

Коровы

Livestock (cows)

SRR19171807

133718

Великобритания

UK

Дикие птицы (Anseriformes)

Wild birds (Anseriformes)

SRR11410512

114487

США

USA

Говядина

Beef

SRR10156198

119313

Нидерланды

Netherlands

Человек (гемокультура)

Human (blood culture)

ERR3650458

126100

Швеция

Sweden

Сельскохозйственные птицы

Poultry

SRR14477383

 

Обсуждение

В нашем исследовании мы предприняли попытку сформировать выборку штаммов E. coli, ассоциированных с высокоширотными орнитогенными экосистемами, типичными для приполярных регионов как в Северном, так и в Южном полушарии.

В Арктике наши исследования были сфокусированы на изучении штаммов, связанных с морскими колониальными птицами (моевки, толстоклювые кайры) и представителями отряда гусеобразные (гуменник, гаги). Данные виды птиц различаются как по занимаемым экологическим нишам, так и по длительности и направлениям миграций, что может оказывать влияние на структуру их микробиоты, определяя вероятность колонизации различными генотипами E. coli.

В то же время необходимо учитывать возможность формирования единого резервуара для популяций данного микроорганизма на протяжении всего побережья Северного Ледовитого океана, определяемого миграциями птиц в меридиональном направлении. Так, недавно было выяснено, что существенная часть популяции моевки мигрирует с Южного острова Новой Земли к местам зимовки на побережья северной части Тихого океана [13]. Распространение патогенов с арктическими перелётными птицами (преимущественно из отряда гусеобразных) одновременно в широтном и в меридиональном направлениях было ранее показано для вирусов гриппа [14]. Следует отметить, что гуси-гуменники, штаммы от которых были изучены в настоящем исследовании, совершают сезонные миграции с территории архипелага Шпицберген к местам зимовки в Бельгию и Нидерланды, причём на фоне глобальных изменений климата в Арктике эти птицы активно осваивают также Новую Землю [15].

Три «антарктических» штамма, геномы которых были охарактеризованы в настоящем исследовании, выделены на территории колоний пингвинов Адели на островах архипелага Хасуэлл в Восточной Антарктиде. Несмотря на то что пингвины данного вида являются эндемичным для Антарктиды видом, на территориях колоний они соседствуют в том числе с дальнеперелётными видами птиц. Например, частый обитатель архипелага Хасуэлл — южнополярный поморник, способен совершать дальние сезонные миграции и достигать Северной Пацифики и Северной Атлантики [16]. Популяции антарктических птиц не являются, таким образом, изолированными от глобальной циркуляции патогенов, о чем, в частности, свидетельствует циркуляция в Антарктике штаммов вирусов гриппа, идентичных выделенным в других географических регионах [17].

Анализ географического распространения ST E. coli, определённых методом cgMLST, продемонстрировал их космополитизм, что проявлялось выявлением идентичных cgST в географически дистантных регионах планеты. Так, например, cgST 133718 был отмечен в Антарктиде (штамм 17_1myr) и в Великобритании, а cgST 11903, к которому принадлежал штамм 32-1 из самой северной точки Новой Земли, был ранее выявлен в США.

Несмотря на то что все изученные штаммы относятся к разным генетическим линиям (ST и серотипам), их объединяет наличие обширного вирулома. Как видно из данных табл. 3, все штаммы из полярных регионов располагают совокупностью факторов вирулентности, позволяющих рассматривать их в качестве потенциальных возбудителей инфекций человека. В этом они в целом не отличаются от штаммов, выделенных от птиц в Ленинградской области.

Так, 10 из 12 «полярных» штаммов содержали гены или сочетания генов, детерминирующих синтез гемолизинов A, E, F, которые совместно с сидерофорами энтеробактинового, аэробактинового и иерсинибактинового кластера принимают участие в захвате железа в ходе инфекционного процесса [18]. Необходимо отметить, что гены иерсинибактинового оперона, обнаруженные у половины «арктических» и «антарктических» культур, входят в состав острова высокой патогенности. Данный мобильный генетический элемент ассоциирован, как было показано ранее, с вирулентными UPEC [19].

К выявленным факторам вирулентности, для которых описана локализация на мобильных генетических элементах, относится белок уропатогенности. Продемонстрировано значение данного фактора в повреждении клеток млекопитающих, что имеет существенное значение в развитии инфекций мочевыводящих путей [20].

В изученной выборке также выявлены штаммы, маркирующие энтероаггрегативный патотип (EAEC) E. coli, в частности, в геномах штаммов AFU_33_1 и AFU_43_1 с Новой Земли и Земли Франца-Иосифа обнаруживаются распространённые у EAEC ген регулятора вирулентности eilA (Salmonella HilA homolog) и ген энтероаггрегативного белка (air). Штамм AFU_33_1, по результатам cgMLST, принадлежит к ST 189219, который широко представлен в ряде европейских стран, США и Бразилии в качестве возбудителя генерализованных инфекций человека. Таким образом, мы фактически наблюдали распространение своеобразного эпидемического клона E. coli на территориях, где отсутствуют постоянные поселения человека.

В целом распространение глобальных генетических линий E. coli в высоких широтах соответствует представлениям о том, что в отношении патогенов человека соблюдается «Правило Рапопорта», заключающееся в том, что по мере перемещения от экватора к полюсам ареалы распространения видов или иных таксономических группировок увеличиваются [21].

Проведённый в нашей работе поиск генов устойчивости к антимикробным препаратам в геномах штаммов E. coli свидетельствует об отсутствии (в пределах нашей выборки) критических детерминант лекарственной устойчивости. Тем не менее наличие генетических детерминант устойчивости к цефалоспоринам и тетрациклину в составе генома арктического штамма AFU_33_1 свидетельствует о возможности циркуляции несущих эти гены мобильных генетических элементов в «дикой природе» и их сохранении в составе микробиома арктических животных при отсутствии пресса антибиотиков.

Заключение

Результаты исследования свидетельствуют о циркуляции в орнитогенных экосистемах высокоширотной Арктики и Антарктики штаммов E. coli, обладающих выраженным патогенным потенциалом. Анализ геномных данных свидетельствует о присутствии в этих регионах генетических линий, широко распространённых географически, что обосновывает значимость мониторинга эпидемических клонов E. coli, наряду с мониторингом других патогенов, в колониях птиц на высокоширотных территориях.

×

Об авторах

Батырбек Исмелович Асланов

Северо-Западный государственный медицинский университет имени И.И. Мечникова

Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-6890-8096

д. м. н., зав. каф. эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии, зав. лаб. молекулярной эпидемиологии и исследований бактериофагов

Россия, Санкт-Петербург

Даниил Валерьевич Азаров

Северо-Западный государственный медицинский университет имени И.И. Мечникова; Институт экспериментальной медицины

Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-2483-5144

к. м. н., зав. лаб. инновационных методов микробиологического мониторинга НОЦ НЦМУ Центр персонализированной медицины, с. н. с. лаб. молекулярной эпидемиологии и исследований бактериофагов

Россия, Санкт-Петербург; Санкт-Петербург

Мария Александровна Макарова

Северо-Западный государственный медицинский университет имени И.И. Мечникова; Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Пастера

Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-3600-2377

д. м. н., в. н. с., зав. лаб. кишечных инфекций, доцент каф. медицинской микробиологии

Россия, Санкт-Петербург; Санкт-Петербург

Елизавета Георгиевна Марышева

Санкт-Петербургский государственный университет

Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0009-0000-8241-5290

студент биолого-почвенного факультета

Россия, Санкт-Петербург

Людмила Александровна Краева

Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Пастера

Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-9115-3250

д. м. н., профессор, зав. лаб. медицинской бактериологии

Россия, Санкт-Петербург

Алексей Сергеевич Мохов

Северо-Западный государственный медицинский университет имени И.И. Мечникова

Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-1519-5299

к. м. н., ассистент каф. эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии

Россия, Санкт-Петербург

Екатерина Андреевна Лебедева

Северо-Западный государственный медицинский университет имени И.И. Мечникова

Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-9547-0192

к. м. н., асcистент каф. эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии, с. н. с. лаб. молекулярной эпидемиологии и исследований бактериофагов

Россия, Санкт-Петербург

Никита Евгеньевич Гончаров

Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Пастера

Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-6097-5091

м. н. с. лаб. медицинской бактериологии

Россия, Санкт-Петербург

Наталья Викторовна Лебедева

Мурманский морской биологический институт

Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-3545-753X

д. б. н., профессор, г. н. с. лаб. орнитологии и паразитологии

Россия, Мурманск

Дмитрий Александрович Стариков

Нижне-Свирский государственный природный заповедник

Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-3721-8615

к. б. н., зам. директора по науке

Россия, Лодейное Поле

Виктория Васильевна Колоджиева

Северо-Западный государственный медицинский университет имени И.И. Мечникова

Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-1537-211X

к. м. н., доцент каф. эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии, с. н. с. лаб. молекулярной эпидемиологии и исследований бактериофагов

Россия, Санкт-Петербург

Дмитрий Евгеньевич Полев

Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Пастера

Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-9679-2791

к. б. н., с. н. с. группы метагеномных исследований отдела эпидемиологии

Россия, Санкт-Петербург

Артемий Евгеньевич Гончаров

Северо-Западный государственный медицинский университет имени И.И. Мечникова; Институт экспериментальной медицины

Автор, ответственный за переписку.
Email: phage1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-5206-6656

д. м. н., зав. лаб. функциональной геномики и протеомики микроорганизмов, профессор каф. эпидемиологии, паразитологии и дезинфектологии, в. н. с. лаб. молекулярной эпидемиологии и исследований бактериофагов

Россия, Санкт-Петербург; Санкт-Петербург

Список литературы

  1. García A., Fox J.G. A one health perspective for defining and deciphering Escherichia coli pathogenic potential in multiple hosts. Comp. Med. 2021; 71(1):3–45. DOI: https://doi.org/10.30802/AALAS-CM-20-000054
  2. Kimura A.H., Koga V.L., de Souza Gazal L.E., et al. Characterization of multidrug-resistant avian pathogenic Escherichia coli: an outbreak in canaries. Braz. J. Microbiol. 2021; 52(2):1005–12. DOI: https://doi.org/10.1007/s42770-021-00443-0
  3. Dalazen G., Fuentes-Castillo D., Pedroso L.G., et al. CTX-M-producing Escherichia coli ST602 carrying a wide resistome in South American wild birds: another pandemic clone of one health concern. One Health. 2023;17:100586. DOI: https://doi.org/10.1016/j.onehlt.2023.100586
  4. Yousef H.M.Y., Hashad M.E., Osman K.M., et al. Surveillance of Escherichia coli in different types of chicken and duck hatcheries: one health outlook. Poult. Sci. 2023; 102(12):103108. DOI: https://doi.org/10.1016/j.psj.2023.103108
  5. Ewers C., Li G., Wilking H., Kiessling S., et al. Avian pathogenic, uropathogenic, and newborn meningitis-causing Escherichia coli: how closely related are they? Int. J. Med. Microbiol. 2007;297(3):163–76. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijmm.2007.01.003
  6. Medvecky M., Papagiannitsis C.C., Wyrsch E.R., et al. Interspecies transmission of CMY-2-Producing Escherichia coli sequence type 963 isolates between humans and gulls in Australia. mSphere. 2022;7(4):e0023822. DOI: https://doi.org/10.1128/msphere.00238-22
  7. Fu B., Xu J., Yin D., et al. Transmission of blaNDM in Enterobacteriaceae among animals, food and human. Emerg. Microbes Infect. 2024;13(1):2337678. DOI: https://doi.org/10.1080/22221751.2024.2337678
  8. Arrigo K.R., Thomas D. Large scale importance of sea ice biology in the Southern Ocean. Antarct. Sci. 2004;16(4):471–86. DOI: https://doi.org/10.1017/S0954102004002263
  9. Hahn S., Bauer S., Liechti F. The natural link between Europe and Africa – 2.1 billion birds on migration. Oikos. 2009; 118:624–6. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1600-0706.2008.17309.x
  10. Günther A., Krone O., Svansson V., et al. Iceland as stepping stone for spread of highly pathogenic avian influenza virus between Europe and north America. Emerg. Infect. Dis. 2022; 28(12):2383–8. DOI: https://doi.org/10.3201/eid2812.221086
  11. Асланов Б.И., Гончаров А.Е., Азаров Д.В. и др. Характеристики геномов условно-патогенных бактерий зоогенных экосистем островов Западной Арктики. Здоровье населения и среда обитания – ЗНиСО. 2024;32(6):81–8. Aslanov B.I., Goncharov A.E., Azarov D.V., et al. Characteristics of genomes of opportunistic bacteria in zoogenic ecosystems of the Russian Western Arctic Islands. Public Health and Life Environment – PH&LE. 2024;32(6):81–8. DOI: https://doi.org/10.35627/2219-5238/2024-32-6-81-88 EDN: https://elibrary.ru/gzgyzp
  12. Maillard A., Delory T., Bernier J., et al. Treatment of AmpC-producing Enterobacterales Study Group. Effectiveness of third-generation cephalosporins or piperacillin compared with cefepime or carbapenems for severe infections caused by wild-type AmpC β-lactamase-producing Enterobacterales: A multi-centre retrospective propensity-weighted study. Int. J. Antimicrob. Agents. 2023;62(1):106809. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijantimicag.2023.106809
  13. Ezhov A.V., Gavrilo M.V., Krasnov Y.V., et al. Transpolar and bi-directional migration strategies of black-legged kittiwakes Rissa tridactyla from a colony in Novaya Zemlya, Barents Sea, Russia. Mar. Ecol. Prog. Ser. 2021;676:189–203. DOI: https://doi.org/10.3354/meps13889
  14. Gass J.D. Jr., Dusek R.J., Hall J.S., et al. Global dissemination of influenza A virus is driven by wild bird migration through arctic and subarctic zones. Mol. Ecol. 2023;32(1):198–213. DOI: https://doi.org/10.1111/mec.16738
  15. Madsen J., Schreven K.H.T., Jensen G.H., et al. Rapid formation of new migration route and breeding area by Arctic geese. Curr. Biol. 2023;33(6):1162–70.e4. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cub.2023.01.065
  16. Shick S.R.A., Elrod M.L., Schmidt A., et al. Genomes of Single-Stranded DNA Viruses in a Fecal Sample from South Polar Skua (Stercorarius maccormicki) on Ross Island, Antarctica. Microbiol. Resour. Announc. 2023;12(6):e0029923. DOI: https://doi.org/10.1128/mra.00299-23
  17. Охлопкова О.В., Гончаров А.Е., Асланов Б.И. и др. Первое обнаружение вирусов гриппа А субтипов H1N1 и H3N8 в Антарктическом регионе: о. Кинг-Джордж, 2023 год. Вопросы вирусологии. 2024;69(4):377–89. Ohlopkova O.V., Goncharov A.E., Aslanov B.I., et al. First detection of influenza a virus subtypes H1N1 and H3N8 in the Antarctic region: King George Island, 2023. Problems of Virology. 2024;69(4):377–89. DOI: https://doi.org/10.36233/0507-4088-257 EDN: https://elibrary.ru/qujzfv
  18. Wallace A.J., Stillman T.J., Atkins A., et al. E. coli hemolysin E (HlyE, ClyA, SheA): X-ray crystal structure of the toxin and observation of membrane pores by electron microscopy. Cell. 2000;100(2):265–76. DOI: https://doi.org/10.1016/s0092-8674(00)81564-0
  19. Katumba G.L., Tran H., Henderson J.P. The Yersinia high-pathogenicity island encodes a siderophore-dependent copper response system in uropathogenic Escherichia coli. mBio. 2022;13(1):e0239121. DOI: https://doi.org/10.1128/mBio.02391-21
  20. Lloyd A.L., Rasko D.A., Mobley H.L. Defining genomic islands and uropathogen-specific genes in uropathogenic Escherichia coli. J. Bacteriol. 2007;189:3532–46. DOI: https://doi.org/10.1128/JB.01744-06
  21. Guernier V., Guégan J.F. May Rapoport’s rule apply to human associated pathogens? Ecohealth. 2009;6(4):509–21. DOI: https://doi.org/10.1007/s10393-010-0290-5

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Асланов Б.И., Азаров Д.В., Макарова М.А., Марышева Е.Г., Краева Л.А., Мохов А.С., Лебедева Е.А., Гончаров Н.Е., Лебедева Н.В., Стариков Д.А., Колоджиева В.В., Полев Д.Е., Гончаров А.Е., 2024

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС77-75442 от 01.04.2019 г.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах