НОВЫЕ АГОНИСТЫ РЕЦЕПТОРОВ ВРОЖДЕННОГО ИММУНИТЕТА ИЗ МОРСКИХ ГИДРОБИОНТОВ
- Авторы: Беседнова Н.Н1, Запорожец Т.С1
-
Учреждения:
- НИИ эпидемиологии и микробиологии, Владивосток
- Выпуск: Том 88, № 5 (2011)
- Страницы: 98-106
- Раздел: Статьи
- Дата подачи: 09.06.2023
- Дата публикации: 15.10.2011
- URL: https://microbiol.crie.ru/jour/article/view/13610
- ID: 13610
Цитировать
Полный текст
Аннотация
В обзоре представлены литературные и собственные материалы, касающиеся новых агонистов рецепторов врожденного иммунитета из морских гидробионтов. Высокоэффективные, малотоксичные биологически активные вещества, выделенные из морских организмов, являются индукторами созревания дендритных клеток, активируют нейтрофилы, моноциты/макрофаги и NK- клетки, обладают антикомплементарным (фукоиданы) и про- и противовоспалительным действием. Защитные свойства биологически активных веществ проявляются при проникновении в организм различных патогенов - бактерий, вирусов, простейших, грибов. Такие соединения могут стать основой для создания новых лекарственных препаратов.
Об авторах
Н. Н Беседнова
НИИ эпидемиологии и микробиологии, Владивосток
Т. С Запорожец
НИИ эпидемиологии и микробиологии, Владивосток
Список литературы
- Беседнова Н.Н., Эпштейн Л.М. Иммуноактивные пептиды из гидробионтов и наземных животных. Владивосток, ТИНРО-центр, 2004.
- Беседнова Н.Н., Эпштейн Л.М. Природный модификатор функций врожденного иммунитета - ДНК из молок лососевых рыб. Владивосток, Медицина ДВ, 2010.
- Богомаз Т.А. Механизмы регуляции системы комплемента человека некоторыми природными факторами. Дисс. канд. мед. наук. Санкт-Петербург, 2006.
- Буреева С.В. Синтез и исследование влияния низкомолекулярных отрицательно заряженных веществ на классический путь активации комплемента. Дисс. канд. хим. наук. М., 2005.
- Гажа А.К. Иммуноактивный пептид из оптических ганглиев кальмара. Дисс. канд. мед. наук. Владивосток, 1994.
- Гажа А.К., Левина Э.В., Запорожец Т.С. Влияние сульфатированных полиоксистероидов из морских иглокожих на функциональную активность нейтрофильных гранулоцитов. Журн. микробиол. 2006, 3: 101-103.
- Ермак И.М., Давыдова В.Н., Аминин Д.Л. и др. Иммуномодулирующая активность каррагенанов из красных водорослей дальневосточных морей. Тихоок. мед. журн. 2009, 3: 40-44.
- Запорожец Т.С. Клеточные и молекулярные механизмы иммуномодулирующего действия биополимеров морских гидробионтов. Дисс. д-ра мед наук. Владивосток, 2006.
- Запорожец Т.С., Беседнова Н.Н. Иммуноактивные биополимеры из морских гидробионтов. Владивосток, 2007.
- Звягинцева Т.Н., Беседнова Н.Н., Елякова Л.А. Структура и иммунотропное действие 1→3;1→6-β-D-глюканов. Владивосток, 2002.
- Звягинцева Т.Н., Ермакова С.П., Кусайкин М.И. и др. Средство, индуцирующее созревание дендритных клеток. Патент 2008106205/15, 18.02.2008, Бюлл. № 20, 20.07.2009.
- Иванушко Л.А., Соловьева Т.Ф., Запорожец Т.С. и др. Сравнительное изучение иммуномодулирующих свойств хитозана и его производных. Мед. иммунол. 2007, 9 (4-5): 397-404.
- Козлов Л.В., Буреева С.В., Бурделев О.О., Каплун А.П. Искусственное ингибирование системы комплемента. Биоорг. химия. 2007, 33 (5): 485-510.
- Кузнецова Т.А., Сомова Л.М., Плехова Н.Г., Звягинцева Т.Н. Применение фукоидана из бурой водоросли Fucus evanescens для коррекции иммунных нарушений при эндоток- семии. Тихоок. мед. журн. 2009, 3: 78-81.
- Макаренкова И.Д., Ахматова Н.К., Семенова И.Б. и др. Сульфатированные полисахариды из морских бурых водорослей - индукторы созревания дендритных клеток. Тихоок. мед. журн. 2009, 3: 36-39.
- Назарова И.В. Влияние полисахаридов из морских водорослей и трав на систему комплемента. Автореф. дисс. канд. мед. наук. Владивосток, 1999.
- Назарова И.В., Хотимченко Ю.С., Шевченко Н.М. и др. Влияние ионных углеводсодержащих биополимеров на активирование комплемента. Бюлл. эксп. биол. мед. 2001, 131 (3): 290-292.
- Незговоров Д.В., Добродеева А.К., Мокроусова Е.В. и др. Влияние фукоидана на клетки перитонеального экссудата при внутрибрюшинном введении беспородным белым мышам. Мед. иммунол. 2004, 6 (3-5): 242- 243.
- Пинегин Б.В., Дамбаева С.В. NK-клетки: свойства и функции. Иммунология. 2007, 2: 105-113.
- Семенов Б.Ф., Зверев В.В. Концепция создания быстрой иммунологической защиты от патогенов. Журн. микробиол. 2007, 4: 93-100.
- Семенов А.В., Мазуров А.В., Преображенская М.Е. и др. Сульфатированные полисахариды как ингибиторы рецепторной активности P-селектина и P-селектинзависимого воспаления. Вопр. мед. химии. 1999, 44 (2): 135-143.
- Тотолян А.А., Фрейдлин И.С. Клетки иммунной системы. Спб., Наука, 2000.
- Федянина Л.Н. Иммуномодулирующая активность низкомолекулярной дезоксирибонуклеиновой кислоты (ДНК) из молок лососевых рыб. Автореф. дисс. д-ра мед. наук. Владивосток, 2007.
- Хаитов Р.М. Физиология иммунной системы. Росс. физиол. журн. 2000, 86: 257-267.
- Adhikari U., Mateu C.G., Chattopadhyay K. et al. Structure and antiviral activity of sulfated fucans from Stoechospermum marginatum. Phytochemistry. 2006, 67: 2474-2482.
- Blondin C., Fischer E., Boisson-Vidal C. et al. Inhibition of complement activation by natural sulfated polysaccharides (fucans) from brown seaweed. Mol. Immunology. 1994, 31 (4): 247-253.
- Byon Y.Y., Kim M.H., Yoo E.S. et al. Radioprotective effects of fucoidan on bone marrow cells: improvement of the cell survival and immunoreactivity. J. Vet. Sci. 2008, 9 (4): 359-365.
- Chen J.H., Lim J.D., Sohn E.H. et al. Growth-inhibitory effect of a fucoidan from brown seaweed Undaria pinnatifida on Plasmodium parasites. Parasitol. Res. 2009, 104 (2): 245-250.
- Clement MC.J., Tissot B., Chevolot L. et al. NMR characterization and molecular modeling of fucoidan showing in its anticomplementary activity. Glycobiology. 2010, 20 (7): 883-894.
- Copeland R., Balasubramaniam A., Tiwari V. et al. Using a 3-O-sulfated heparin octasaccharide to inhibit the entry of herpes simplex virus type. Biochemistry. 2008, 47: 5774-5783.
- Cumashi A., Ushakova N.A., Preobrazhenskaya M.E. et al. A comparative study of the anti-inflammatory, anticoagulant, antiangiogenic and antiadhesive activities of nine different fucoidans from brown seaweeds. Glycobiology. 2007, 17 (5): 541-552.
- Ghosh T., Chattopadhyay K., Marschall M. et al. Focus on antivirally active sulfated polysaccha- rides: from structure-activity analysis to clinical evaluation. Glycobiology. 2009, 19 (1): 2-15.
- Hall P.R., Hjelle B., Brown D.C. et al. Multivalent presentation of antihantavirus peptides on nano- particles enhances infection blockade. Antimicrob. Agents Chemother. 2008, 52 (6): 2079-2088.
- Hsu P.I., Lai K.H., Hsu P.N. et al. Helicobacter pylori Infection and the Risk of Gastric Malignaney. Amer. J. Gastroenterol. 2007, 102 (4): 725-730.
- Itoh H., Noda H., Amano H. et al. Immunological analysis of inhibition of lung metastases by fucoidan (GIV-A) prepared from brown seaweed Sargassum thunbergii. Anticancer Res. 1995, 15 (5B): 1937-1947.
- Karmakar P., Pujol C.A., Damonte E.B. et al. Polysaccharides from Padina tetrastromatica: structural features, chemical modification and antiviral activity. Carbohydrate Polymers. 2010, 80 (2): 514-521.
- Mandal P., Mateu C.G., Chattopadhyay K. et al. Structural features and antiviral activity of sulfated fucans from the brown seaweed Cystoseira indica. Antivir. Chem. Chemotherap. 2007, 18 (3): 153-162.
- Maryyama H., Tanaca M., Hashimoto M. et al. The supressive effect of Mekabu fucoidan on an attachment of Cryptosporidium parvum oocysts to the intestinal epithelial cells in neonatal mice. Life Sci. 2007, 80 (8): 775-781.
- Matsui M.S., Muizzuddin N., Arad S. Sulfated polysaccharides from red microalgae have antiinflammatory properties in vitro and in vivo. Appl. Biochem. Biotechnol. 2003, 104 (1): 13-22.
- Mytar B., Gawlika M., Szatanek R. et al. Induction of intracellular cytokine production in human monocytes/macrophages stimulated with ligands of pattern recognition receptors. Inflamm. Res. 2004, 53 (3): 100-106.
- Na Y.S., Kim W.J., Kim S.M. et al. Purification, characterization and immunostimulating activity of water-soluble polysaccharide isolated from Capsosiphon fulvescens. Int. Immunopharmacol. 2010, 10 (3): 364-370.
- Sweeney E.A., Priestley G.V., Nakamoto B. et al. Mobilization of stem/progenitor cells by sulfated polysaccharides does not require selectin presence. PNAS. 2000, 97 (12): 6544-6549.
- Teruya T., Tatemoto H., Konishi T., Tako M. Structural characteristics and in vitro macrophage activation of acetil fucoidan from Cladosiphon ocamuranus. Glycoconjugate J. 2009, 26 (8): 1019-1028.
- Tissot B., Daniel R., Place C. Interaction of the C1 complex of complement with sulfated polysaccharide and DNA probed by single molecule fluorescence microscopy. Eur. J. Biochemistry. 2003, 270 (23): 4714-4720.
- Tissot B., Daniel R. Biological properties of sulfated fucans: the potent inhibiting activity of algal fucoidan against the human complement system. Glycobiology. 2003, 13 (12): 29G-30G.
- Tissot B., Montdargent B., Chevolot L. et al. Interaction of fucoidan with the proteins of the complement classic pathway. Biochim. Biophys. Acta. 2003, 1651 (1 - 2): 5-16.
- Yang M., Ma C., Sun J. et al. Fucoidan stimula- tion induces a functional maturation of human monocyte-derived dendritic cells. Int. Immunopharmacol. 2008, 8 (13 - 14): 1754-1760.
- Yarnell E.N.D., Abascal K.B.S. Antiadhesion Herbs. Alternative Сomplement. Therap. 2008, 14 (3): 139-144.
- Yoshizava Y., Enomoto A., Todoh H. et al. Activation of murine macrophages by polysaccharide fraction from marine algae. Biosci. Biotechnol. Biochem. 1993, 57: 1862-1866.
- Zvyagintseva T., Shevchenko N., Nazarova I. et al. Inhibition of complement activation by water-soluble polysaccharides of some far-eastern brown seaweeds. Comp. Biochem. Phys. 2000, 126: 209-215.