КОНТАМИНАЦИЯ ПРОСТЕЙШИХ ЭНТЕРОВИРУСАМИ В ПРИРОДНЫХ И СТОЧНЫХ ВОДАХ


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Цель . Определить зараженность простейших энтеровирусами и оценить возможную роль простейших в качестве природного резервуара для энтеровирус ов. Материа лы и методы . Пробы отбирали в летне-осенний период из проточных и непроточных водоемов Оренбургской области, также взяты образцы сточных вод на всех этапах очистки. Культуры простейших выделяли с помощью микроманипулятора с микропипеткой и инкубировали на среде Пратта при 25°C с подкормкой культурой Pseudomonas fluorescens. РНК энтеровирусов в культурах простейших обнаруживали методом полимеразной цепной реакции с этапом обратной транскрипции. Результаты . В р. Урал обнаружено 72 вида простейших, в озерах — 15, в сточных водах — 38. С помощью ПЦР энтеровирусы выявлены в 61,8% культур простейших, относящихся к 23 видам флагеллат, амеб и инфузорий, выделенных из природных водоемов, подвергающихся антропогенной нагрузке, а также из сточных вод на всех этапах очистки. Отмечена преимущественная локализация энтеровирусов в доминирующих таксонах простейших Paraphysomonas sp., Spumella sp., Petalomonas poosilla, Amoeba sp. Заключение . Полученные данные подтверждают сохранение энтеровирусов в простейших, обитающих в проточных, стоячих рекреационных природных водоемах, а также в сточных водах, и служат подтверждением гипотезы персистенции энтеровирусов в простейших и их резервуарной роли. Сопряженность жизненных циклов вирусов и простейших позволяет объяснить сезонность заболеваемости серозными менингитами энтеровирусной этиологии, пик которой приходится на летнеосенний период года, характеризующийся массовым развитием простейших в водоемах.

Полный текст

КОНТАМИНАЦИЯ ПРОСТЕЙШИХ ЭНТЕРОВИРУСАМИ В ПРИРОДНЫХ И СТОЧНЫХ ВОДАХ
×

Об авторах

М. В Скачков

Государственная медицинская академия

А. Ш Альмишева

Государственная медицинская академия

А. О Плотников

Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН

Н. В Немцева

Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН

В. О Скворцов

Центр гигиены и эпидемиологии в Оренбургской области, Оренбург

Список литературы

  1. Альмишева А.Ш. Особенности эпидемического процесса серозного менингита энтеровирусной природы в городе Оренбурге. Вест. Росс. военно-мед. акад. 2008, 2: 548-549.
  2. Амвросьева Т.В., Поклонская Н.В., Безручко А.А. Молекулярная характеристика и филогенетический анализ энтеровирусов, вызвавших вспышки и сезонные подъемы заболеваемости в разных регионах Республики Беларусь. Журн. микробиол. 2006, 3: 17-21.
  3. Биоиндикация экологического состояния равнинных рек. О.В. Бухарин, Г.С. Розенберг. (ред.). М., Наука, 2007.
  4. Бухарин О.В., Литвин В.Ю. Патогенные бактерии в природных экосистемах. Екатеринбург, УрО РАН, 1997.
  5. Методы контроля. Биологические и микробиологические факторы. Санитарно-вирусологический контроль водных объектов. МУК 4.2.2029-05. М., 2005.
  6. Покровский В.И., Пак С.Г., Брико Н.И., Данилкин Б.К. Инфекционные болезни и эпидемиология. М., ГЭОТАР-МЕД, 2003.
  7. Tepac Ю.X., Кеса Л.Ю. Персистенция и мультипликация пикорна- и аденовирусов в Т. pyriformis. Протозоология. 1981, 6: 73-95.
  8. Danes L., Cerva L.J. Survival of polioviruses and echoviruses in Acanthamoeba castellanii culti- vated in vitro. Hyg. Epidemiol. Microbiol. Immunol. 1981, 25: 169-174.
  9. Foissner W. Classification and phylogeny of the Colpodea (Protozoa: Ciliophora). Arch. Protistenk. 1985, 129: 239–290.
  10. Greub G., Raoult D. Microorganisms resistant to free-living Amoebae. Clin. Microbiol. Rev. 2004, 17 (2): 413-433.
  11. Kling C., Olin G., Fahraeus J., Norlin G. Sewage as a carrier and disseminator of poliomyelitis virus. II. Studies on the conditions of life of poliomyelitis virus outside the human organism. Acta Med. Scand. 1942, 112: 250-263.
  12. Kovаcs E., Bucz B. Propagation of mammalian viruses in protista. II. Isolation of complete virus from yeast and Tetrahymena experimentally infected with picorna viral particles or their infectious RNA. Life Sci. 1967, 6: 347-358.
  13. LaBelle R.L., Gerba C.P. Influence of estuarine sediment on virus survival under field conditions. Appl. Environ. Microbiol. 1980, 39: 749-755.
  14. Lee S.-H., Lee C., Lee K.W. The simultaneous detection of both enteroviruses and adenoviruses in environmental water samples including tap water with an integrated cell culture-multiplex-nested PCR procedure. J. Appl. Microbiol. 2005, 98 (5): 1020-1029.
  15. Mattana A., Serra C., Mariotti E. et al. Acan- thamoeba castellanii promotion of in vitro survival and transmission coxsackie B3 viruses. Eucaryotic Cell. 2006, 5 (4): 665-671.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Скачков М.В., Альмишева А.Ш., Плотников А.О., Немцева Н.В., Скворцов В.О., 2009

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

СМИ зарегистрировано Федеральной службой по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций (Роскомнадзор).
Регистрационный номер и дата принятия решения о регистрации СМИ: ПИ № ФС77-75442 от 01.04.2019 г.


Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах