<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE root>
<article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" article-type="research-article" dtd-version="1.2" xml:lang="en"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">Journal of microbiology, epidemiology and immunobiology</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="en">Journal of microbiology, epidemiology and immunobiology</journal-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn publication-format="print">0372-9311</issn><issn publication-format="electronic">2686-7613</issn><publisher><publisher-name xml:lang="en">Central Research Institute for Epidemiology</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="publisher-id">18948</article-id><article-id pub-id-type="doi">10.36233/0372-9311-761</article-id><article-id pub-id-type="edn">CRVLWX</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="en"><subject>ORIGINAL RESEARCHES</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="ru"><subject>ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="article-type"><subject>Research Article</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="en">Method for forming a static biofilm on various surfaces to evaluate the effectiveness of disinfectants</article-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Метод формирования статической биоплёнки на различных поверхностях для оценки эффективности дезинфицирующих средств</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-3345-2631</contrib-id><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Fedorova</surname><given-names>Lyudmila S.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Федорова</surname><given-names>Людмила Самуиловна</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>D. Sci. (Med.), Professor, Head, Laboratory of overcoming microbial resistance</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>д-р мед. наук, профессор, зав. лаб. преодоления микробной резистентности</p></bio><email>fedorova-ls@yandex.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-1867-3495</contrib-id><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Ilyakova</surname><given-names>Anastasia V.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Ильякова</surname><given-names>Анастасия Васильевна</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>researcher, Department of disinfection and sterilization, Institute of disinfectology, Institute of Disinfectology</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>н. с. отдела дезинфекции и стерилизации (с лабораторией микробиологии) Института дезинфектологии</p></bio><email>ilyakova.av@fncg.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0009-0005-7886-6159</contrib-id><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Ivkina</surname><given-names>Alina S.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Ивкина</surname><given-names>Алина Сергеевна</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>junior researcher, Laboratory of overcoming microbial resistance</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>м. н. с. лаб. преодоления микробной резистентности</p></bio><email>alinaIvkina21@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-3157-5902</contrib-id><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Dudik</surname><given-names>Stepan P.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Дудик</surname><given-names>Степан Павлович</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>junior researcher, Micro- and nanofluidics laboratory</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>м. н. с. лаб. микро- и нанофлюидики</p></bio><email>stepan_maestro@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0003-0130-5079</contrib-id><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Ilina</surname><given-names>Elena N.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Ильина</surname><given-names>Елена Николаевна</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>D. Sci. (Biol.), Professor, Corresponding Member of the Russian Academy of Sciences, Deputy director for research</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>д-р биол. наук, профессор, член-корр. РАН, заместитель директора по научной работе</p></bio><email>ilinaen@gmail.com</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff1"><aff><institution xml:lang="en">Scientific Research Institute for Systems Biology and Medicine</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">ФБУН «Научно-исследовательский институт системной биологии и медицины» Роспотребнадзора</institution></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff2"><aff><institution xml:lang="en">F.F. Erisman Federal Scientific Center of Hygiene</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">ФБУН «Федеральный научный центр гигиены имени Ф.Ф. Эрисмана» Роспотребнадзора</institution></aff></aff-alternatives><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2025-12-29" publication-format="electronic"><day>29</day><month>12</month><year>2025</year></pub-date><volume>102</volume><issue>6</issue><issue-title xml:lang="en"/><issue-title xml:lang="ru"/><fpage>773</fpage><lpage>782</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2025-10-10"><day>10</day><month>10</month><year>2025</year></date></history><permissions><copyright-statement xml:lang="en">Copyright ©; 2025, Fedorova L.S., Ilyakova A.V., Ivkina A.S., Dudik S.P., Ilina E.N.</copyright-statement><copyright-statement xml:lang="ru">Copyright ©; 2025, Федорова Л.С., Ильякова А.В., Ивкина А.С., Дудик С.П., Ильина Е.Н.</copyright-statement><copyright-year>2025</copyright-year><copyright-holder xml:lang="en">Fedorova L.S., Ilyakova A.V., Ivkina A.S., Dudik S.P., Ilina E.N.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="ru">Федорова Л.С., Ильякова А.В., Ивкина А.С., Дудик С.П., Ильина Е.Н.</copyright-holder><ali:free_to_read xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/"/><license><ali:license_ref xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/">https://creativecommons.org/licenses/by/4.0</ali:license_ref></license></permissions><self-uri xlink:href="https://microbiol.crie.ru/jour/article/view/18948">https://microbiol.crie.ru/jour/article/view/18948</self-uri><abstract xml:lang="en"><p><bold>Introduction. </bold>In most cases, microorganisms are presented on abiotic surfaces in a state of static biofilm, which determines their resistance to environmental influences, as well as disinfectants. Disinfection regimes for facilities developed by traditional conventional methods using planktonic forms of microorganisms do not provide the required level of disinfection under these conditions. Therefore, it is important to create and validate methods for the formation of static biofilms on surfaces and to study the possibility of their use to assess the effectiveness of disinfectants in the development of disinfection regimes for surfaces in rooms, furniture, appliances, sanitary equipment, etc.</p> <p><bold>Materials and methods. </bold>Microbiological methods, cultural and microscopic were used in the work. The developed new method for evaluating the effectiveness of disinfectants differs in that the microorganisms on the surface of the test objects were in a state of static biofilm. To form it, a suspension of the test microorganism was applied to the test surface, prepared in a GRM broth and incubated in a thermostat at 37°C for 24 hours. The presence of biofilm on the test surface is confirmed by microscopic method. After that, the effectiveness of disinfectants was evaluated.</p> <p><bold>Results. </bold>Using the new method, insufficient activity of disinfectants was shown in concentrations recommended for use by the instructions: tablets based on sodium salt of SDIC at a concentration of 0.03–0.06% for active chlorine, HP at a concentration of 3.0–6.0% and ADBAС at a concentration of 0.25–0.5%. When treating test objects with disinfectant solutions at these concentrations, disinfection was below the 99.99% criterion. To achieve the desired effect, the concentration of working solutions of disinfectants had to be increased for the sodium salt of SDIC to 0.1% for active chlorine, HP to 8.0%, and ADBAС to 1.0%.</p> <p><bold>Conclusion. </bold>The proposed method of forming a static biofilm on abiotic surfaces is a tool for evaluating the effectiveness and developing adequate disinfection regimes for various types of surfaces for practical use.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="ru"><p><bold>Введение.</bold><italic> </italic>Микроорганизмы на абиотических поверхностях в большинстве случаев находятся в состоянии статической биоплёнки (БП), что обусловливает их устойчивость к воздействию окружающей среды, а также дезинфицирующих средств (ДС). Режимы дезинфекции объектов, разработанные традиционными общепринятыми методами с использованием планктонных форм микроорганизмов, не обеспечивают требуемый уровень обеззараживания в этих условиях. Поэтому актуальны разработка и валидация методик формирования статической БП на поверхностях и изучение возможности их применения для оценки эффективности ДС при разработке режимов дезинфекции поверхностей в помещениях, мебели, приборов, санитарно-технического оборудования и др.</p> <p><bold>Материалы и методы.</bold> В работе использованы микробиологические методы — культуральные, микроскопические. Разработанный новый метод оценки эффективности ДС отличается тем, что на поверхности тест-объектов микроорганизмы находились в состоянии статической БП. Для её формирования на тест-поверхность наносили суспензию тест-микроорганизма, приготовленную на ГРМ-бульоне, и инкубировали в термостате при 37°С в течение 24 ч. Наличие БП на тест-поверхности подтверждали микроскопическим методом. После этого оценивали эффективность ДС.</p> <p><bold>Результаты</bold><bold><italic>.</italic></bold> С использованием разработанного метода показана недостаточная активность ДС в концентрациях, рекомендованных для их применения согласно соответствующим инструкциями: таблеток на основе натриевой соли дихлоризоциануровой кислоты в концентрации 0,03–0,06% по активному хлору, перекиси водорода в концентрации 3,0–6,0%, алкилдиметилбензиламмоний хлорида в концентрации 0,5%. При обработке тест-объектов растворами ДС в этих концентрациях обеззараживание было ниже критерия 99,99%. Для достижения требуемого эффекта концентрацию рабочих растворов ДС необходимо было увеличить для натриевой соли дихлоризоциануровой кислоты до 0,1% по активному хлору, перекиси водорода до 8,0%, алкилдиметилбензиламмоний хлорида до 1,0%.</p> <p><bold>Заключение</bold><bold><italic>.</italic></bold> Предложенная методика формирования статической БП на абиотических поверхностях является инструментом для оценки эффективности и разработки адекватных режимов дезинфекции поверхностей различных видов для применения в практических условиях.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="en"><kwd>biofilms</kwd><kwd>microorganisms</kwd><kwd>resistance</kwd><kwd>disinfectants</kwd><kwd>effectiveness</kwd><kwd>disinfection</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>биоплёнки</kwd><kwd>микроорганизмы</kwd><kwd>резистентность</kwd><kwd>дезинфицирующие вещества</kwd><kwd>эффективность</kwd><kwd>дезинфекция</kwd></kwd-group><funding-group><award-group><funding-source><institution-wrap><institution xml:lang="en">Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Welfare</institution></institution-wrap><institution-wrap><institution xml:lang="ru">Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека</institution></institution-wrap></funding-source><award-id>141-03-2022-090</award-id></award-group></funding-group></article-meta></front><body></body><back><ref-list><ref id="B1"><label>1.</label><mixed-citation>Gutiérrez D., Hidalgo-Cantabrana C., Rodríguez A., et al. Monitoring in real time the formation and removal of biofilms from clinical related pathogens using an impedance-based technology. PLoS One. 2016;11(10):e0163966. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0163966</mixed-citation></ref><ref id="B2"><label>2.</label><mixed-citation>Flemming H.C., Wingender J. The biofilm matrix. Nat. Rev. Microbiol. 2010;8(9):623–33. DOI: https://doi.org/10.1038/nrmicro2415</mixed-citation></ref><ref id="B3"><label>3.</label><mixed-citation>Charron R., Boulanger M., Briandet R., Bridier A. Biofilms as protective cocoons against biocides: from bacterial adaptation to One Health issues. Microbiology (Reading). 2023; 169(6):001340. DOI: https://doi.org/10.1099/mic.0.001340</mixed-citation></ref><ref id="B4"><label>4.</label><mixed-citation>Reiferth V.M., Holtmann D., Müller D. Flexible biofilm monitoring device. Eng. Life Sci. 2022;22(12):796–802. DOI: https://doi.org/10.1002/elsc.202100076</mixed-citation></ref><ref id="B5"><label>5.</label><mixed-citation>Rather M.A., Gupta K., Mandal M. Microbial biofilm: formation, architecture, antibiotic resistance, and control strategies. Braz. J. Microbiol. 2021;52(4):1701–18. DOI: https://doi.org/10.1007/s42770-021-00624-x</mixed-citation></ref><ref id="B6"><label>6.</label><mixed-citation>Vieira-da-Silva B., Castanho M.A.R.B. The structure and matrix dynamics of bacterial biofilms as revealed by antimicrobial peptides' diffusion. J. Pept. Sci. 2023;29(6):3470. DOI: https://doi.org/10.1002/psc.3470</mixed-citation></ref><ref id="B7"><label>7.</label><mixed-citation>Савилов Е.Д., Маркова Ю.А., Немченко У.М. и др. Способность к биопленкообразованию у возбудителей инфекций, выделенных от пациентов крупного многопрофильного детского стационара. Тихоокеанский медицинский журнал. 2020;(1):32–5. Savilov E.D., Markova Y.A., Nemchenko U.M., et al. Ability to biofilm formation in infectious agents isolated from patients of a large general children’s hospital. Pacific Medical Journal. 2020;(1):32–5. DOI: https://doi.org/10.34215/1609-1175-2020-1-32-35 EDN: https://elibrary.ru/tfjenu</mixed-citation></ref><ref id="B8"><label>8.</label><mixed-citation>Тутельян А.В., Романова Ю.М., Маневич Б.В. и др. Методы борьбы с биологическими плёнками на пищевых производствах. Молочная промышленность. 2020;(11):48–53. Tutelyan A.V., Romanova Yu.M., Manevich B.V., et al. Biofilm control methods in food production. Dairy Industry. 2020;(11):48–53. EDN: https://elibrary.ru/dezcuf</mixed-citation></ref><ref id="B9"><label>9.</label><mixed-citation>Bridier A., Briandet R., Thomas V., Dubois-Brissonnet F. Resistance of bacterial biofilms to disinfectants: a review. Biofouling. 2011;27(9):1017–32. DOI: https://doi.org/10.1080/08927014.2011.626899</mixed-citation></ref><ref id="B10"><label>10.</label><mixed-citation>Романова Ю.М., Тутельян А.В., Синицын А.П. и др. Ферменты из группы карбогидраз разрушают структуру матрикса биопленок грамположительных и грамотрицательных бактерий. Медицинский алфавит. 2019;4(34):40–5. Romanova Yu.M., Tutelyan A.V., Sinitsyn A.P., et al. Enzymes from carbohydrase group destroy biofilm matrix of gram-positive and gram-negative bacteria. Medical Alphabet. 2019;4(34):40–5. DOI: https://doi.org/10.33667/2078-5631-2019-4-34(409)-40-45 EDN: https://elibrary.ru/aaqeor</mixed-citation></ref><ref id="B11"><label>11.</label><mixed-citation>Алешукина А.В., Голошва Е.В., Твердохлебова Т.И. Исследование влияния дезинфицирующих средств на биопленкообразующие неферментирующие бактерии. Известия вузов. Северо-Кавказский регион. Серия: Естественные науки. 2020;(1):89–94. Aleshukina A.V., Goloshva E.V., Tverdokhlebova T.I. Investigation of the effect of disinfectants on biofilm forming non-fermenting bacteria. Bulletin of Higher Educational Institutions. North Caucasus Region. Natural Sciences. 2020;(1):89–94. DOI: https://doi.org/10.18522/1026-2237-2020-1-89-94 EDN: https://elibrary.ru/fbbrcg</mixed-citation></ref><ref id="B12"><label>12.</label><mixed-citation>Шипицына И.В., Осипова Е.В. Влияние дезинфицирующих средств на рост биопленки, образованной штаммами К. pneumoniae. Медицинский алфавит. 2022;(35):37–41. Shipitsyna I.V., Osipova E.V. Influence of disinfectants on growth of biofilm formed by K. pneumoniae strains. Medical Alphabet. 2022;(35):37–41. DOI: https://doi.org/10.33667/2078-5631-2022-35-37-41 EDN: https://elibrary.ru/axdvzl</mixed-citation></ref><ref id="B13"><label>13.</label><mixed-citation>Федорова Л.С., Ильякова А.В. Сравнительная оценка эффективности воздействия дезинфицирующих веществ на микроорганизмы в биоплёнке. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2023;100(5):302–9. Fedorova L.S., Ilyakova A.V. Comparative evaluation of disinfectant efficacy against biofilm-residing microorganisms. Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology. 2023;100(5):302–9. DOI: https://doi.org/10.36233/0372-9311-422 EDN: https://elibrary.ru/uhrcap</mixed-citation></ref><ref id="B14"><label>14.</label><mixed-citation>Winans J.B., Wucher B.R., Nadell C.D. Multispecies biofilm architecture determines bacterial exposure to phages. PLoS Biol. 2022;20(12):e3001913. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pbio.3001913</mixed-citation></ref><ref id="B15"><label>15.</label><mixed-citation>Günther F., Scherrer M., Kaiser S.J., et al. Comparative testing of disinfectant efficacy on planktonic bacteria and bacterial biofilms using a new assay based on kinetic analysis of metabolic activity. J. Appl. Microbiol. 2017;122(3):625–33. DOI: https://doi.org/10.1111/jam.13358</mixed-citation></ref><ref id="B16"><label>16.</label><mixed-citation>Iñiguez-Moreno M., Gutiérrez-Lomelí M., Avila-Novoa M.G. Kinetics of biofilm formation by pathogenic and spoilage microorganisms under conditions that mimic the poultry, meat, and egg processing industries. Int. J. Food Microbiol. 2019;303:32–41. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijfoodmicro.2019.04.012</mixed-citation></ref><ref id="B17"><label>17.</label><mixed-citation>Wang Y., Sun L., Hu L., et al. Adhesion and kinetics of biofilm formation and related gene expression of Listeria monocytogenes in response to nutritional stress. Food Res. Int. 2022;156:111143. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodres.2022.111143</mixed-citation></ref><ref id="B18"><label>18.</label><mixed-citation>Crivello G., Fracchia L., Ciardelli G., et al. In vitro models of bacterial biofilms: innovative tools to improve understanding and treatment of infections. Nanomaterials (Basel). 2023;13(5):904. DOI: https://doi.org/10.3390/nano13050904</mixed-citation></ref><ref id="B19"><label>19.</label><mixed-citation>Coenye T., Goeres D., Van Bambeke F., Bjarnsholt T. Should standardized susceptibility testing for microbial biofilms be introduced in clinical practice? Clin. Microbiol. Infect. 2018;24(6):570–2. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cmi.2018.01.003</mixed-citation></ref><ref id="B20"><label>20.</label><mixed-citation>Rumbaugh K.P., Whiteley M. Towards improved biofilm models. Nat. Rev. Microbiol. 2025;23(1):57–66. DOI: https://doi.org/10.1038/s41579-024-01086-2</mixed-citation></ref><ref id="B21"><label>21.</label><mixed-citation>Niboucha N., Goetz C., Sanschagrin L., et al. Comparative study of different sampling methods of biofilm formed on stainless-steel surfaces in a CDC biofilm reactor. Front. Microbiol. 2022;13:892181. DOI: https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.892181</mixed-citation></ref><ref id="B22"><label>22.</label><mixed-citation>Almatroudi A., Hu H., Deva A., et al. A new dry-surface biofilm model: an essential tool for efficacy testing of hospital surface decontamination procedures. J. Microbiol. Methods. 2015;117:171–6. DOI: https://doi.org/10.1016/j.mimet.2015.08.003</mixed-citation></ref><ref id="B23"><label>23.</label><mixed-citation>Ledwoch K., Vickery K., Maillard J.Y. Dry surface biofilms: what you need to know. Br. J. Hosp. Med. (Lond.). 2022;83(8): 1–3. DOI: https://doi.org/10.12968/hmed.2022.0274</mixed-citation></ref><ref id="B24"><label>24.</label><mixed-citation>Буйлова И.А., Гунар О.В. Практические аспекты применения валидационных параметров на примере методик определения количественного содержания микроорганизмов в лекарственных препаратах. Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. Регуляторные исследования и экспертиза лекарственных средств. 2020;10(4):267–72. Buylova I.A., Gunar O.V. Validation parameters as applied to methods for quantification of microorganisms in medicinal products. Bulletin of the Scientific Centre for Expert Evaluation of Medicinal Products. Regulatory Research and Medicine Evaluation. 2020;10(4):267–72. DOI: https://doi.org/10.30895/1991-2919-2020-10-4-267-272 EDN: https://elibrary.ru/ukqgpi</mixed-citation></ref><ref id="B25"><label>25.</label><mixed-citation>Camaró-Sala M.L., Martínez-García R., Olmos-Martínez P., et al. Validation and verfication of microbiology methods. Enferm. Infecc. Microbiol. Clin. 2015;33(7):e31–6. DOI: https://doi.org/10.1016/j.eimc.2013.11.010</mixed-citation></ref><ref id="B26"><label>26.</label><mixed-citation>Otter J.A., Vickery K., Walker J.T., et al. Surface-attached cells, biofilms and biocide susceptibility: implications for hospital cleaning and disinfection. J. Hosp. Infect. 2015;89(1):16–27. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jhin.2014.09.008</mixed-citation></ref><ref id="B27"><label>27.</label><mixed-citation>Ledwoch K., Dancer S.J., Otter J.A., et al. Beware biofilm! Dry biofilms containing bacterial pathogens on multiple healthcare surfaces; a multi-centre study. J. Hosp. Infect. 2018;100(3): e47–56. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jhin.2018.06.028</mixed-citation></ref><ref id="B28"><label>28.</label><mixed-citation>Costa D.M., Johani K., Melo D.S., et al. Biofilm contamination of high-touched surfaces in intensive care units: epidemiology and potential impacts. Lett. Appl. Microbiol. 2019;68(4): 269–76. DOI: https://doi.org/10.1111/lam.13127</mixed-citation></ref><ref id="B29"><label>29.</label><mixed-citation>Шестопалов Н.В., Фёдорова Л.С., Скопин А.Ю. Об антимикробной активности и минимальных эффективных концентрациях химических соединений, входящих в состав дезинфекционных средств. Гигиена и санитария. 2019;98(10):1031–6. Shestopalov N.V., Fedorova L.S., Skopin A.Yu. Antimicrobial activity and minimum effective concentrations of chemical compounds found in disinfectants. Gigiena i Sanitaria (Hygiene and Sanitation, Russian journal). 2019;98(10):1031–6. EDN: https://elibrary.ru/rjkblp</mixed-citation></ref><ref id="B30"><label>30.</label><mixed-citation>Yang Z., Khan S.A., Walsh L.J., et al. Classical and modern models for biofilm studies: a comprehensive review. Antibiotics (Basel). 2024;13(12):1228. DOI: https://doi.org/10.3390/antibiotics13121228</mixed-citation></ref><ref id="B31"><label>31.</label><mixed-citation>Qian W., Li X., Yang M., et al. Relationship between antibiotic resistance, biofilm formation, and biofilm-specific resistance in Escherichia coli isolates from Ningbo, China. Infect. Drug Resist. 2022;15:2865–78. DOI: https://doi.org/10.2147/idr.s363652</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>
