Journal of microbiology, epidemiology and immunobiology

Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии

0372-93112686-7613

Central Research Institute for Epidemiology

13891

Articles

Статьи

Research Article

INFLUENCE OF VARIOUS BACTERIAL LIGAND APPLICATION METHODS ON CYTOKINE EXPRESSION

ВЛИЯНИЕ РАЗНЫХ СПОСОБОВ АППЛИКАЦИИ БАКТЕРИАЛЬНЫХ ЛИГАНДОВ НА ЭКСПРЕССИЮ ЦИТОКИНОВ

Akhmatov

E. A

Ахматов

Э. А

Utkina

N. P

Уткина

Н. П

Ilinykh

E. A

Ильиных

Е. А

Sorokina

E. A

Сорокина

Е. А

Marakasova

E. S

Маракасова

Е. С

Kurbatova

E. A

Курбатова

Е. А

Lebedinskaya

O. V

Лебединская

О. В

Akhmatova

N. K

Ахматова

Н. К

Mechnikov Research Institute of Vaccines and Sera, Moscow, RussiaНИИ вакцин и сывороток им. И.И. Мечникова, Москва

Perm State Medical Academy, RussiaПермская государственная медицинская академия

15022014

911

NO1 (2014)

№1 (2014)

243009062023

2014

Akhmatov E.A., Utkina N.P., Ilinykh E.A., Sorokina E.A., Marakasova E.S., Kurbatova E.A., Lebedinskaya O.V., Akhmatova N.K.

Ахматов Э.А., Уткина Н.П., Ильиных Е.А., Сорокина Е.А., Маракасова Е.С., Курбатова Е.А., Лебединская О.В., Ахматова Н.К.

https://creativecommons.org/licenses/by/4.0

https://microbiol.crie.ru/jour/article/view/13891

Цель. Изучение продукции цитокинов у мышей при вакцинации поликомпонентной вакциной Иммуновак-ВП-4, содержащей лиганды к TLRs, при разных способах введения. Материалы и методы. Мышам подкожным, интраназальным или пероральным методами вводили Иммуновак-ВП-4. Назально препарат вводили в разовой дозе 500 мкг в объеме 30 мкл. Пероральная разовая доза составила 2000 мкг в объеме 0,5 мл. Подкожно препарат вводили по 200 мкг. Цитокины в сыворотках крови определяли с помощью ИФА через 8 ч после введения вакцины. Результаты. У мышей через 8 часов после однократного введения Иммуновак-ВП-4 достоверно повышался уровень IL-10, IL-6, IL-12, IL-5. Но при этом концентрация их отличалась в зависимости от метода введения. Наиболее активная экспрессия цитокинов наблюдалась при подкожном введении. Показатели экспрессии цитокинов были значительно выше (P<0,05), чем при непарентеральных методах введения. Заключение. Установлено, что мукозальные методы аппликации наряду с парентеральными могут активировать эффекторные механизмы иммунного ответа с последующей поляризацией его по Th-1/Th2 пути. Эти механизмы готовят почву для развития антиген-специфических иммунных ответов к антигенам/патогенам.

cytokinesTLR ligandsmucosal immunization

цитокинылиганды TLRsмукозальная иммунизация

Егорова Н.Б., Ахматова Н.К., Чертов И.В. и др. Влияние разных методов введения антигенов условно патогенных бактерий на субпопуляционную структуру и функциональную активность иммунокомпетентных клеток селезенки, кишечника и регионарных лимфатических узлов. Молекулярная медицина. 2009, 5: 48-54.

Семенов Б.Ф., Зверев В.В. Ожидаемые события в развитии вакцинопрофилактики до 2020 - 2030 гг. Журн. микробиол. 2010, 2, 105-111.

Сидорова Е.В. Королевство В-лимфоцитов. Медицинская иммунология. 2004, 6 (3 - 5): 176-185.

Хаитов Р.М., Пинегин Б.В. Иммунная система желудочно-кишечного тракта: особенности строения и функционирования в норме и при патологии. Иммунология. 1997, 5: 4-7.

Хаитов Р.М., Пинегин Б.В. Иммуномодуляторы: механизмы действия и клиническое применение. Иммунология. 2003, 4: 196-203.

Ярилин А.А., Никонова М.Ф., Ярилина А.А. и др. Апоптоз, роль в патологии и значимость его оценки при клинико-иммунологическом обследовании больных. Медицинская иммунология. 2000, 2 (1): 7-16.

Braat H., de Jong E.C., van den Brande J.M. et al. Dichotomy between Lactobacillus rham-nosus and Klebsiella pneumoniae on dendritic cell phenotype and function. J. Mol. Med. 2004. 82 (3): 197-205.

Chu G.M., Jung C.K., Kim H.Y. et al. Effects of bamboo charcoal and bamboo vinegar as antibiotic alternatives on growth performance, immune responses and fecal microflora population in fattening pigs. Anim. Sci. J. 2013, 84 (2): 113-120.

Jackson R.J., Staats H.F., Xu-Amano J. et al. Oral vaccine models: multiple delivery systems employing tetanus toxoid. Ann. NY Acad. Sci. 1994, 15 (730): 217-234.

10.

Krause A., Whu W.Z., Xu Y et al. Protective anti-Pseudomonas aeruginosa humoral and cellular mucosal immunity by AdC7-mediated expression of the P. aeruginosa protein OprF Vaccine. 2011, 29: 2131-2139.

11.

Lawson L.B., Clements J.D., Freytag L.C. Mucosal immune responses induced by transcuta-neous vaccines. Curr. Top. Microbiol. Immunol. 2012, 354: 19-37.

12.

Lawson L.B., Norton E.B., Clements J.D. Defending the mucosa: adjuvant and carrier formulations for mucosal immunity. Curr. Opin. Immunol. 2011, 23 (3): 414-420.

13.

Leal I.S., Florido M., Andersen P., Appelberg R. Interleukin-6 regulates the phenotype of the immune response to a tuberculosis subunit vaccine. Immunol. 2001, 103: 375-381.

14.

Marinaro M., Riccomi A., Rappuoli R. et al. Mucosal delivery of the human immunodeficiency virus-1 Tat protein in mice elicits systemic neutralizing antibodies, cytotoxic T lymphocytes and mucosal IgA. Vaccine. 2003, 8, 21 (25-26): 3972-3981.

15.

Mesa M.C., Rodrigues L.S., Franco M.A., Angel J. Interaction of rotavirus with human peripheral blood mononuclear cells: Plasmacytoid dendritic cells play a role in stimulating memory rotavirus specific T cells in vitro. Virology. 2007, 10: 332-348.

16.

Moretta A. The dialogue between human natural killer cells and dendritic cells. Curr. Opin. Immunol. 2005, 17(3): 306-311.

17.

Netea M.G., Kullberg B.J, Van der Meer J.W.M. Proinflammatory cytokines in the treatment of bacterial and fungal infections. Biodrags. 2004, 18 (1): 9-22.

18.

Su Z., Segura M., Morgan K. et al. Impairment of protective immunity to blood-stage malaria by concurrent nematode infection. Infect. Immun. 2005, 73 (6): 3531-3539.

19.

Xiong N., Raulet D.H. Development and selection of gammadelta T cells. Immunol. Res. 2007, 215: 15-31.

20.

Zanoni I., Granucci F., Foti M., Ricciardi-Castagnoli P. Self-tolerance, dendritic cell (DC)-mediated activation and tissue distribution of natural killer (NK) cells. Immunol. Lett. 2007, 110 (1): 6-17.