Journal of microbiology, epidemiology and immunobiologyJournal of microbiology, epidemiology and immunobiologyЖурнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии0372-93112686-7613Central Research Institute for Epidemiology13434ArticlesСтатьиResearch ArticleFORMATION OF BIOFILMS BY AGENTS OF SURGICAL SOFT TISSUE INFECTIONSФОРМИРОВАНИЕ БИОПЛЕНОК ВОЗБУДИТЕЛЯМИ ХИРУРГИЧЕСКОЙ ИНФЕКЦИИ МЯГКИХ ТКАНЕЙFadeevS. BФадеевС. БNemtsevaN. VНемцеваН. ВOrenburg State Medical AcademyОренбургская государственная медицинская академия, Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН, ОренбургInstitute of Cellular and Intracellular Symbiosis, Orenburg, RussiaОренбургская государственная медицинская академия, Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН, ОренбургOrenburg State Medical AcademyInstitute of Cellular and Intracellular Symbiosis, Orenburg, Russia15082009864NO4 (2009)№4 (2009)11411709062023Copyright ©; 2009, Fadeev S.B., Nemtseva N.V.Copyright ©; 2009, Фадеев С.Б., Немцева Н.В.2009Fadeev S.B., Nemtseva N.V.Фадеев С.Б., Немцева Н.В.https://creativecommons.org/licenses/by/4.0https://microbiol.crie.ru/jour/article/view/13434

Aim. To determine the ability of agents of surgical soft tissue infections to form biofilms. Materials and methods. Material for the study was strains of microorganisms causing surgical soft tissue infection (phlegmon): 38 strains of Staphylococcus aureus , 16 strains of coagulase-negative staphylococci, 20 strains of enterococci, and 10 strains of pseudomonades. Ability of microorganisms to form biofilms was determined by photometric method. Microscopic evaluation included study of pathologic material from wounds as well as biofilms obtained in vitro . Results. All strains of pseudomonades and 80% of enterobacteria strains had marked ability to form biofilms. This characteristic was less prevalent and expressed in staphylococci. Direct relation between ability of microorganism to form biofilm and duration of illness (correlation coefficient — 0.68) was revealed. Biofilms in wounds were detected only 3 or more days after surgery. Conclusion. Agents of surgical soft tissue infections are able to form biofilms. This ability of microorganisms realizes not only in vitro but in wound too. Direct correlation between expression of ability to form biofilms and duration of illness allows to consider this characteristic as marker of switch of infectious process to chronic state.

Цель . Определение способности формирования биопленок возбудителями хирургической инфекции мягких тканей. Материалы и методы. Материалом для исследования были штаммы возбудителей хирургической инфекции (флегмон) мягких тканей: 38 штаммов золотистых стафилококков, 16 — коагулазонегативных стафилококков, 20 — энтеробактерий и 10 — псевдомонад. Способность микроорганизмов формировать биопленки определяли с помощью фотометрического метода. Микроскопическое исследование включало изучение патологического материала из ран и биопленок, полученных in vitro. Результаты. Все штаммы псевдомонад и 80% энтеробактерий обладали выраженной способностью формировать биопленки. Данный признак у стафилококков встречался реже с низкой выраженностью. Выявлена прямая зависимость между способностью возбудителей к образованию биопленок и длительностью заболевания (коэффициент корреляции = 0,68). В ранах биопленки выявляли только через 3 и более суток после операции. Заключение . Возбудители хирургической инфекции мягких тканей обладают способностью формировать биопленку. Эта способность микроорганизмов реализуется не только in vitro, но и в ране. Прямая корреляционная связь между выраженностью способности микроорганизмов к образованию биопленок и длительностью течения заболевания позволяет оценивать данное свойство как маркер хронизации инфекционного процесса.

biofilmsmicroorganismssurgical infectionsбиопленкимикроорганизмыхирургическая инфекцияГланц С. Медико-биологическая статистика. М., Практика, 1998.Ефименко Н.А., Гучев И.А., Сидоренко С.В. Инфекции в хирургии. Фармакотерап. проф. Смоленск, 2004.Карпова Т.И., Дронина Ю.Е., Алексеева Н.В. и др. Формирование биопленок Legionella spp. в эксперименте. Журн. микробиол. 2008, 1: 3-7.Сидоренко С.В. Роль бактериальных биопленок в патологии человека. Инфекц. хирург. 2004, 2 (3): 16-20.Скала Л.З., Сидоренко С.В., Нехорошева А.Г. и др. Практические аспекты современной клинической микробиологии. Тверь, Триада, 2004.Тец В.В., Кнорринг Г.Ю., Артеменко Н.К. и др. Влияние экзогенных протеолитических ферментов на бактерии. Антибиот. химиотер. 2004, 49 (12): 3-7.Шагинян И.А., Данилина Г.А., Чернуха М.Ю. и др. Формирование биопленок клиническими штаммами бактерий комплекса Burkholderia cepacia в зависимости от их фенотипических и генотипических характеристик. Журн. микробиол. 2007, 1: 3-9.Davis S.C., Martinez L., Kirsner R. The diabetic foot: the importance of biofilms and wound bed preparation. Curr. Diab. Rep. 2006, 6 (6): 439-445.Edwards R., Harding K.G. Bacteria and wound healing. Curr. Opin. Infect. Dis. 2004, 17 (2): 91-96.Harrison-Balestra C., Cazzaniga A.L., Davis S. C., Mertz P.M. A wound-isolated Pseudomonas aerugi- nosa grows a biofilm in vitro within 10 hours and is visualized by light microscopy. Dermatol. Surg. 2003, 29 (6): 631–635.Mah T.F., Pitts B., Pellock B. et al. A genetic basis for Pseudomonas aeruginosa biofilm antibiotic resistance. Nature. 2003, 20, 426 (6964): 306-310.Nalca Y., Jansch L., Bredenbruch F. et al. Quorumsens ing antagonistic activities of azithromycin in Pseudomonas aeruginosa PAO1: a global approach. Antimicrob. Agents. Chemother. 2006, 50 (5): 1680-1688.O’Toole G.F., Kaplan H.B., Kolter R. Biofilm formation as microbial development. Ann. Rev. Microbiol. 2000, 54: 49-79.Palmer R.J. Jr., Stoodley P. Biofilms: broadened horizons and new emphases. J.Bacteriol. 2007, 189 (22): 7948-7960.Romeo T. When the party is over: a signal for dispersal of Pseudomonas aeruginosa biofilms. Ibid. 2006, 188 (21): 7325-7327.