<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE root>
<article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" article-type="other" dtd-version="1.2" xml:lang="en"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">Journal of microbiology, epidemiology and immunobiology</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="en">Journal of microbiology, epidemiology and immunobiology</journal-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn publication-format="print">0372-9311</issn><issn publication-format="electronic">2686-7613</issn><publisher><publisher-name xml:lang="en">Central Research Institute for Epidemiology</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="publisher-id">1216</article-id><article-id pub-id-type="doi">10.36233/0372-9311-238</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="en"><subject>ORIGINAL RESEARCHES</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="ru"><subject>ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="article-type"><subject>Unknown</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="en">The utility of real-time PCR as a test for confirmation of the absence of residual neurovirulence of strains for live antiviral vaccines</article-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Использование ПЦР-РВ как теста, подтверждающего отсутствие остаточной нейровирулентности штаммов для живых противовирусных вакцин</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-2742-3965</contrib-id><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Shamsutdinova</surname><given-names>O. A.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Шамсутдинова</surname><given-names>О. А.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>Olga A. Shamsutdinova — researcher, Laboratory of immunologyand cell biology</p><p>Sochi</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>Шамсутдинова Ольга Анатольевна — н.с. лаб. иммунологии ибиологии клетки</p><p>Сочи</p></bio><email>shamsutdinova-o-a@yandex.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0003-3606-1668</contrib-id><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Karal-ogly</surname><given-names>D. D.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Карал-оглы</surname><given-names>Д. Д.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>Dgina D. Karal-ogly — Cand. Sci. (Biol.), Depute Director</p><p>Sochi</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>Карал-оглы Джина Джинаровна — к.б.н., зам. директора по научной работе</p><p>Сочи</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-2188-6547</contrib-id><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Lavrent’eva</surname><given-names>I. N.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Лаврентьева</surname><given-names>И. Н.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>Irina N. Lavrent'eva — D. Sci. (Med.), Head, Laboratory of experimental virology</p><p>Saint Petersburg</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>Лаврентьева Ирина Николаевна — д.м.н., зав. лаб. экспериментальной вирусологии </p><p>Санкт-Петербург</p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff1"><aff><institution xml:lang="en">Research Institute of medical Primatology</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">Научно-исследовательский институт медицинской приматологии</institution></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff2"><aff><institution xml:lang="en">Saint-Petersburg Pasteur Institute</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени Пастера</institution></aff></aff-alternatives><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2022-05-15" publication-format="electronic"><day>15</day><month>05</month><year>2022</year></pub-date><volume>99</volume><issue>2</issue><issue-title xml:lang="en"/><issue-title xml:lang="ru"/><fpage>185</fpage><lpage>192</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2022-05-12"><day>12</day><month>05</month><year>2022</year></date><date date-type="accepted" iso-8601-date="2022-05-12"><day>12</day><month>05</month><year>2022</year></date></history><permissions><copyright-statement xml:lang="en">Copyright ©; 2022, Shamsutdinova O.A., Karal-ogly D.D., Lavrent’eva I.N.</copyright-statement><copyright-statement xml:lang="ru">Copyright ©; 2022, Шамсутдинова О.А., Карал-оглы Д.Д., Лаврентьева И.Н.</copyright-statement><copyright-year>2022</copyright-year><copyright-holder xml:lang="en">Shamsutdinova O.A., Karal-ogly D.D., Lavrent’eva I.N.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="ru">Шамсутдинова О.А., Карал-оглы Д.Д., Лаврентьева И.Н.</copyright-holder><ali:free_to_read xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/"/><license><ali:license_ref xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/">https://creativecommons.org/licenses/by/4.0</ali:license_ref></license></permissions><self-uri xlink:href="https://microbiol.crie.ru/jour/article/view/1216">https://microbiol.crie.ru/jour/article/view/1216</self-uri><abstract xml:lang="en"><p><bold>Introduction.</bold> Taking into account the particular importance of the assurance of the safety of antiviral vaccines containing, albeit attenuated, but live viruses, that can possibly retain the residual neurovirulence, it is important to develop additional tests to confirm the stability of attenuation using modern methods of laboratory diagnostics.</p> <p><bold>The aim</bold> of the study was to assess the possibility of using the RT-PCR method as an additional test for monitoring the residual neurovirulence of attenuated rubella virus vaccine strains.</p> <p><bold>Materials and methods</bold>. We used live attenuated vaccine strains of rubella virus "Orlov-V" and RA27/3. The study was carried out on 11 clinically healthy monkeys of the species Macaca mulatta weighing 3–5 kg, born and kept in the nursery of the Research Institute of Medical Primatology. The clinical material studied was tissue samples from various parts of the central nervous system (CNS), regional lymph nodes, parenchymal organs, plasma and cerebrospinal fluid of experimental animals. Control of extraneural dissemination of vaccine strains was carried out using virological (cytopathic action) and molecular biological methods (RT-PCR).</p> <p><bold>Results</bold>. The absence of an infectious virus in the CNS, peripheral organs and blood plasma of monkeys infected with vaccine strains was demonstrated, which indicates a high level of attenuation of rubella virus strains "Orlov-B" and RA27/3. The analytical sensitivity of the RT-PCR method was found to exceed the analytical sensitivity of the cytopathic reaction by 1.7–3.3 lg when determining the content of rubella virus in the tissues of the CNS and peripheral organs of inoculated animals.</p> <p><bold>Conclusion</bold>. Comparative analysis of experimental data showed that the detection of rubella virus by real-time PCR has a number of advantages due its specificity, sensitivity and a shorter turnaround time. In this connection, the RT-PCR method can be used as an additional test in the preclinical assessment of specific safety, namely, extraneural dissemination of attenuated vaccine strains, which is essential for quality and safety control of live rubella vaccines.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="ru"><p><bold>Введение.</bold> Учитывая особую важность заключения о безопасности применения противовирусных вакцин, содержащих хоть и ослабленные, но живые вирусы, с возможным сохранением остаточной нейровирулентности весьма актуальной представляется разработка дополнительных, подтверждающих стабильность аттенуации тестов, основанных на современных методах лабораторной диагностики.</p> <p><bold>Цель исследования</bold> — оценка возможности использования метода ПЦР-РВ в качестве дополнительного теста при контроле остаточной нейровирулентности аттенуированных вакцинных штаммов вируса краснухи.</p> <p><bold>Материалы и методы.</bold> В работе использовали живые аттенуированные вакцинные штаммы вируса краснухи «Орлов-В» и RA27/3. Исследование проводили на 11 клинически здоровых обезьянах вида Macaca mulatta массой 3–5 кг, родившихся и содержащихся в питомнике НИИМП. Клиническим материалом служили образцы тканей различных отделов ЦНС, региональных лимфатических узлов, паренхиматозных органов, плазма и спинномозговая жидкость экспериментальных животных. Контроль экстраневральной диссеминации вакцинных штаммов проводили с использованием вирусологического (реакция цитопатического действия) и молекулярно-биологического методов (ПЦР-РВ).</p> <p><bold>Результаты.</bold> Установлено отсутствие инфекционного вируса в ЦНС, периферических органах и плазме крови обезьян, заражённых вакцинными штаммами, что свидетельствует о высоком уровне аттенуации штаммов «Орлов-В» и RA27/3 вируса краснухи. Также выявлено, что аналитическая чувствительность метода ПЦР-РВ превышает аналитическую чувствительность реакции цитопатического действия на 1,7–3,3 lg при определении содержания вируса краснухи в тканях ЦНС и периферических органах инокулированных животных.</p> <p><bold>Заключение</bold>. Сравнительный анализ экспериментальных данных показал, что выявление вируса краснухи методом ПЦР-РВ имеет ряд преимуществ — это специфичность, чувствительность и меньшая длительность реакции. В связи с этим метод ПЦР-РВ может быть использован в качестве дополнительного теста при доклинической оценке специфической безопасности, а именно экстраневральной диссеминации аттенуированных вакцинных штаммов, что крайне необходимо при контроле качества и безопасности применения живых краснушных вакцин.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="en"><kwd>attenuation</kwd><kwd>rubella virus</kwd><kwd>vaccine strains</kwd><kwd>cytopathic action</kwd><kwd>PCR-RT</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>аттенуация</kwd><kwd>вирус краснухи</kwd><kwd>вакцинные штаммы</kwd><kwd>цитопатическое действие</kwd><kwd>полимеразная цепная реакция в режиме реального времени</kwd></kwd-group><funding-group/></article-meta></front><body></body><back><ref-list><ref id="B1"><label>1.</label><mixed-citation>1. Максимова О.А., Попов В.Ф., Бектемиров Т.А., Григорьева Л.В., Юнасова Т.Н., Каплунова О.П. и др. Сравнительная оценка нейровирулентности отечественной и зарубежных живых паротитных вакцин. Вопросы вирусологии. 2001; 46(5): 31–5.</mixed-citation></ref><ref id="B2"><label>2.</label><mixed-citation>2. Шамсутдинова О.А., Булгин Д.В., Карал-оглы Д.Д., Лаврентьева И.Н. Изучение морфологических изменений в ЦНС и внутренних органах обезьян Macaca mulatta при интрацеребральном введении низкоаттенуированного штамма вируса краснухи. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2021; 171(5): 651–5. https://doi.org/10.47056/0365-9615-2021-171-5-651-655</mixed-citation></ref><ref id="B3"><label>3.</label><mixed-citation>3. Ziyaeifar F., Soleimani S. Characterizing the BHK-21 C5 cell line and determining cellular sensitivity to rubella virus compared with the routine cell(RK13). Arch. Razi. Inst. 2021; 76(3): 461–9. https://doi.org/10.22092/ari.2020.342274.1458</mixed-citation></ref><ref id="B4"><label>4.</label><mixed-citation>4. Забияка Ю.И., Файзулоев Е.Б., Борисова Т.К., Никонова А.А., Зверев В.В. Экспресс-метод оценки титра вируса краснухи в вируссодержащей жидкости с помощью ПЦРРВ. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2010; (5): 57–62.</mixed-citation></ref><ref id="B5"><label>5.</label><mixed-citation>5. Бинятова А.С., Мыца Е.Д., Чертова Н.В., Волкова Р.А., Саркисян К.А., Ильясова Т.Н. и др. Использование наборов реагентов для ОТ-ПЦР в реальном времени для оценки подлинности вакцин против кори, паротита и краснухи. БИОпрепараты. Профилактика, диагностика, лечение. 2018; 18(4): 249–56. https://doi.org/10.30895/2221-996X-2018-18-4-249-256</mixed-citation></ref><ref id="B6"><label>6.</label><mixed-citation>6. Mantel N., Aguirre M., Gulia S., Girerd-Chambaz Y., Colombani S., Moste C., et al. Standardized quantitative RTPCR assays for quantitation of yellow fever and chimeric yellow fever-dengue vaccines. J. Virol. Methods. 2008; 151(1): 40–6. https://doi.org/10.1016/j.jviromet.2008.03.026</mixed-citation></ref><ref id="B7"><label>7.</label><mixed-citation>7. Лаврентьева И.Н., Сухобаевская Л.П., Жебрун А.Б. Штамм вируса краснухи для получения медицинских иммунобиологических препаратов (МИБП). Патент РФ № 2081912; 1995.</mixed-citation></ref><ref id="B8"><label>8.</label><mixed-citation>8. Общая фармакопейная статья ОФС.1.7.2.0010.15. Оценка специфической безопасности производственных штаммов и посевных вирусов кори, паротита и краснухи. М.; 2018.</mixed-citation></ref><ref id="B9"><label>9.</label><mixed-citation>9. Домонова Э.А., Шипулина О.Ю., Куевда Д.А., Ларичев В.Ф., Сафонова А.П., Бурчик М.А. и др. Выявление РНК вируса краснухи в клиническом материале методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2012; (1): 60–7.</mixed-citation></ref><ref id="B10"><label>10.</label><mixed-citation>10. Юнасова Т.Н., Бинятова А.С., Фадейкина О.В., Саркисян К.А., Мовсесянц А.А., Игнатьев Г.М. и др. Анализ качества отечественной вакцины для профилактики краснухи. Вопросы вирусологии. 2018; 63(2): 90–6. https://doi.org/10.18821/0507-4088-2018-63-2-90-96</mixed-citation></ref><ref id="B11"><label>11.</label><mixed-citation>11. Sakata M., Katoh H., Otsuki N., Okamoto K., Nakatsu Y., Lim C.K., et al. Heat shock protein 90 ensures the integrity of rubella virus p150 protein and supports viral replication. J. Virol. 2019; 93(22): e01142–19. https://doi.org/10.1128/JVI.01142-19</mixed-citation></ref><ref id="B12"><label>12.</label><mixed-citation>12. Best J.M. Rubella. Semin. Fetal. Neonatal. Med. 2007; 12(3): 182–92. https://doi.org/10.1016/j.siny.2007.01.017</mixed-citation></ref><ref id="B13"><label>13.</label><mixed-citation>13. Cooray S., Warrener L., Jin L. Improved RT-PCR for diagnosis and epidemiological surveillance of rubella. J. Clin. Virol. 2006; 35(1): 73–80. https://doi.org/10.1016/j.jcv.2004.12.020</mixed-citation></ref><ref id="B14"><label>14.</label><mixed-citation>14. Mace M., Cointe D., Six C., Levy-Bruhl D., du Chatelet I.P., Ingrand D., et al. Diagnostic value of reverse transcription-PCR of amniotic fluid for prenatal diagnosis of congenital rubella infection in pregnant women with confirmed primary rubella infection. J. Clin. Microbiol. 2004; 42(10): 4818–20. https://doi.org/10.1128/JCM.42.10.4818-4820.2004</mixed-citation></ref><ref id="B15"><label>15.</label><mixed-citation>15. Ребриков Д.В., Саматов Г.А., Трофимов Д.Ю. ПЦР в реальном времени. М.: БИНОМ, Лаборатория знаний; 2009.</mixed-citation></ref><ref id="B16"><label>16.</label><mixed-citation>16. Osterholm M.T., Kelley N.S., Sommer A., Belongia E.A. Efficacy and effectiveness of influenza vaccines: a systematic review and meta-analysis. Lancet Infect. Dis. 2012; 12(1): 36– 44. https://doi.org/10.1016/S1473-3099(11)70295-X</mixed-citation></ref><ref id="B17"><label>17.</label><mixed-citation>17. Greenwood K.P., Hafiz R., Ware R.S., Lambert S.B. A systematic review of human-to-human transmission of measles vaccine virus. Vaccine. 2016; 34(23): 2531–6. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2016.03.092</mixed-citation></ref><ref id="B18"><label>18.</label><mixed-citation>18. Лаврентьева И.Н., Шамсутдинова О.А., Чугуева И.И., Карал-оглы Д.Д., Вышемирский О.И. Изучение тератогенности вакцинного штамма вируса краснухи «Орлов-В» (Matonaviridae:Rubivirus: Rubellavirus) в опыте на обезьянах макак-резус. Вопросы вирусологии. 2020; 65(6): 357–63. https://doi.org/10.36233/0507-4088-2020-65-6-6</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>
